降纖酶制備中β-丙內酯對脂包膜病毒滅活能力研究

張洪波 趙成跟 黃興建

摘要：目的 研究降纖酶制備工藝中β-丙內酯對脂包膜指示病毒的滅活能力，為該產品病毒安全性評價提供依據。方法 用微量滴定法測定β-丙內酯工藝處理前后各批次樣品中指示病毒VACV和VSV的滴度，按Reed-Muench法計算病毒滴度，并計算β-丙內酯處理前后各批次樣品中各指示病毒的滴度下降值。結果 β-丙內酯靜置滅活2h后，蛇毒溶液中VACV滴度均降至檢出限1.7 logs以下，滴度平均下降值≥4.3 logs;8h后，蛇毒溶液中VSV滴度均降至檢出限1.7 logs以下，滴度平均下降值≥5.0 logs。對照組蛇毒溶液靜置24h后VACV滴度平均下降0.4 logs，VSV滴度平均下降0.3 logs。結論 降纖酶制備工藝中的β-丙內酯工藝是一個有效的滅活脂包膜病毒的工藝步驟。

關鍵詞：尖吻蝮蛇蛇毒;β-丙內酯;VACV;VSV

Abstract： Objective To study the ability of β-Propiolactone to inactivate lipid-encapsulated indicator viruses in the preparation process of defibrase， and to provide a basis for the virus safety evaluation of the product. Methods Microtiter method was used to determine the titers of indicator viruses VACV and VSV in each batch of samples before and after the β-Propiolactone process. The virus titer was calculated according to the Reed-Muench method， and the titer of each indicator virus in each batch of samples before and after the β-Propiolactone treatment was calculated. Decline value. Results After the BPL was inactivated for 2 hours， the VACV titer in the snake venom solution fell below the detection limit of 1.7 logs， and the average titer decrease was ≥4.3 logs. After 8 hours， the VSV titer in the snake venom solution fell to the detection limit of 1.7. Below logs， the average drop in titer is ≥5.0 logs. The VACV titer of the snake venom solution in the control group decreased by 0.4 logs and the VSV titer decreased by 0.3 logs after being allowed to stand for 24 hours. Conclusion The β-Propiolactone process in the preparation of defibrase is an effective process step for inactivating lipid-enveloped viruses.

Keywords： Agkistrodon ?venom; BPL; VACV; VSV

【中圖分類號】R97 ? ? ? ? ? ? 【文獻標識碼】A ? ? ? ? ? ? 【文章編號】2107-2306（2021）09--03

降纖酶是從尖吻蝮蛇蛇毒中提取分離得到的一種類凝血酶，是以絲氨酸為活性中心的蛋白水解酶，直接作用于纖維蛋白原，釋放血纖肽A（FPA），生成非交聯的纖維蛋白，具有顯著的去纖、降粘、溶栓等作用，臨床上廣泛應用于治療和預防心腦血管血栓性疾病[1]。

然而蛇毒粗毒成分非常復雜， 除類凝血酶外還含有神經毒素、細胞毒素、肌肉毒素等多種活性成分，為引起各種毒副作用的主要原因[2];現行降纖酶質量標準要求降纖酶產品純度達到SDS-PAGE電泳純， HPLC測定純度需大于90%[3]，而天然蛇毒中的類凝血酶絕大多數為酸性蛋白質， 經典的蛋白質提純方法如鹽析、熱變性、酸堿變性、有機溶劑沉淀、超速離心等， 由于專一性差和分辨率不高，不能有效去除病毒類雜質，已很少用于降纖酶的制備。

β-丙內酯（BPL）是一種雜環類烷化劑，可作用于病原體DNA或RNA，改變病毒核酸結構，使病毒失去傳染性，從而達到滅活目的，而不直接作用于蛋白，對病毒具有很強的滅活作用，可以單獨用來滅活病毒或與紫外線照射結合應用，具有易水解、滅活時間段等優點[4-7]。

在證明生產過程中病毒滅活的研究中，滅活研究的指示病毒應選擇制品可能污染的病毒或理化性質相似的病毒，至少應包括單鏈和雙鏈的RNA及DNA、脂包膜和非脂包膜、強和弱抵抗力、大和小顆粒等病毒;至少應包括一種對物理和/或化學有明顯抗性的病毒。本研究參照《生物組織提取制品和真核細胞表達制品的病毒安全性評價技術評審一般原則》[8]，選擇脂包膜病毒牛痘病毒（vaccinina Virus，VACA）和水皰性口腔炎病毒（Vesicular Stomatitis Virus，VSV）作為研究的指示病毒，旨在探索降纖酶制備工藝中BPL對指示病毒VACA和VSV的滅活能力，為該產品病毒安全性評價提供依據。

其中其中VACV屬脂包膜雙鏈DNA病毒，大小300nm×250nm，中等理化抗性;VSV屬脂包膜單鏈RNA病毒，大小75×175nm，低理化抗性。

1 材料及方法

1.1 樣品

尖吻蝮蛇蛇毒（批號：M192017001、M192018001、M192018002）由本公司提供。

1.2 指示病毒及細胞

VACA病毒（批號：20180820）、VSV病毒（批號：20180306）由蘇州良辰生物醫藥科技有限公司購

自中國典型培養物保藏中心，并進一步擴增成工作病毒。

Vero細胞由蘇州良辰生物醫藥科技有限公司購自中國科學院典型培養物保藏委員會細胞庫，并進一步傳代為工作細胞。

1.3 主要試劑

β-丙內酯（批號：20171101）、牛血清白蛋白（批號：224X055、224X0520）購自北京萊寶科技有限公司，抗五步蛇血清（批號：試20170903）購自上海賽倫生物科技有限公司，MEM培養基（批號：AD15805276）購自通用電氣醫療系統貿易發展（上海）公司Hyclone細胞培養部，胎牛血清（FBS）（批號：20150804）購自蘭州民海生物工程有限公司。

1.4 方法

實際工藝中β-丙內酯處理的溫度為2～8℃，本研究選擇工藝條件中較難滅活病毒的條件即較低的溫度（3±1℃）進行試驗;取樣時，尖吻蝮蛇蛇毒溶液用MEM培養基50倍稀釋并用抗五步蛇血清中和以終止取樣后的BPL對病毒的繼續滅活以及降低樣品對指示細胞的影響。據此設計了一系列實驗組和對照組，實驗組設置0、1h、2h、4h、8h和24h六個取樣點，用以考察不同時間段β-丙內酯對指示病毒的滅活能力;對照組設置白蛋白對照、起始滴度對照組、細胞毒性對照、未處理對照、中和劑對照、終止效果對照、病毒對照和細胞陰性對照。

試驗組：尖吻蝮蛇蛇毒溶液加入0.1%β-丙內酯溶液混勻定容后按9：1（樣品：病毒，V：V）比例加入指示病毒VACV和VSV，使β-丙內酯的濃度為0.025%，攪拌混勻后置于3±1℃恒溫水浴靜置滅活，于各取樣時間點取樣，用MEM培養基50倍稀釋并用20%抗五步蛇血清中和后測定病毒滴度。

白蛋白對照組：以牛血清白蛋白代替尖吻蝮蛇蛇毒，經相同工藝濃度、相同工藝過程處理后，測定各取樣點的病毒滴度。

起始滴度對照組：取與試驗組相同濃度的尖吻蝮蛇蛇毒和牛血清白蛋白，按9：1（樣品：病毒，V：V）比例加入指示病毒VACV和VSV，用MEM培養基50倍稀釋后測定病毒滴度。

細胞毒性對照組：尖吻蝮蛇蛇毒溶液用MEM培養基50倍稀釋加入20%抗五步蛇血清中和、0.1%β-丙內酯溶液用MEM培養基稀釋使成0.025%的溶液、尖吻蝮蛇蛇毒溶液經β-丙內酯處理后用MEM培養基50倍稀釋，分別加入指示細胞Vero細胞，在倒置顯微鏡下觀察Vero細胞生長狀況。

未處理對照組：尖吻蝮蛇蛇毒溶液和牛血清白蛋白溶液加入指示病毒VACV和VSV，于3±1℃水浴靜置24h，測定病毒滴度。

中和劑對照組：抗五步蛇血清用MEM培養基50倍稀釋后加入指示病毒VACV和VSV測定病毒滴度。

終止效果對照組：三批次β-丙內酯滅活蛇蛇毒溶液中VACV和VSV第24h取樣的樣品其50倍稀釋度的細胞孔（測定為陰性的細胞孔）分別進行盲傳三代，在倒置顯微鏡下觀察Vero細胞生長狀況。

病毒對照組：取指示病毒VACV和VSV，按1：9（病毒：培養基，V：V）比例加入MEM培養基，再用MEM培養基50倍稀釋后測定病毒滴度。

細胞陰性對照組：MEM培養基加入指示細胞Vero細胞，在倒置顯微鏡下觀察Vero細胞生長狀況。

用微量滴定法測定實試驗組和對照組樣品的病毒滴度，并將不同時間點所取的尖吻蝮蛇蛇毒樣品用細胞維持液（含2%FBS的MEM培養基）做10倍梯度稀釋至10-7，立即加入已接種Vero細胞的96孔板中，置于5%CO2培養箱，37℃孵育（VACA用Vero細胞培養168h，每隔72h換液一次;VSV用Vero細胞培養72h），在倒置顯微鏡下觀察指示細胞的病變情況。按Reed-Muench法計算病毒滴度（以半數細胞感染劑量TCID50表示，TCID50對數值=高于50%組病變的病毒稀釋度的對數值+距離比例），并計算β-丙內酯處理前后各批次樣品中各指示病毒的滴度下降值。

為了確認尖吻蝮蛇蛇毒樣品中指示病毒是否完全被滅活，在滴定β-丙內酯滅活蛇毒溶液中VACV和VSV第24h取樣的樣品時，分別將培養168/72h后未出現Vero細胞病變的50倍稀釋度的測定細胞孔，反復凍融3次（放置于-35℃冰箱，待完全凝固后取出，置于37℃培養箱中融化，如此反復凍融3次），離心取上清液，分別滴加至接種Vero細胞的96孔板中，37℃吸附1h后換含有2%FBS的MEM培養基，置于37℃、5%CO2培養箱中培養（VACA用Vero細胞培養168h，每隔72h換液一次;VSV用Vero細胞培養72h）。在倒置顯微鏡下觀察Vero細胞生長狀況，如未觀察到細胞病變，重復上述操作2次，如仍觀察不到細胞病變，即為盲傳三代無病變，表明樣品中指示病毒VACV和VSV均被完全滅活。

2 結果

2.1 ?β-丙內酯滅活試驗

經0.025%BPL滅活2h三批次蛇毒溶液中VACV滴度均降至檢測限1.7 logs以下，滴度平均下降值≥4.3 logs;滅活8h三批次蛇毒溶液中VSV滴度均降至檢測限1.7 logs以下，滴度平均下降值≥5.0 logs。

2.2 對照試驗

2.2.1白蛋白對照試驗，經0.025%β-丙內酯滅活2h三批次牛血清白蛋白中VACV滴度均降至檢測限1.7 logs以下，滴度平均下降值≥4.1 logs;滅活8h三批次牛血清白蛋白中VSV滴度均降至檢測限1.7 logs以下，滴度平均下降值≥5.3 logs。

2.2.2起始滴度對照試驗，尖吻蝮蛇蛇毒和牛血清白蛋白起始滴度與試驗組不存在差異。

2.2.3細胞毒性對照試驗，Vero細胞生長良好。

2.2.4未處理對照試驗，三批次蛇蛇毒溶液中VACV滴度平均僅下降0.4 logs，三批次牛血清白蛋白溶液中VACV滴度平均僅下降0.3 logs;三批次蛇蛇毒溶液中VSV滴度平均僅下降0.3 logs，三批次牛血清白蛋白溶液中VSV滴度平均僅下降0.2 logs。

2.2.5中和劑對照試驗，三批次抗五步蛇血清中VACV和VSV滴度平均僅下降0.4 logs。

2.2.6終止效果對照試驗，指示細胞Vero細胞均正常生長，即盲傳三代無病變。

2.2.7細胞陰性對照試驗，Vero細胞正常生長。

3 討論

細胞毒性試驗結果顯示20%的抗五步蛇血清能中和尖吻蝮蛇蛇毒，β-丙內酯處理后的樣品其50倍稀釋度對Vero細胞生長均無影響，因此指示病毒VACV和VSV的滴度最低檢測限均為1.7 logs。

試驗組三批次終止效果驗證對照和病毒起始滴度差均<0.5 logs，表明所取樣品經終止反應（用培養基50倍稀釋并用抗五蛇血清中和）后對指示病毒不再具有滅活作用，對指示細胞也不再具有毒性作用，因此本研究中采用培養基50倍稀釋并用抗五步蛇血清中和以終止β-丙內酯滅活并消除蛇毒毒性的方法是有效的。

中和劑對照中，相同濃度的抗五步蛇血清中加入指示病毒VACV和VSV后，與病毒本身滴度相比，其滴度下降值均<0.5 logs，表明該中和劑本身對指示病毒VACV和VSV均沒有滅活作用，用該五步蛇血清中和蛇毒對病毒滅活效果不會產生影響。

未處理對照中，蛇毒溶液和牛血清白蛋白溶液中加入指示病毒后隨實驗組于3±1℃水浴靜置24h，三批次樣品中VACV和VSV滴度下降值均<0.5 logs，表明相同工藝時間內樣品本身對指示病毒VACV和VSV均沒有滅活作用。

三批次β-丙內酯滅活蛇毒溶液中VACV和VSV第24h取樣的樣品其50倍稀釋度的細胞孔（測定為陰性的細胞孔）分別進行盲傳三代，指示細胞Vero細胞均正常生長，即盲傳三代無病變，表明指示病毒VACV和VSV被完全滅活。

《生物組織提取制品和真核細胞表達制品的病毒安全性評價技術評審一般原則》中規定“對于生物組織提取制品應包含兩種從機制上能夠互補的有效工藝步驟，至少一個處理步驟應具有針對非脂包膜病毒的去除和/或滅活效應;”“一般將病毒感染性滴度減少≥4 logs的處理步驟認可為有效的病毒去除/滅活工藝步驟?！?，《血液制品去除/滅活病毒技術方法及驗證指導原則》[9]中規定“如果制品的生產工藝中包含兩步或兩步以上病毒去除/滅活方法，應該分別進行病毒滅活效果驗證?！薄安《窘档土浚╨og10）≥4 logs，表示該步驟去除/滅活病毒有效。如因檢測方法造成病毒降低量<4 logs時，應盲傳三代，如無病毒檢出，可認定是有效的滅活病毒方法”。

因此本次研究表明降纖酶制備工藝中的β-丙內酯工藝是一個有效的滅活脂包膜病毒的工藝步驟。

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