氣道和肺泡部位成纖維細胞的原代分離和培養

曾瑩瑩 胡蔚萍 左依慧 張靜

摘 要 目的：建立小鼠氣道和肺泡部位原代成纖維細胞的分離、培養方法，為研究肺內成纖維細胞的區域性差異提供技術平臺。方法：將小鼠雙肺取出并固定后，在體視顯微鏡視野內分別分離氣道和肺泡組織塊，并應用組織塊培養法分別進行細胞的體外原代和傳代培養。通過細胞形態觀察以及細胞表面標志物的免疫熒光檢測對培養的成纖維細胞進行鑒定。此外，采用阿爾瑪藍法分別檢測氣道和肺泡部位成纖維細胞的增殖情況并進行比較。結果：12 h內可見分離的原代細胞貼壁生長，7 d可進行傳代。在倒置顯微鏡下觀察，細胞呈長梭狀，胞體豐滿，胞質均勻，符合成纖維細胞的特點，并且細胞在5代以內可保持良好的生長狀態和穩定的性狀。免疫熒光檢測結果顯示，抗波形蛋白染色和抗α-平滑肌肌動蛋白染色呈陽性，抗細胞角蛋白染色、抗血管性假血友病因子染色、抗結蛋白染色均呈陰性，由此表明該分離培養的細胞為成纖維細胞，且純度高達99%。此外，氣道部位的成纖維細胞增殖能力顯著高于肺泡部位。結論：應用顯微解剖加組織塊法可成功分離培養小鼠氣道和肺泡部位成纖維細胞，并且使細胞在5代以內生長狀態良好，從而為探索小氣道壁和肺泡成纖維細胞功能差異提供必要的細胞工具。

關鍵詞 成纖維細胞 氣道組織 肺泡 小鼠 顯微分離 原代培養

中圖分類號：Q813.11 文獻標志碼：A 文章編號：1006-1533（2021）03-0068-05

*基金項目：國家自然科學基金資助項目（81470231，81670030）

Isolation and culture of primary fibroblasts derived from airway and alveolar tissues*

ZENG Yingying， HU Weiping， ZUO Yihui， ZHANG Jing**

（Department of Pulmonary and Critical Care Medicine， Zhongshan Hospital， Fudan University， Shanghai 200032， China）

ABSTRACT Objective： To establish mice fibroblasts of airway and alveolar tissues isolation method for primary culture and research use and to provide the platform for the research of regional differences between fibroblasts from the airway and alveolar tissues. Methods： The 6-8 month old mice were sacrificed and the lung were got totally together with trachea. Then the airway tissues and the alveolar tissues were isolated under the stereomicroscope respectively. Primary fibroblasts were cultured by tissue block culture method and were identified by cell morphology and immunofluorescence staining. The proliferative ability of fibroblasts derived from airway and alveolar tissues was analyzed by Alamar blue assay. Results： The fibroblasts derived from airway and alveolar tissues were generally elongated and spindle shaped and were in line with the classic fibroblasts form. Moreover， the primary fibroblasts maintained the steady growing condition within the 5 passages. Further analysis using immunofluorescence revealed that the fibroblasts markers vimentin and α-SMA were positive， cytokeratin staining， desmin staining， and von Willebrand factor staining were negative， which showed that the primary fibroblasts were fibroblasts. In addition， the proliferative ability of fibroblasts derived from airway tissues was significantly higher than that from alveolar tissues. Conclusion： Primary fibroblasts derived from airway and alveolar tissues could maintain good condition within passage 5. And it provided a good cell tool to investigate the functional difference between this kind of fibroblasts.

KEY WORDS fibroblasts； airway； pulmonary alveolus； mice； microisolation； primary culture

慢性阻塞性肺?。璺危┦且环N常見的慢性進行性疾病，最新研究結果提示40歲以上人群中發病率達到 11.7%，構成了重大疾病負擔[1-5]。慢阻肺的病理特征是小氣道壁重構和肺氣腫，這兩個解剖上臨近的部位卻呈現截然相反的細胞外基質沉積特點[6-9]，明確其機制可有助于發現慢阻肺干預的新靶點。成纖維細胞作為肺產生細胞外基質的主要細胞，有助于局部損傷修復[10-12]。因此，原代分離氣道和肺泡兩個獨立部位的成纖維細胞是探索小氣道壁和肺泡細胞外基質沉積差異的必要細胞工具。然而，已有研究多采用全肺成纖維細胞原代分離培養或者細胞系培養的方法[13-15]。因此，本研究應用顯微解剖加組織塊法，探索分離小鼠氣道和肺泡兩個獨立部位的原代成纖維細胞的方法，觀察并鑒定獲取細胞的功能與性狀特性。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物

6～8周（20～25 g）清潔級C57BL/6雄性小鼠，購于復旦大學附屬中山醫院實驗動物中心。實驗過程中對動物的處理獲實驗動物中心倫理審批，并符合2006年科技部《關于善待實驗動物的指導意見》的相關要求。

1.1.2 主要試劑與儀器

DMEM/F12 （dulbeccos modified eagle medium/F12）培養基、青鏈霉素混合液、胎牛血清（FBS）、磷酸鹽緩沖液（PBS）、0.25%胰蛋白酶-乙二胺四乙酸鈉（EDTA）和Hank平衡鹽溶液（HBSS）均購自美國Gibco公司。無血清凍存液購自蘇州新賽美公司。細胞培養瓶購自美國Corning公司。兔抗小鼠波形蛋白（vimentin）抗體、小鼠抗小鼠α-平滑肌肌動蛋白（α-SMA）抗體、兔抗小鼠角蛋白（cytokeratin）抗體、兔抗小鼠結蛋白（desmin）抗體、兔抗小鼠血管性假血友病因子（von Willebrand factor，vWF）抗體、FITC標記山羊抗鼠IgG二抗、FITC標記山羊抗兔二抗均購自美國CST公司；阿爾瑪藍（alamar blue）購自上海翊圣生物科技有限公司；麻醉藥Avertin（2，2，2-三溴乙醇溶液）購自美國Sigma公司。

體視顯微鏡購自德國萊卡公司；熒光正置顯微鏡，含5% CO2、37 ℃恒溫細胞培養箱，細胞超凈臺，低溫離心機均購自美國Thermo公司；顯微剪、顯微鑷購于上海金鐘公司；硅膠、大頭釘購于上海元象醫療器械有限公司。

1.2 細胞分離培養

1.2.1 原代氣道和肺泡成纖維細胞分離、培養

原代氣道部位成纖維細胞：取6～8周的C57BL/6小鼠，經腹腔快速注射過量麻醉藥Avertin（1 000 mg/kg）將小鼠處死后，將其全身置于75%乙醇內消毒5 s，在無菌環境下剖胸，暴露心肺，將帶有氣管的完整雙肺取出，迅速將其放在裝有預冷1%雙抗液的PBS中沖洗，用大頭針將雙肺水平固定于預先備好的裝有硅膠的直徑10 cm細胞培養皿上，向皿內倒入預冷HBSS使液面能覆蓋兩側肺組織。在體視顯微鏡下沿氣管樹向下分離氣道組織，將分離到的氣道組織剪至1 mm ×1 mm×1 mm大小并將其放入預冷的無菌容器內，把每20～25塊氣道組織轉移至25T的培養瓶內，使組織塊均勻分布于培養瓶內。向培養瓶內加入1 ml含50% FBS的DMEM/F12培養液，將培養瓶放入細胞培養箱靜置24 h。待組織塊貼壁牢固后，再向培養瓶內補齊4 ml含20% FBS的DMEM/F12培養液，繼續培養5 d并靜置，從第3～4天開始陸續會有成纖維細胞從組織塊周圍爬出。第6天吸去原來的培養液，取出組織塊，加入新鮮的含20% FBS的DMEM/ F12培養液4～5 ml，每2 d換液1次。

原代肺泡成纖維細胞：在體視顯微鏡下用顯微剪和顯微鑷在肺組織的邊緣剪下肺泡組織，將組織塊剪至約1 mm×1 mm×1 mm大小后放入預冷的無菌容器內，每20～25塊轉移到25T培養瓶內，后續過程同上。此外，在體視顯微鏡下分離小鼠氣道組織以及周圍的肺泡組織并進行蘇木精-伊紅染色以證實所分離組織具備氣道和肺泡組織的結構特征。

1.2.2 細胞的傳代培養

原代成纖維細胞培養至12 d左右，細胞密度達到瓶底面積的80%～90%時，可進行首次傳代。按細胞計數進行1∶2或者1∶3比例傳代，傳代后的細胞根據生長情況每2 d換液1次，可用無血清凍存液凍存第2～4代細胞，以備后續實驗使用。

1.3 細胞鑒定

1.3.1 細胞形態學鑒定

在倒置顯微鏡下觀察原代及傳代細胞的形態特征。

1.3.2 成纖維細胞表面標志物鑒定

將培養的第2代細胞接種于置有蓋玻片的24孔板內，待細胞密度長至蓋玻片的70%～80%時取出蓋玻片，用4%多聚甲醛固定、吹干，按常規方法進行vimentin、α-SMA、cytokeratin、desmin、vWF免疫熒光染色，并設立陰性對照（以PBS代替一抗），用4，6-二脒基-2-苯基吲哚（DAPI）復染細胞核，于熒光顯微鏡下觀察所分離培養細胞的染色情況。

1.3.3 細胞增殖能力測定

用含10%FBS的培養液稀釋對數生長期的氣道和肺泡部位成纖維細胞后分別接種于96孔板內，每孔接種細胞數1 000個，設置5個時間點，各部位設置5個復孔，另外每個時間點均設置空白對照孔。將96孔板放于細胞培養箱內培養8 h以使細胞貼壁，貼壁后將第1組（0 h）孔內原來的培養液吸出，每孔加入含10%阿爾瑪藍的無血清DMEM/F12培養液100 μl，在細胞培養箱中孵育6 h后使用545 nm和590 nm雙波長的酶標儀檢測熒光值。其余4組分別在細胞接種后的24、48、72、96 h分別加阿爾瑪藍試劑后孵育6 h，并檢測細胞各對應時間點的熒光值。

1.4 統計學處理

2 結果

2.1 細胞形態學表現

組織塊貼壁后的第3～4 d，肺泡和氣道組織塊周邊均出現新遷出的細胞（圖1）。顯微鏡下細胞以長梭狀排列生長，胞體豐滿，胞質均勻，核呈圓形或卵圓形。氣道部位成纖維細胞在第5代前細胞生長旺盛，狀態良好，性狀穩定（圖2A）；肺泡部位成纖維細胞傳至第5代時生長緩慢，狀態變差，但5代前狀態良好（圖2B）。兩個部位的培養細胞凍存復蘇后在第5代前生長狀態均良好。

2.2 細胞免疫熒光鑒定結果

氣道和肺泡部位成纖維細胞的抗vimentin免疫熒光染色結果（圖3A、B）顯示，細胞骨架呈綠色，細胞核呈藍色；抗α-SMA免疫熒光染色結果（圖3D、E）顯示，細胞骨架呈紅色，細胞核呈藍色；而抗cytokeratin、desmin和vWF免疫熒光染色，僅細胞核呈藍色，細胞質無熒光染色。

2.3 細胞增殖能力鑒定結果

采用阿爾瑪藍法檢測氣道和肺泡部位成纖維細胞增殖能力。增殖曲線結果（圖4）提示，在細胞生長48 h后，氣道成纖維細胞的增殖能力顯著高于肺泡成纖維細胞（P<0.001），氣道成纖維細胞倍增時間約為48 h，而肺泡成纖維細胞倍增時間為72～96 h。

3 討論

研究表明，肺組織氣道和肺泡部位的細胞外基質蛋白的表達量存在很大的差異[8，11，16]，成纖維細胞是肺組織中產生細胞外基質蛋白的主要細胞[7，17]；同時慢阻肺的病理機制是小氣道纖維化（即細胞外基質蛋白的沉積）和肺氣腫（即細胞外基質蛋白的缺失）[18]，因此，掌握分離、培養氣道和肺泡部位的成纖維細胞技術對于明確慢阻肺的區域化病理差異有重要的意義。

現有的肺組織原代成纖維細胞培養的方法主要有組織塊法、酶消化法兩種[13，19]，而且都是關于全肺肺組織的成纖維細胞的分離和培養，并未具體到肺內不同解剖部位，比如氣道和肺泡部位成纖維細胞的分離、培養。加之在應用酶消化法提取原代成纖維細胞時，由于步驟煩瑣，消化時間長且需要大量組織塊，限制了分區域原代成纖維細胞的分離培養的應用，因此我們采用組織塊法分離、培養氣道和肺泡部位原代成纖維細胞。

本實驗探索使用顯微解剖技術分離小鼠氣道和肺泡部位原代成纖維細胞的方法，并提出簡單實用的操作流程：保留有氣管的完整肺組織可使操作者沿氣管樹走行逐級向下分離氣道組織；而且在取肺前沒有用PBS沖洗肺部血管，使肺部血管保留有凝固的紅色血塊，可幫助操作者在顯微視野內清晰辨認相伴而行的氣管和血管，以保證分離的組織是氣道而非血管。由于最終貼壁的組織塊數量和大小是原代成纖維細胞能否爬出以及爬出數量的決定因素，為了防止組織塊漂浮而導致培養失敗，我們在將剪下的組織塊接種于培養瓶后，向瓶內先加入含有50% FBS的1 ml培養液，并維持24 h培養，使組織塊貼壁牢固。經過前期摸索，我們發現1 ml的液體量既不會使組織塊漂浮，而且液體表面張力又不會使組織塊干燥壞死，同時含有高濃度血清可以給組織塊提供足夠的營養。我們的研究結果也顯示經過24 h的培養，80%的組織塊均可貼壁并保持組織活性。雖然有研究通過翻瓶2～4 h培養來確保組織塊附著在培養瓶上[13]，但是肺泡組織內含有氣體、質量輕、易于漂浮，2～4 h的時間或許不會使組織塊貼壁牢固，再翻動培養瓶時依舊會使組織塊漂浮。

在對兩部位成纖維細胞進行傳代培養的過程中發現：氣道部位成纖維細胞可以穩定傳至第5代，其性狀依然保持穩定；但肺泡部位成纖維細胞傳至第5代時，由于增殖能力的降低，細胞生長緩慢。該細胞生長形態觀察結果和我們對兩部位細胞增殖能力的測定結果一致，同時也從側面驗證了所分離的成纖維細胞來自兩個不同的部位。因此，為了保證實驗結果的可靠性，我們均采用第2～4代細胞進行后續研究。

綜上所述，顯微解剖聯合組織塊法分離培養肺組織氣道和肺泡部位原代成纖維細胞，可以穩定保持組織塊的活性，為細胞貼壁、增殖提供了良好的基礎條件，能夠特異、高效、簡便地獲得小鼠肺組織氣道和肺泡部位成纖維細胞，并穩定傳代。該技術為研究慢阻肺的細胞外基質在氣道和肺泡部位的表達差異提供了重要的細胞工具，同時也為慢阻肺的發病機制提供了新的研究視角。

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