3種不同養殖模式對精養水體尼羅羅非魚生長性能及養殖水質的影響

方彰勝+劉邦輝+王廣軍

摘要：以尼羅羅非魚為研究對象，采用投放光合細菌、安裝生物浮床單養和羅非魚、鯽魚、鳙魚混養等3種不同模式對尼羅羅非魚精準養殖水體水質和生長等方面進行研究。結果顯示，在70 d養殖周期內，除混養組合和對照組間的平均增質量率無顯著差異（P>0.05）外，光合細菌和生物浮床使羅非魚的生長和成活率有顯著提高（P<0.05）；3種養殖模式對試驗周期內羅非魚精養水體中磷酸鹽和中亞硝酸鹽濃度均具有不同程度降低作用，光合細菌組的作用尤其顯著（P<0.05），其后依次是生物浮床組、混養組和對照組；3種養殖模式對硝酸鹽濃度無顯著影響（P>0.05），3種養殖模式氨氮含量在養殖周期內均呈現先升高后降低的規律，整個養殖周期內，光合細菌組水體中氨氮含量均顯著低于其他組（P<0.05），對照組水體中氨氮含量始終高于其他組（P<0.05）。結果表明，3種不同養殖模式在改善羅非魚養殖水質的前提下，對羅非魚的生長和成活率有顯著提高（P<0.05）作用。同時，此幾種模式可為推動我國羅非魚發展模式由資源高耗費型向環境友好型轉變提供新的途徑和思路，不失為羅非魚生態健康高效的養殖模式。

關鍵詞：尼羅羅非魚；養殖模式；生長性能；水質

中圖分類號： S965.125 文獻標志碼： A

文章編號：1002-1302（2016）11-0252-04

羅非魚（Oreochromis）是原產于熱帶亞熱帶暖水性魚類，有尼羅、莫桑比克、奧利亞等10多個品種，因其具有繁殖力強、生長速度快、耐粗食、抗病力強等優點，是我國特別是華南地區重要的淡水養殖和出口創匯品種[1]。其中，養殖模式的發展和完善對我國羅非魚養殖發展起著積極的促進作用。目前，羅非魚的養殖模式主要有池塘混養、網箱養殖、高密度集約化池塘養殖等模式[2-4]。隨著養殖產量、經濟效益逐漸提高，出現無整體規劃，養殖品種結構單一，水源交叉感染，水質惡化、密度較高致過度使用魚藥等問題，使羅非魚養殖水質、環境、魚病以及品質等方面陷入瓶頸[5]。王武等研究表明水體水質單因子變化對養殖動物有顯著影響[6-7]，李如忠等研究表明水質參數變化較大，且對養殖動物影響較大的主要是氮、磷等有機污染指標[8-10]。因此，我國水產科技工作者通過運用光合細菌、生物浮島和混養等多種方法對南美白對蝦、中國對蝦、鯽魚等生物的養殖水體的水質改善、促生長、抗病等方面做了部分研究[11-18]，并取得了一定的成效，但有關不同養殖模式對精準養殖水體水質及魚類生長性能的影響仍需進一步研究。

本研究以尼羅羅非魚為研究對象，通過采用投放光合細菌、安裝生物浮床單養和羅非魚、鯽魚、鳙魚混養等3種不同模式對尼羅羅非魚精準養殖水體水質和生長等方面進行研究，旨在探索尼羅羅非魚生態高效健康養殖模式，以期為推動我國羅非魚養殖模式由資源高耗費型向資源節約與環境友好型轉變提供新的途徑和思路。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

1.1.1 試驗用飼料

試驗所用飼料為浮水料，由中國水產科學研究院珠江水產飼料廠提供。其飼料配方為：魚粉1（國產） 9.00%，消化能11.7 MJ/kg，大豆粕15.56%，粗蛋白33.28%，棉仁粕25.00%，粗脂肪2.81%，菜籽粕 20.00%，鈣1.26%，次粉19.86%，總磷1.14%，小麥麩6.72%，有效磷0.45%，磷酸二氫鈣1.06%，賴氨酸1.50%，植物油0.50%，蛋氨酸0.54%，鹽0.20%，蛋氨酸+胱氨酸1.13%，沸石粉1.00%，蘇氨酸1.29%，甜菜堿0.10%，色氨酸0.45%，預混料1.00%，精氨酸2.33%。每次投喂后密封保存。

1.1.2 試驗用魚及相關材料

試驗用尼羅羅非魚，規格為（10.8±1.2） g，體質健壯，外觀無明顯癥狀，購自廣東佛山市三水白金種苗有限公司。光合細菌購自中國水產科學研究院珠江水產研究所藥物實驗廠，試驗開始前7 d開始培養，濃度為1～2 g/m3。生物浮床為由PVC管框架固定的聚乙烯網，其上放空心菜，且長×寬為50 cm×6 cm的生態基垂于聚乙烯網下方。

1.1.3 試驗時間及地點

試驗于2014年6月5日至8月15日，在中國水產科學研究院（廣州）農業部熱帶亞熱帶水產資源利用與養殖重點實驗室試驗基地水泥池內進行，水泥池規格長×寬×高為5.0 m×4.0 m×1.5 m，水深1.2 m。

1.2 試驗方法

1.2.1 試驗分組

試驗分光合細菌組（定義為組1），生物浮床組（定義為組2），羅非魚、鯽魚和鳙魚混養組（定義為組3）和對照組，羅非魚每組各50尾，混養組的鯽魚和鳙魚各10尾，每組3個重復。

1.2.2 管理方法與計算公式

試驗用水為經過2級沙濾養殖池塘水，采用3 kW的鼓風機通過微孔曝氣盤（氣盤直徑為1 m）24 h不間斷向魚池充氧，溫度為自然水溫，pH值為 6.8～7.3，溶解氧量在5.0 mg/L 以上；每天09：00和17：00各投喂1次，投喂量為魚質量的3%。根據以下公式記錄并計算相應的數據：

平均體質量（g）=總體質量/羅非魚尾數；

增加的均體質量（g）=試驗后均體質量-試驗前均體質量；

成活率=最后存活尾數/初始養殖尾數×100%；

增重率=（試驗后均體質量-試驗前均體質量）/初始均體質量×100%。

1.2.3 水質檢測

每隔10 d采1次水樣，每次取同一水泥池不同的3個重復點，分別檢測氨氮、活性磷酸鹽、硝酸鹽氮、亞硝酸鹽氮等4個指標。其中，活性磷酸鹽濃度測定采用磷鉬藍分光光度法（HJ 593—2010），氨氮濃度測定采用納氏試劑分光光度法（HJ 535—2009），NO2-濃度測定采用分光光度法（GB 7493—1987），NO3-濃度測定采用紫外分光光度法（HJ/T 346—2007）。

1.2.4 數據處理

采用Excel和SPSS 17.0進行統計分析，數據以“平均值±標準差（x±s）”表示，在單因子方差分析（ANOVA）基礎上采用t檢驗分析比較，取95%置信度（P<0.05）或99%置信度（P<0.01）。

2 結果與分析

2.1 3種不同養殖模式下羅非魚生長特性

由表1可知，光合細菌組、生物浮床組、混養組合和對照組的平均增質量率分別為（12.66±2.1）、（11.23±1.7）、（9.53±1.1）、（9.12±1.2） g，光合細菌組平均增長率最大，生物浮床組次之，對照組最低。除混養組合和對照組間的平均增質量率無顯著差異外（P>0.05），其余組間均有顯著差異（P<0.05）。成活率除光合細菌組和生物浮床組間無顯著差異外（P>0.05），其余組間均存在顯著差異（P<0.05）?？梢?，光合細菌和生物浮床對羅非魚的生長和成活率有顯著提高（P<0.05）。

2.2 3種不同養殖模式對精養水體水質的影響

2.2.1 3種不同養殖模式對精養水體中活性磷酸鹽濃度的影響

由圖1可知，3種養殖模式對試驗周期內羅非魚精養水體中磷酸鹽濃度均具有不同程度的降低作用。除前期10 d內的變化無顯著差異外（P>0.05），10 d之后光合細菌組的作用尤其顯著（P<0.05），其后依次是生物浮床組、混養組和對照組。30 d和40 d的生物浮床組和混養組相比其他組對磷酸鹽濃度的降解作用分別呈現最弱現象。

2.2.2 3種不同養殖模式對水體中亞硝酸鹽濃度的影響

由圖2可知，試驗進行20 d周期內，3種養殖模式對水體中的亞硝酸鹽濃度的變化無顯著影響（P>0.05）；隨著試驗的進行，20～50 d試驗周期內，光合細菌組對水體中亞硝酸鹽的去除效果最為顯著（P<0.05），其次依次是生物浮床、混養模式和對照組。50 d之后，生物浮床組對水體中的亞硝酸鹽濃度的去除效果較為顯著（P<0.05）。

2.2.3 3種不同養殖模式對水體中硝酸鹽的影響

由圖3可見，3種不同養殖模式對硝酸鹽濃度影響無顯著差異（P>0.05）。隨著養殖周期的延長，硝酸鹽的濃度均呈急劇上升的趨勢。50 d之后的養殖周期內，光合細菌組的硝酸鹽濃度升高較為顯著（P<0.05），混養組的硝酸鹽濃度相對較低，生物浮床組與對照組居中。

2.2.4 3種不同養殖模式對水體中氨氮濃度的影響

由圖4可知，3組水體中的氨氮含量在養殖周期內均呈現先升高后降低的規律。其中，光合細菌組和生物浮床組水體中的氨氮含量大致在50 d之后呈下降趨勢，而混養組水體中的氨氮含量在養殖周期40 d后呈現快速降低，整個養殖周期內，光合細菌組水體中的氨氮含量均顯著低于其他組（P<0.05），對照組水體中的氨氮含量始終高于其他組（P<0.05）。

3 討論

3.1 3種不同養殖模式均可不同程度的提高羅非魚生長速度和成活率

氨氮與亞硝酸鹽濃度的高低是制約水產養殖水質好壞的重要因素[19]，而水質又進一步制約著水生生物的生長特性[20]。光合細菌是一種以光為能源的微生物，通過吸收水域中的有機物、二氧化碳、硫化氫等有害物質，能達到改善水質、增強水生生物免疫以促進其生長的作用，其作用已在陸家昌等開展的光合細菌能顯著提高凡納濱對蝦生長速度和抗病能力研究[15]中得以證實。生態基作為載體材料可分為有機部分和無機部分，都可以應用于改善養殖水質[21]，并能顯著促進羅氏沼蝦的生長[22]。本試驗中，相對于對照組，光合細菌組和下方掛有生態基的生物浮床組對羅非魚平均增長率最大和成活率具有顯著促進作用（P<0.05）（表1），此結果與陸家昌等的研究結果[15，22]基本一致?；祓B組無顯著變化，推測此結果可能與環境容納量有關，其具體原因有待進一步研究，但在不增加飼料投喂量的情況下可額外獲得魚產量?？梢?，3種養殖模式均可不同程度的提高羅非魚的生長與成活率。

3.2 3種不同養殖模式可有效改善羅非魚精準養殖水體水質

由圖1至圖4可知，前10 d的養殖周期內，因生物個體小、投餌少及投餌帶來的殘餌、糞便相對較少，3種養殖模式對水體的磷酸鹽、硝酸鹽、亞硝酸鹽和氨氮的影響無顯著差異（P>0.05），此結果與沈錦玉等的研究結果[11]基本一致。Green等研究發現羅非魚精養池塘對投入物質的氮、磷利用率分別僅為18%～21%和16%～18%[23]。楊世平等研究發現，投餌輸入池塘的氮大部分（62%～68%）隨著養殖時間的延長、精養池塘中亞礎酸鹽氮、氨態氮和總磷含量會逐漸增加[24]。

圖1試驗結果表明，養殖周期30 d時，隨著投餌量的增加，光合細菌和混養對水中活性磷酸鹽含量的降解作用顯著優于其余2組（P<0.05），其原因可能為混養組和光合細菌的數量此時達到生態平衡，混養組的鯽魚和鳙魚吸食有機碎屑，減緩了水體中磷酸鹽濃度升高的速度，而生物浮床的水生植物吸收相對速率較慢，同時附著在生態基上的生物群落生產繁殖速率低于水體活性磷酸鹽的富集速率。圖2試驗結果表明，20～50 d試驗周期內，光合細菌組對水體中亞硝酸鹽的去除效果最為顯著（P<0.05），其次依次是生物浮床、混養模式和對照組。生物50 d之后，生物浮床組對水體中的亞硝酸鹽濃度的去除效果較為顯著（P<0.05）?？梢?，在養殖前期，光合細菌因其穩定的增殖和亞硝酸鹽的分解作用優勢顯著，這與沈錦玉等關于光合細菌水產養殖水質的改良結論[11]基本一致。Azim研究表明，微生物和浮游生物在生物膜上的形成受水質環境因子的影響較大，相對穩定的水體其形成時間約在30 d [25]，與本試驗50 d后生物浮床對亞硝酸鹽去除效果顯著的結論相符。

在池塘養殖過程中，氮的消失通常是通過氨的散發和反硝化作用[26]，而反硝化作用過程常伴隨著氧化的氮化合物擴散[27]。伴隨著水體亞硝酸鹽的分解轉化為硝酸鹽和水體內硝酸鹽的積累，致使光合細菌組硝酸鹽的濃度顯著高于其他組（圖3）。通常，水體中的氨氮在細菌作用下，轉化為亞硝酸鹽和硝酸鹽，并最終轉化為硝酸鹽。因此，光合細菌組與生物浮床組對水體氨氮的分解轉化效果較為顯著（圖4），此結論與沈錦玉等關于光合細菌對養殖水質氨氮的影響研究結果[11，15]基本相同。

水泥池或池塘養殖因其封閉性導致池塘水體生態因子之間的相互轉化率較流水有顯著降低[28]，養殖水體維持一定的C/N比可顯著提高池塘的穩定性[29]，光合細菌、生物浮床和混養養殖模式因轉化分解水體的氨氮、亞硝酸鹽和硝酸鹽等途徑不同程度的降低了水體總氮含量，間接提高了C/N比值和物質轉化，提高了養殖水體的生態平衡和水體的穩態，進而降低羅非魚應激發生率和發病率，促進羅非魚快速生長，可見，光合細菌、生物浮床和混養養殖模式均不失為羅非魚精準水體健康高效養殖模式。

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