豬群PEDV、TGEV、GARV感染狀況調查與防控策略

姜 鑫 ，范學偉 ，王鑒波 ，李曉娟 ，陸子秀 ，李樹東

（1.黑龍江農業經濟職業學院，黑龍江 牡丹江 157041；2.牡丹江市動物衛生監督所，黑龍江 牡丹江 157041）

近年來，全國各地豬場不同程度暴發產房仔豬病毒性腹瀉，除產房新生仔豬以外其他階段豬群沒有任何臨床表現。新生仔豬發病主要表現為發病急、傳播速度快、病死率高，生產中2—3日齡仔豬感染發病后迅速脫水死亡，病死率100%；10日齡以上仔豬感染病死率30%～50%，給豬場造成的損失巨大，特別是規?；i場損失更是慘重。

許多研究表明新生仔豬病毒性腹瀉感染病原主要以豬流行性腹瀉病毒（PEDV）、豬傳染性胃腸炎病毒（TGEV）和豬輪狀病毒A群（GARV）為主，分析場內發病原因可能與以下因素相關：豬場對引進種豬未經隔離馴化，未對引進豬進行實驗室病原檢測，直接將帶毒豬誤入生產場；場內感染耐過的基礎母豬轉陽和場內無癥狀帶毒母豬帶毒生產，造成病毒在場內循環，導致母豬排放的帶毒乳汁傳給新生仔豬；另外帶毒母豬排泄糞便造成產房污染，工作人員對產房洗消不徹底，特別是產房的產床和保溫箱等生產設施洗消不徹底；新生仔豬沒有獲得足夠的母源抗體，在以上因素的多重作用下，新生仔豬感染發病并造成窩內迅速感染。

本研究團隊選擇黑龍江省暴發產房仔豬腹瀉豬場進行調查與分析，選擇發病豬場外引后備豬、場內的基礎母豬和育肥豬三個群體對其分泌物進行病原檢測追蹤，探明豬場內部豬群PEDV、TGEV、GARV帶毒和排毒狀況，明確豬場腹瀉感染源頭和感染途徑，為豬場防控新生仔豬病毒性腹瀉提供參考依據。

1 豬群PEDV、TGEV、GARV調查

1.1 材料與方法

對豬場引進的后備母豬、基礎母豬、育肥豬3個群體采集口鼻拭子、肛門拭子。

豬流行性腹瀉病毒/豬A群輪狀病毒/豬傳染性胃腸炎病毒三重聯檢實時熒光RT-PCR檢測試劑盒（湖南冠牧生物科技有限公司）；病毒DNA/RNA提取試劑盒（杭州博日科技股份有限公司）；賽默飛熒光定量PCR儀（ABI7500）。

對豬場后備母豬、基礎母豬、育肥豬3個群體分別選取50頭采集口鼻拭子、肛門拭子。將口鼻拭子、肛門拭子群內混樣，5頭混成1個檢測樣本，每個群體制作成10份混樣，總計30份混樣。

采用實時熒光定量PCR檢測方法對30份混樣進行核酸檢測。

1.2 RNA提取

利用核酸提取試劑盒對30份樣品進行RNA核酸提取，分別獲得50μL核酸模板；

1.3 PEDV/GARV/TGEV核酸檢測

取PEDV/GARV/TGEV檢測試劑盒，解凍，離心。

PCR-MIX 配 制：21.5μLPCR反應液+1μL酶混合液+0.5內標，混勻，離心，備用。

分別向每個PCR管中加入22.5μL的PCR-MIX。

分別向反應孔中依次加入2.5μL待檢樣品核酸模板及陰性和陽性對照。

擴增，設置FAM檢測PEDV核酸、HEX檢測GARV核酸、CY5檢測TGEV核酸和ROX檢測內標，設置體系25μL。設置擴增程序如表1。

表1 擴增程序

結果判定：被檢測樣品檢測結果中FAM通道Ct值≤ 40，擴增曲線為典型的S型擴增曲線，且ROX內標通道Ct值≤35，報告PEDV核酸陽性；被檢測樣品檢測結果中HEX通道Ct值≤ 40，擴增曲線為典型的S型擴增曲線，且ROX內標通道Ct值≤ 35，報告GARV核酸陽性；被檢測樣品檢測結果中CY5通道Ct值≤ 40，擴增曲線為典型的S型擴增曲線，且ROX內標通道Ct值≤ 35，報告TGEV核酸陽性。

1.4 檢測結果

檢測結果見表2。

表2 檢測結果

1.5 分析與討論

后備豬檢測結果PEDV有效樣本10份，GARV有效樣本10份，TGEV有效樣本9份；基礎母豬檢測結果PEDV、GARV、TGEV有效樣本9份；育肥豬檢測結果PEDV、GARV、TGEV有效樣本9份。

豬場3個群體口鼻分泌物進行PEDV、TGEV、GARV檢 測， 結果都檢測到一定比例的陽性樣本（見圖1），后備豬PEDV、TGEV、GARV陽性比例高于基礎母豬和育肥豬，后備豬陽性比例高，說明后備豬進生產群有較大傳播風險；3個 群 體 PEDV、TGEV、GARV感染且正在通過分泌物向場內排毒，造成場內病毒循環；基礎母豬排毒造成產房環境污染，如果豬群PEDV、TGEV、GARV特 異 性 免疫力差，新生仔豬難以獲得母源抗體，加上新生仔豬先天性免疫力低下，母豬通過乳汁排毒和被母豬排泄物污染的產床雙重壓力下，勢必會造成新生仔豬直接接觸到病毒而感染。

圖1 PEDV/TGEV/GARV陽性比例

檢測數據中TGEV和GARV均檢測到較高的陽性比例，說明TGEV和GARV是造成新生仔豬腹瀉重要因素。值得注意的是許多文獻報道TGEV感染，造成新生仔豬表現腹瀉和嘔吐癥狀；GARV多引起10日齡以上的頑固性腹瀉且病死率一般30%～40%。本次檢測的豬場仔豬腹瀉只發生在出生后2—3日齡，未見嘔吐等癥狀，且場內其他階段豬群沒有任何臨床發病表現，可以說明引起新生仔豬腹瀉的病原不是強毒，只引起先天性免疫力低的新生仔豬發病。

檢測數據顯示基礎母豬群體帶毒且排毒的可能性非常大，這要調查豬場是否有過頑固性腹瀉的發病史。如果沒有發病史則后備豬引種帶來的傳播風險最大，如果豬場有發病史在防控體系不完善的情況下，有可能是母豬中帶毒豬排毒造成新生仔豬腹瀉。

育肥豬PEDV、TGEV未檢測到陽性樣本，在育肥豬分泌物中檢測到1份GARV陽性樣本，但是育肥豬群沒有發病癥狀，說明中大豬對GARV有較強的抵抗力。

2 總結

采集豬場引進后備豬、場內基礎母豬、育肥豬的30份口鼻和肛門拭子進行PEDV、TGEV、GARV病原調查與分析，證明引進后備豬和場內基礎母豬兩個群體感染PEDV、TGEV、GARV且向環境中排毒，造成病毒場內循環并造成產房環境污染；帶毒豬是豬場新生仔豬病毒性腹瀉的主要傳染源。加強管理及時篩選并淘汰帶毒豬、阻斷病毒循環、增強全群的特異性免疫力，是控制豬場新生仔豬病毒性腹瀉的重要手段。豬場采取以下相應措施可以降低豬群感染和暴發病毒性腹瀉的風險。

2.1 常規預防措施

2.1.1 引種管理

豬場引種時將病毒帶到場內是暴發產房新生仔豬腹瀉的直接原因。所以豬場在引種時必須要全面細致考察，不要從發生過產房病毒性腹瀉的陽性場引種。新引進的后備豬到達新場后不經隔離直接混養會導致病毒攜帶豬發病，并向外傳播病毒。所以新引進的后備豬在生產區外要進行隔離，通過實驗室檢測手段進行PEDV、TGEV、GARV檢測，對陽性豬采取必要措施。

2.1.2 場內豬群免疫與監測

市場上有多種預防仔豬病毒性腹瀉的商品化疫苗，包括豬流行性腹瀉-傳染性胃腸炎二活聯苗/滅活苗、豬流行性腹瀉-傳染性胃腸炎-輪狀病毒三聯活疫苗，分為弱毒苗和滅活苗，但無論哪種疫苗，都無法做到對豬場豬群的保護都能達到預期的效果。對引進種豬在隔離期間設計合理的免疫程序，最好在隔離期內完成兩次豬流行性腹瀉-傳染性胃腸炎-輪狀病毒的疫苗免疫。生產群要做到豬流行性腹瀉-傳染性胃腸炎-輪狀病毒疫苗3～4次/年，將傳染性胃腸炎-豬流行性腹瀉-輪狀病毒三聯疫苗免疫列為豬場常態化免疫程序，傳統的冬春季節性免疫對于帶毒排毒豬場已經不適用。有計劃的加強種豬群傳染性胃腸炎-豬流行性腹瀉-輪狀病毒疫苗免疫后血清學抗體監測最好2次/年，確保種豬群的有較高的免疫水平；對種豬群分泌物排泄物進行PCR病原檢測2～3次/年，考慮經濟成本可以參照本實驗的進行混樣檢測，發現帶毒和排毒陽性豬要進行及時處理。

2.2 發病緊急處置措施

2.2.1 假定健康豬緊急接種或返飼

一旦豬場2—3日齡新生仔豬出現頑固性腹瀉，馬上采集病料進行實驗室病原檢測與分析，根據檢測結果選擇合適的疫苗進行緊急接種，對妊娠母豬在有效的間隔時間內最好能進行兩次疫苗免疫，首次最好使用活疫苗免疫，二次免疫采用滅活疫苗加強免疫，這樣會取得較好的免疫效果。

很多豬場在出現產房仔豬腹瀉時采取返飼對母豬進行馴化。將感染發病豬采集病料經特殊處理后拌料，通過口服的方法，感染假定健康豬，使其產生免疫力并將產生的抗體經乳汁或者血液傳遞給新生仔豬，使仔豬獲得高滴度母源抗體，從而使仔豬產生對病毒的抵抗力的過程。返飼的方法對發病場控制疫情能達到一定效果。返飼的具體操作：采集病料最好是發病24 h內或者發病死亡3～4 h內的仔豬腸道及內容物，采集的病料勻漿磨碎后加入兩倍體積的生理鹽水混勻，向混勻后的漿液中分別加入10萬IU青霉素和1萬IU鏈霉素；再次攪拌均勻，飼喂場內妊娠期不滿85 d的妊娠母豬，飼喂劑量為40～60 g/頭，每日1次，連續飼喂2～3 d。為保證被返飼母豬豬只能夠將吃到足量的病料，返飼前最好對豬禁食10～12 h。

2.2.3 清洗消毒與場內人員管理

產房的清洗和消毒工作是清除產房病原的主要措施。根據豬場規模采取批次化生產，做到全進全出，確保產房能夠消毒徹底，產床漏縫地板的拆洗、浸泡消毒。消毒液使用兩種以上，可以使用火焰消毒的地方采用火焰消毒，進入場內的物品必須做到外包裝嚴格消毒。

發生產房腹瀉的豬場禁止各棟舍間工作人員交叉接觸，杜絕物品共用，發病舍內各窩間禁止物品或工具共用，停止仔豬寄養工作；最好做到舍內工作人員單項流動；保證分娩舍內溫度與濕度，盡量做到舍內溫度適宜、地面干燥；各棟舍除嚴格落實腳踏消毒盆每日更換消毒水，如果消毒盆內使用3%～5%的火堿溶液做為消毒液，必須在3～4 h更換新溶液。