氯氰菊酯降解菌的分離鑒定及降解特性研究

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(1.浙江工業大學 生物與環境工程學院,浙江 杭州 310014；2.中國水稻研究所，浙江 杭州 310006)

氯氰菊酯(cypermethrin)作為一種廣譜高效的擬除蟲菊酯類殺蟲劑，因其高效用和低哺乳動物毒性而廣泛用于農業病蟲害的防治，是茶樹、果樹、蔬菜等農作物病蟲害防治的主要農藥之一.研究表明：氯氰菊酯對一些水生生物、蜜蜂等非靶標生物有較大毒性，對人的生殖健康有嚴重危害[1-4].由于氯氰菊酯穩定性高，半衰期長，在果蔬、食品、環境中殘留量大，影響農產品的質量及人類的身體健康.隨著人們對生活質量的要求不斷提高，解決農藥殘留，提高食品和環境安全已經成為一個亟待解決的課題.

微生物降解是指利用微生物將存在于環境中的毒害污染物降解或轉化為其他無害物質，被公認為是一種有效、廉價、無二次污染的方法.同時，利用微生物進行農藥降解還具有操作簡便、繁殖快、生態恢復性好等優點.有關氯氰菊酯的降解菌主要在假單胞菌屬(Pseudomonassp.)[5-6]、沙雷氏菌屬(Serratiasp.)[7]、芽孢桿菌屬(Bacillussp.)[8]等微生物種類中被發現.本研究篩選分離到1株能高效降解氯氰菊酯的惡臭假單胞菌(Pseudomonsaputida)LQK-14，研究其降解特性，并對其降解酶定域，為其在生物修復中的應用提供了實驗數據和理論基礎.

1 材料與方法

1.1 實驗材料

1.1.1 培養基

基礎培養基(MM)：NaCl 1.0 g，K2HPO41.5 g，NH4NO31.0 g，KH2PO40.50 g，MgSO4·7H2O 0.1 g，水1 000 mL，pH 7.0～7.2，121 ℃滅菌備用.

篩選培養基：基礎培養基中按試驗設計要求添加20～800 mg/L的氯氰菊酯作為惟一碳源.氯氰菊酯溶解在少量丙酮中，與滅菌后放置冷卻于45 ℃的基礎培養基相混合.

1.1.2 供試農藥與標樣

95%氯氰菊酯農藥原藥，南京榮誠化工有限公司；氯氰菊酯標樣，北京康林科技有限公司生產，純度≥98.5%.

1.2 實驗方法

1.2.1 菌種篩選和純化

采集受氯氰菊酯污染的茶園和農藥廠廢水處理池附近的土壤.稱取一定量土壤，制成菌懸液，無菌稀釋后涂布含有100 mg/L氯氰菊酯的分離培養基上，30 ℃下培養48～72 h，待長出單菌落后，采用平板劃線法分離純化，純化時逐步增大培養基中所加的氯氰菊酯質量濃度，直至達到800 mg/L.

1.2.2 菌種鑒定及系統發育研究

參照文獻[9]進行菌株形態觀察.挑取氯氰菊酯降解菌的單菌落于20 μL ddH2O中，漩渦混勻后，置于PCR儀中99 ℃，10 min，12 000 r/min離心30 s，上清液直接作為PCR反應的模版.擴增引物為一對通用引物，正向引物F27：5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′，反向引物R1492：5′-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3′，引物由上海生物工程有限公司合成.50 μL反應體系：10×buffer(with 15 mmol/L MgCl2)5 μL，10 mmol/L dNTP 1 μL，5 μmol/L引物各2 μL，基因組DNA模板3 μL，ddH2O 36.5 μL，Taq酶0.5 μL.PCR反應條件為95 ℃預變性4 min；95 ℃反應1 min，56 ℃反應30 s，72 ℃反應90 s，循環35次；72 ℃反應5 min.采用PCR產物純化試劑盒純化擴增產物后，由上海華大基因公司測序.將測得的基因序列通過NCBI-BLAST進行序列比對分析.菌體形態的電鏡觀測照片委托浙江大學生物技術研究室電鏡中心拍攝.

1.2.3 氯氰菊酯的降解試驗

選取純化后的單個菌株，以初始接種量OD600≈0.3接種以氯氰菊酯為唯一碳源的基礎培養基中，設不接菌為對照，每處理重復3次，于30 ℃，搖床200 r/min，培養7 d.培養液中殘留的氯氰菊酯用2倍體積的石油醚抽提，10 000 r/min離心5 min，吸取上層有機相，用HPLC檢測.檢測條件：高效液相色譜儀型號為Agilent PH1100型(帶工作站)，色譜柱Agilent C18柱(4.6 mm×250 mm)，柱溫30 ℃，流動相V(乙腈)∶V(水)= 85∶15，流速1 mL/min，檢測波長235 nm，進樣量20 μL.外標法定量，本檢測方法樣品中氯氰菊酯的含量以兩峰的峰面積總量計.氯氰菊酯降解率計算式為

1.2.4 降解條件

1) 培養基初始pH對LQK-14降解氯氰菊酯的影響

將基礎鹽培養基的pH值分別調節為為5，6，7，8和9(含100 mg/L氯氰菊酯)，以5%的接種量接種，30 ℃，搖床200 r/min培養7 d，測定其生長狀況和農藥含量.

2) 溫度對菌株生長和降解氯氰菊酯的影響

以5%的接種量接種于含100 mg/L氯氰菊酯基礎培養基，分別于20，25，30，35，40 ℃，搖床200 r/min培養7 d，測定其生長狀況和農藥含量.

3) 碳源種類對氯氰菊酯降解的影響

按照0.1%(m/v)的比例在基礎培養液中分別添加葡萄糖、果糖、蔗糖、麥芽糖、淀粉和甘油作為外源碳源，以5%的接種量接種后置于30 ℃，200 r/min搖床培養7 d，測定降解率.

4) 氮源種類對氯氰菊酯降解的影響

按照0.1%(m/v)的比例在MM培養液中分別添加牛肉膏、蛋白胨、酵母膏、尿素、氯化銨和硫酸銨作為外源氮源，以5%的接種量接種后置于30 ℃，200 r/min搖床培養7 d，測定降解率.

5) 氯氰菊酯初始濃度對降解的影響

在基礎鹽培養基中加入氯氰菊酯，使其終質量濃度分別為25，50，100，200，300 mg/L，按5%的接種量接入降解菌種子液，于30 ℃，搖床200 r/min培養7 d，測定其生長狀況和農藥含量.

1.2.5 降解酶的定域

應用滲透休克方法進行研究，具體試驗方法參見洪源范等[10]，略修改后進行氯氰菊酯降解酶的定域.

1.2.6 粗酶液的制備和酶活力的測定

將已經培養好的菌液6 000 r/min離心10 min，去上清，具體用20 mmol/L磷酸緩沖液洗滌2次，在冰浴中超聲波破碎，12 000 r/min離心5 min，棄沉淀，上清液凍存備用.取20 mmol/L磷酸緩沖液1 800 μL(含甲醇溶解的50 mg/L氯氰菊酯)，200 μL粗酶液，30 ℃條件下反應20 min，用200 μL的6 mol/L HCl終止反應，加入2倍體積的石油醚，渦旋振蕩1 min，于12 000 r/min下離心3 min，取上層有機相進行HPLC檢測.通過氯氰菊酯的標準曲線，求得氯氰菊酯的減少量.

2 結果與分析

2.1 降解菌的分離和菌種鑒定

從長期、大量施用擬除蟲菊酯農藥的杭州茶園土壤中分離獲得1株能以氯氰菊酯為惟一碳源生長的細菌，命名為LQK-14.該菌株在LB固體培養基上生長時，菌落呈規則圓形、邊緣整齊，菌落白色、略透明、有光澤、較粘稠、略有臭味.取LB培養基上生長至對數期的培養物拍攝電鏡照片見圖1.圖1中菌體呈卵圓形，長約1.2 μm，寬約0.8 μm，單端叢生鞭毛.革蘭氏染色陰性，接觸酶反應和吲哚試驗呈陽性，VP試驗、苯丙氨酸脫氨酶試驗和甲基紅試驗均為陰性，不能水解淀粉，能耐受10%氯化鈉，生長最適pH為7.0等.

圖1 氯氰菊酯降解菌LQK-14電鏡負染圖(30 000×)

菌株LQK-14 16S rRNA基因序列全長為1 439 bp.將其與已登錄的16S rRNA基因序列進行同源性比較，結果發現，與已經報道的惡臭假單胞菌PseudomonasputidaIS82(登陸號FJ596989)和32zhy(登陸號AM411059)等菌株的同源性達到100%.因此，根據上述相似性比較結果，結合菌株的生理生化特性將其鑒定為惡臭假單胞菌(Pseudomonasputida).圖2為應用軟件mega 5.0做出的系統發育樹.

圖2 氯氰菊酯降解菌LQK-14的系統發育樹

2.2 菌株降解效能的測定

2.2.1 降解菌LQK-14的降解曲線

降解菌LQK-14以5%的接種量接種到氯氰菊酯起始濃度為100 mg/L的基礎培養基中，于30 ℃搖床上200 r/min培養7 d，每隔12 h取樣，檢測其降解率，結果見圖3.

圖3 降解菌LQK-14對氯氰菊酯的降解曲線

由圖3可看出：在84 h以內，細胞處于積極生長狀態，繁殖迅速，菌液的OD460最高達到0.856，同時氯氰菊酯的降解也穩步增加.84 h后LQK-14的生長速度開始變緩，但其降解能力并未降低，仍然保持線性的增長速度，最終于168 h能將100 mg/L的氯氰菊酯降解67%，而對照組的降解率很低，上述結果表明LQK-14菌株對氯氰菊酯具有降解作用.

2.2.2 培養基初始pH值對LQK-14降解氯氰菊酯的影響

培養基的pH是影響微生物生長繁殖和生理活動的重要因素之一.pH除了對細胞發生直接影響外，還可產生通過改變培養基中營養物質的離子化程度從而抑制微生物對營養物質的吸收等的間接影響.pH的變化對于菌株LQK-14降解性能的影響很顯著.在pH5.0～9.0的范圍內，氯氰菊酯的降解效率出現先升高后降低的現象，其最大降解率出現在pH7.0，降解率達70.25%，pH上升至8.0時，其降解率仍能維持在62%以上.同時試驗證明LQK-14菌株在pH6.0～8.0的范圍內生長情況良好，細胞數量多，其生長最適pH為7.0，但在pH≤4的條件下不生長.表明降解菌LQK-14的細胞數量與其降解能力密切相關.

2.2.3 溫度對LQK-14降解氯氰菊酯的影響

溫度也是影響微生物生長繁殖和生理活動的重要因素之一.適宜的溫度下微生物能快速生長繁殖，低溫可導致細胞膜凝固，引起物質運送困難；高溫則使蛋白質變性，影響酶活性.在溫度為25～35 ℃時，降解菌LQK-14均保持較好的降解能力；當溫度升至40 ℃時，降解能力顯著下降.通過檢測不同溫度下其菌液的渾濁度，發現40 ℃時降解菌生長情況較差.30 ℃時菌液的OD460值為0.810，而40 ℃時菌液OD460值為0.055，因此推斷可能是由于LQK-14菌株不適應在較高溫度下生長造成氯氰菊酯降解率下降.降解菌LQK-14在常溫下表現出較好的降解能力，為以后在土壤修復過程中施用提供了有利條件.

2.2.4 碳源對LQK-14降解氯氰菊酯的影響

添加外源碳源以考察降解菌LQK-14對氯氰菊酯的降解，結果見圖4.從圖4中可以看出：除了在添加了麥芽糖后，氯氰菊酯降解率提高外，其余的碳源的添加均降低LQK-14對氯氰菊酯的降解.其中，甘油和淀粉對氯氰菊酯的降解影響較大，降解率下降約50%.檢測發現LQK-14利用淀粉的能力很弱(生理生化檢測)，推測淀粉的添加對LQK-14菌株的生長產生了一定的影響，其生長情況不好，導致其降解氯氰菊酯的能力下降.甘油一般可以作為微生物生長的遲效碳源，且易于獲得大量的菌體(和葡萄糖作為碳源相比)，但是甘油的加入，可能導致LQK-14優先利用較易利用的碳源甘油，造成對氯氰菊酯降解率的下降.

2.2.5 氮源對LQK-14降解氯氰菊酯的影響

土壤中有機質的含量及其肥力情況影響了微生物的種類和分布，故在土壤的生物修復過程中，通過調整土壤的施肥比例可強化其修復過程.氮源對微生物生長和生理活動的影響顯著，故添加外源的氮源以考察降解菌LQK-14對氯氰菊酯的降解，結果如圖5所示.從圖5中可以看出：牛肉膏、蛋白胨和酵母膏的添加減緩了氯氰菊酯的降解，但尿素、氯化銨和硫酸銨的添加促進了氯氰菊酯的降解，尤其是兩種無機氮源的添加促使其7 d的降解率均超過了88%.這與李青云等的研究結果不同，其分離獲得的PseudomonasaeruginosaGF31在外加氮源的情況下，其降解氯氰菊酯的效能提高，且有機氮比無機氮更有利于農藥降解[11].

圖4 碳源對降解氯氰菊酯的影響

圖5 氮源對降解氯氰菊酯的影響

2.2.6 氯氰菊酯初始質量濃度對LQK-14降解的影響

降解菌LQK-14接種到不同氯氰菊酯起始質量濃度的培養基，30 ℃，200 r/min搖床培養7 d后檢測其農藥降解率.結果表明：隨著氯氰菊酯起始濃度從25 mg/L增加到300 mg/L，其降解率呈現降低的趨勢.其中，在300 mg/L氯氰菊酯的條件下，降解菌LQK-14生長情況較差，降解率快速降低.推測氯氰菊酯降解過程中產生的中間代謝產物的毒性抑制了降解菌的生長和降解活性.例如，Rhodococcussp.CDT3降解氯氰菊酯過程中產生的中間代謝產物3-苯氧基苯甲酸(3-PBA)對降解菌CDT3的降解效能產生一定的抑制作用，且其降解速率與3-PBA的濃度呈負相關[12].

2.3 降解酶的定域試驗

應用滲透休克方法獲得降解菌LQK-14胞內外和周質空間的粗酶液，測定其酶活力.其中，胞內酶活力最高，可達18.42 μmol/(min·L)，周質空間(1.83 μmol/(min·L))次之，胞外的酶活力最低，可能是菌體細胞死亡后的釋放，或者胞內酶泄露到周質空間和胞外.由此推定，降解菌LQK-14降解氯氰菊酯的酶屬于胞內酶.文獻報道氯氰菊酯降解酶多為胞內酶，如Liang等從AspergillusnigerZD11中純化得到分子量為56 kDa的胞內酶[13]；Tallur等從Micrococcussp. CPN1提取到誘導型的胞內酶[14].

3 結 論

從施用氯氰菊酯的土壤中分離獲得一株能以氯氰菊酯為惟一碳源生長且能分解氯氰菊酯的細菌LQK-14，根據其生理生化特征結合其16S rDNA相似性比較，鑒定為惡臭假單胞菌(Pseudomonsaputida).該菌株對300 mg/L的氯氰菊酯仍具有一定的降解作用，其降解氯氰菊酯的最適pH值為7.0，最適溫度為25～30 ℃，添加適量無機氮源氯化銨和硫酸銨對其降解氯氰菊酯具有促進作用，在7 d內對100 mg/L氯氰菊酯的降解率最高可達88%.酶的定域試驗表明，降解酶為胞內酶.

本文得到了浙江工業大學重中之重學科開放研究基金項目(20080104)的資助.

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