HPLC法測定雙氫青蒿素哌喹片中雙氫青蒿素的含量Δ

周 琳（重慶市食品藥品檢驗檢測研究院/重慶市藥物過程與質量控制工程技術研究中心，重慶 401121）

雙氫青蒿素哌喹片為雙氫青蒿素和磷酸哌喹的復方制劑。雙氫青蒿素為青蒿素衍生物[1-2]，是青蒿素體內活性物質，對瘧原蟲無性體有較強殺滅作用，能迅速殺滅瘧原蟲，控制疾病癥狀。雙氫青蒿素和磷酸哌喹合用具有協同作用，可延緩瘧原蟲耐藥性的產生[3]?！吨袊幍洹?010年版第一增補本收載了雙氫青蒿素哌喹片，并采用高效液相色譜（HPLC）法測定雙氫青蒿素的含量，但該方法不能有效排除磷酸哌喹的影響。本文參考《國際藥典》2011 V2.2版中雙氫青蒿素的含量測定方法[4]，對現行標準中的測定方法進行了改進。

1 材料

2695型HPLC儀，包括2998型二極管陣列檢測器和Empower工作站（美國Waters公司）；KQ5200型超聲波清洗器（昆山市超聲儀器有限公司，功率：200 W，頻率：40 kHz）；ME215S型十萬分之一天平（德國Sartorius公司）。

雙氫青蒿素對照品（中國食品藥品檢定研究院，批號：100184-201202，純度：99.94%），青蒿素對照品（中國食品藥品檢定研究院，批號：100202-201004，純度：100%）；雙氫青蒿素哌喹片（華立巖康制藥有限公司，批號：011110、010212、010512）；乙腈為色譜純；其他試劑均為分析純；水為純化水。

2 方法與結果

2.1 色譜條件

色譜柱：Waters YMC-Pack ODS-AQ（250 mm×4.6 mm，5 μm）；流動相：乙腈（A）-水（B），梯度洗脫（洗脫程序見表1）；流速：1.0 ml/min；柱溫：30 ℃；檢測波長：216 nm；進樣量：20 μl。

2.2 溶液的制備

2.2.1 對照品溶液 取雙氫青蒿素對照品約25 mg，精密稱定，置于25 ml量瓶中，加乙腈-水（60∶40，V/V）適量，超聲處理10 min使溶解，放冷，用乙腈-水（60∶40，V/V）稀釋至刻度，搖勻，即得。

2.2.2 供試品溶液 臨用新制。取本品10片，精密稱定，研細，取粉末適量（相當于雙氫青蒿素約25 mg），精密稱定，置于25 ml量瓶中，加乙腈-水（60∶40，V/V）適量，超聲處理10 min使溶解，冷卻，用乙腈-水（60∶40，V/V）稀釋至刻度，搖勻，離心，取上清液作為供試品溶液。

2.2.3 空白溶液 按處方比例配制無雙氫青蒿素的陰性對照品，精密稱取相當于雙氫青蒿素約25 mg的粉末，置于25 ml量瓶中，加乙腈-水（60∶40，V/V）適量，超聲處理10 min使溶解，冷卻，用乙腈-水（60∶40，V/V）稀釋至刻度，搖勻，離心，取上清液作為空白溶液。

2.3 系統適用性試驗

取雙氫青蒿素、青蒿素對照品各適量，精密稱定，加乙腈-水（80∶20，V/V）超聲處理10 min，并稀釋制成每1 ml中含雙氫青蒿素和青蒿素各1 mg的系統適用性溶液。精密吸取20 μl注入HPLC儀，按“2.1”項下色譜條件進樣測定，記錄色譜圖。結果，雙氫青蒿素（呈兩個色譜峰）第一個色譜峰與青蒿素峰相比，相對保留時間為0.6；各組分峰之間的分離度＞2.0；理論板數以β-雙氫青蒿素峰計算＞3 000。色譜見圖1。

圖1 高效液相色譜圖Fig 1 HPLC chromatograms

2.4 空白干擾試驗

分別精密吸取“2.2”項下對照品溶液、供試品溶液、空白溶液各20 μl，按“2.1”項下色譜條件進樣測定，記錄色譜圖。按外標法計算供試品溶液中雙氫青蒿素的含量，色譜見圖1。結果表明，空白溶液無干擾。

2.5 線性關系考察

精密稱取雙氫青蒿素對照品0.482 5 g，置于200 ml量瓶中，加乙腈-水（60∶40，V/V）適量，超聲處理10 min使溶解，置37℃水浴中保溫1 h，冷卻后用流動相稀釋至刻度，搖勻，制成質量濃度為2.412 mg/ml的雙氫青蒿素標準溶液。精密量取雙氫青蒿素標準溶液適量，用乙腈-水（60∶40，V/V）稀釋并制成雙氫青蒿素質量濃度分別為1.930、0.965 0、0.482 5、0.096 50、0.048 25、0.009 650 mg/ml的標準溶液。按“2.1”項下色譜條件分別進樣20 μl測定，記錄色譜圖。以質量濃度（x）為橫坐標、雙氫青蒿素兩個峰面積之和（y）為縱坐標，繪制標準曲線，得回歸方程為y＝3.086 8×107x+28.833（r＝0.999 9）。結果表明，雙氫青蒿素的質量濃度在0.009 650～1.930 mg/ml范圍內與峰面積呈良好線性關系。

2.6 雙氫青蒿素雙峰轉換

精密稱取雙氫青蒿素原料10.00 mg，精密加入乙腈-水（60∶40，V/V）10 ml，超聲處理10 min使溶解，連續進樣30次（每次運行時間14 min，等度）。結果，峰面積之和的RSD為0.80%，表明雙氫青蒿素溶液在6 h內兩峰面積間的比例變化較大，但兩峰面積之和基本一致，對測定結果無影響。

2.7 定量限與檢測限

精密稱取雙氫青蒿素對照品20.04 mg，置于100 ml量瓶中，加乙腈-水（60∶40，V/V）適量，超聲處理10 min使溶解，并稀釋至刻度，搖勻；再精密量取1.0 ml，置于100 ml量瓶中，加乙腈-水（60∶40，V/V）稀釋至刻度，搖勻，即得供試品溶液。按“2.1”項下色譜條件進樣5 μl測定，記錄色譜圖。按信噪比為10計算定量限、以信噪比為3計算檢測限。結果，α-雙氫青蒿素的定量限、檢測限分別為1.78、0.533 ng；β-雙氫青蒿素的定量限、檢測限分別為7.39、2.22 ng。

2.8 精密度試驗

精密吸取“2.2.2”項下供試品溶液20 μl，按“2.1”項下色譜條件連續進樣6次，記錄色譜圖，按外標法以雙氫青蒿素兩個峰面積之和計算。結果，RSD為0.21%，表明儀器精密度良好。

2.9 穩定性試驗

精密吸取“2.2.2”項下供試品溶液適量，在室溫下放置0、1.5、3、4.5、6.5、8.5、10.5、14.5 h時按“2.1”項下色譜條件分別進樣20μl，以雙氫青蒿素兩個峰面積之和計算。結果，RSD為0.31%，說明供試品溶液在14.5 h內穩定性良好。

2.10 重復性試驗

取同一批樣品（批號：011110）適量，按“2.2”項下方法制備供試品溶液6份，按“2.1”項下色譜條件進樣，記錄色譜圖，按外標法以雙氫青蒿素兩個峰面積之和計算。結果，RSD為0.5%，表明本方法重復性良好。

2.11 加樣回收率試驗

精密稱取同一批樣品（批號：011110）適量，共9份，每3份為一組，分別精密加入相當于雙氫青蒿素對照品質量濃度80%、100%、120%的溶液各適量，按“2.2”項下方法制成供試品溶液，再按“2.1”項下色譜條件進樣測定，記錄色譜圖，并計算加樣回收率，結果見表2。

表2 加樣回收率試驗結果（n＝9）Tab 2 Results of recovery tests（n＝9）

2.12 樣品含量測定

取3批樣品及雙氫青蒿素對照品各適量，按照“2.2”項下方法配制供試品和對照品溶液，按“2.1”項下色譜條件進樣測定，記錄色譜圖，按外標法計算樣品含量，結果以標示量的百分含量表示，詳見表3。

表3 樣品含量測定結果（n＝3）Tab 3 Results of content determination of samples（n＝3）

3 討論

雙氫青蒿素哌喹片現行質量標準收載于《中國藥典》2010年版第一增補本[5]中，其雙氫青蒿素含量測定方法為HPLC法，檢測波長為210 nm，本文參照國際藥典2011 V2.2版[4]將檢測波長改為216 nm，既能保證雙氫青蒿素含量測定的靈敏度，同時又能相對減少末端吸收的影響。

現行質量標準流動相為乙腈-水（60∶40，V/V），等度洗脫。本試驗中發現，等度洗脫時磷酸哌喹的保留時間較長，不易洗脫，而且磷酸哌喹的色譜峰會影響雙氫青蒿素的色譜峰，出現峰重疊等現象。因此，本文采用乙腈和水的梯度洗脫方式，將磷酸哌喹洗脫，避免其對雙氫青蒿素含量測定的影響。

綜上所述，本方法準確、簡便、快速，可用于雙氫青蒿素哌喹片中雙氫青蒿素的含量測定。

[1]韋國峰，何有成，黃祖良.雙氫青蒿素的制備及其含量測定[J].右江民族醫學院學報，2001，23（5）：691.

[2]王滿元.青蒿素類藥物的發展歷史[J].自然雜志，2012，34（1）：44.

[3]韓濤，代勇.簡述使用青蒿素聯合西藥瘧疾的研究進展[J].當代醫藥論叢，2015，13（6）：10.

[4]World Health Organization.The international pharmacopoeiaFourth Edition Second Supplement[EB/OL].（2011）[2013-07-25].http：//apps.who.int/phint/en/p/docf/.

[5]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典：第一增補本[S].2010年版.北京：中國醫藥科技出版社，2010：271.