丹酚酸B抑制MyD88/NF-κB/NLRP3通路對肺炎鏈球菌肺炎幼鼠的保護作用及機制

鄭麗麗，康文芹，牛莎

（焦作市人民醫院兒科一區，河南 焦作 454000）

肺炎鏈球菌是一種寄居于人體上呼吸道的球狀革蘭陽性菌，是引起兒童呼吸道感染致肺炎的常見病原菌[1]。目前，對肺炎鏈球菌肺炎的臨床治療以抗生素為主，但是，隨著抗生素的廣泛應用，肺炎鏈球的耐藥性逐年升高，導致治療效果不理想，死亡率升高[2-3]。因此，研究新型治療肺炎鏈球菌肺炎的藥物具有重要意義。中藥在防治肺炎上具有獨特的優勢，丹參為唇形科植物丹參的干燥根和根莖，具有活血化瘀、抗炎和清熱解毒等藥理作用[4]，據報道，丹參對肺炎患兒的肺功能具有一定的改善作用[5]。丹酚酸B在丹參中含量豐富，是丹參藥理活性最強的成分。本研究擬通過建立肺炎鏈球菌肺炎幼鼠模型，研究丹酚酸B對肺炎鏈球菌肺炎幼鼠的保護作用及其機制，為臨床治療肺炎鏈球菌肺炎提供實驗參考。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物 90只3周齡SPF級雄性SD大鼠購自北京維通利華實驗動物技術公司，體質量50～60 g，生產許可證號：SCXK（京）2016-0011。適應性飼養7 d后開始實驗。

1.1.2 實驗藥品和儀器 丹酚酸B（質量分數98%，批號：200719D）購自南京道斯夫生物科技有限公司；肺炎鏈球菌標準菌株（批號：ATCC49619）購自上海碩欣生物科技有限公司；蘇木素伊紅染色劑（批號：G1120）購自北京索萊寶生物科技有限公司；腫瘤壞死因子-α（tumor necrosis factor-α,TNF-α）、白細胞介素-6（interleukin-6，IL-6）ELISA試劑盒、兔抗大鼠髓樣分化因子88（myeloid differentiation factor 88,MyD88）、核因子κB p65（nuclear factorκB p65,NF-κB p65)、p-NF-κB p65、Nod樣受體蛋白 3（Nod-like receptor pyrin domain containing 3,NLRP3）、GAPDH抗體和羊抗兔IgG二抗購自英國ABCam公司（批號：ab236712；ab234570；ab219413；ab239882；ab183559；ab270449；ab8245；ab150077）；BCA試劑盒（批號：P001S）購自上海碧云天生物技術有限公司；flexiVent型動物肺功能儀購自加拿大SCIREQ公司；HD-310型生物組織自動脫水機、HistoCore_Arcadia型包埋機、RM2016型石蠟切片機均購自德國徠卡公司；Biotek Synergy 2 H1 HT型酶標儀購自美國BioTek公司。

1.2 方法

1.2.1 建模與給藥 幼鼠分為對照組、模型組、丹酚酸B低、中、高劑量組，每組18只。經鼻腔滴入肺炎鏈球菌菌液100 μL（菌量3×107CFU/mL）建立肺炎鏈球菌肺炎幼鼠模型[6]（對照組幼鼠經鼻腔滴入等量生理鹽水）。給予菌液后，丹酚酸B低劑量組死亡2只幼鼠，模型組和丹酚酸B中、高劑量組各死亡1只幼鼠。造模后1 d，丹酚酸B低、中、高劑量組幼鼠分別灌胃10、20、40 mg/kg的丹酚酸B[7]，每日1次，連續7 d，對照組和模型組灌胃等量生理鹽水。至干預結束時，模型組共死亡3只幼鼠，干預期間丹酚酸B各劑量組無幼鼠死亡。觀察幼鼠一般情況。

1.2.2 幼鼠肺功能指標檢測 末次干預后2 h，腹腔麻醉，頸部備皮，暴露氣管，進行氣管插管，采用肺功能儀檢測用力肺活量（forced vital capacity,FVC）和呼氣峰流速（peak expiratory flow,PEF）。

1.2.3 樣本取材 肺功能檢測完成后，開胸取肺組織，各組隨機取5只幼鼠肺組織固定于4%（φ）多聚甲醛溶液中，再從各組取5只幼鼠肺組織加生理鹽水制成勻漿，4℃離心（3 000 r/min，10 min，r=8 cm），取上清液保存于-20℃；取各組剩余幼鼠肺組織液氮保存，待進行RT-qPCR檢測和Western blot檢測。

1.2.4 HE染色觀察肺組織病理學變化 肺組織在4%多聚甲醛溶液中固定24 h，脫水后石蠟包埋切片，厚度5 μm，蘇木素染色5 min，流水沖洗，1%鹽酸酒精分化10 s，1%氨水返藍后流水沖洗，伊紅染液染色3 min，流水沖洗，脫水，透明，封片，光學顯微鏡觀察各組幼鼠肺組織病理學變化。

1.2.5 ELISA法檢測肺組織TNF-α和IL-6水平 取肺組織勻漿上清液，酶標板標準品孔加梯度稀釋的標準品，樣品孔加上清液及其稀釋液，37℃孵育30 min，加酶標試劑（空白孔除外），37℃孵育1 h后加顯色液顯色20 min，標準品孔出現顏色變化時加終止液，以空白孔調零，450 nm波長測吸光度值（A），使用CurveExpert軟件根據標準品濃度與吸光度值繪制標準曲線，計算TNF-α和IL-6含量。

1.2.6 RT-qPCR檢測肺組織MyD88、NF-κB p65和NLRP3 mRNA表達水平 取部分液氮保存肺組織，Trizol法提取總RNA，檢測RNA濃度及純度。利用反轉錄試劑盒合成cDNA。反應條件為預變性95℃ 5 min，變性95℃ 10 s，56℃ 10 s循環40次。引物序列GAPDH：上游（5′-TGACCTCAACTACATGGTCTACA-3′），下游（5′-CTTCCCATTCTCGGCCTTG-3′）；MyD88：上游（5′-AAGGTGTCGTCGCATGGTG-3′），下游（5′-TTGGTGCAAGGGTTGGTATAGT-3′）；NF-κB p65：上游（5′-ACGATCTGTTTCCCCTCATC-3′），下游（5′-TGCTTCTCTCCCCAGGAATA-3′）；NLRP3：上游（5′-GTGTTGTCAGGATCTCGCATTG-3′），下游（5′-AGCAGCACAGTGAAGTAAGGCC-3′）。以GAPDH為內參，2-△△Ct法計算目的基因表達水平。

1.2.7 Western blot檢測肺組織 MyD88、p-NF-κB p65、NF-κB p65和NLRP3蛋白表達水平 取200 mg液氮保存肺組織，加入裂解液裂解30 min，4℃12 000 r/min，r=8 cm離心10 min，收集上清，調整蛋白上樣量40 μL，10%SDS-PAGE凝膠電泳（80 V恒壓電泳20 min，100 V恒壓電泳90 min），轉至PVDF膜（300 mA恒流轉膜1 h），加5%脫脂牛奶室溫封閉2 h，加入一抗（1∶1 000），4℃孵育過夜，洗膜后加入二抗（1∶3 000），再次洗膜，滴加ECL顯色劑顯影，以GAPDH為內參，計算目標蛋白表達量。

1.3 統計學分析

2 結果

2.1 各組幼鼠一般情況

干預1周后，對照組幼鼠精神狀態良好，皮毛有光澤，進食、飲水和活動正常；與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠體型消瘦，精神倦怠，活動減少。

2.2 各組幼鼠肺功能指標

與對照組比較，模型組幼鼠FVC和PEF降低（P＜0.05）；與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠FVC和PEF升高（P＜0.05）；與丹酚酸B低劑量組比較，丹酚酸B中、高劑量組幼鼠FVC和PEF升高（P＜0.05）；與丹酚酸B中劑量組比較，丹酚酸B高劑量組幼鼠FVC和PEF升高（P＜0.05）。見表1。

表1 各組幼鼠肺功能指標Table 1 Pulmonary function indexes of young mice in each group(±s)

表1 各組幼鼠肺功能指標Table 1 Pulmonary function indexes of young mice in each group(±s)

與對照組比較：*P＜0.05；與模型組比較：#P＜0.05；與丹酚酸B低劑量組比較：@P＜0.05；與丹酚酸B中劑量組比較：&P＜0.05。

組別對照組模型組丹酚酸B低劑量組中劑量組高劑量組n 18 15 16 17 17 FVC/mL 7.52±0.72 3.89±0.33*4.77±0.51*#5.59±0.48*#@6.39±0.66*#@&PEF/（mL·s-1）9.81±1.22 4.43±0.49*5.48±0.52*#6.27±0.62*#@7.63±0.94*#@&

2.3 各組幼鼠肺組織病理變化

對照組幼鼠肺組織結構完整，無明顯病理改變；模型組幼鼠肺組織結構模糊，有大量炎性細胞浸潤；丹酚酸B各劑量組幼鼠炎性浸潤得到不同程度減輕，其中以丹酚酸B高劑量組減輕效果最明顯。見圖1。

圖1 各組幼鼠肺組織HE染色結果（200×）Figure 1 HE staining results of lung tissue of young mice in each group(200×)

2.4 各組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平

與對照組比較，模型組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平升高（P＜0.05）；與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平降低（P＜0.05）；與丹酚酸B低劑量組比較，丹酚酸B中、高劑量組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平降低（P＜0.05）；與丹酚酸B中劑量組比較，丹酚酸B高劑量組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平降低（P＜0.05）。見表2。

表2 各組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平Table 2 Levels of TNF-α and IL-6 in lung tissue of young mice in each group(±s,n=5)ρ/（pg·mL-1）

表2 各組幼鼠肺組織TNF-α和IL-6水平Table 2 Levels of TNF-α and IL-6 in lung tissue of young mice in each group(±s,n=5)ρ/（pg·mL-1）

與對照組比較：*P＜0.05；與模型組比較：#P＜0.05；與丹酚酸B低劑量組比較：@P＜0.05；與丹酚酸B中劑量組比較：&P＜0.05。

組別對照組模型組丹酚酸B低劑量組中劑量組高劑量組TNF-α 31.76±2.65 91.36±10.27*76.03±7.30*#69.52±6.59*#@52.51±4.55*#@&IL-6 53.56±6.37 158.15±14.09*110.30±10.97*#91.15±9.78*#@80.30±8.06*#@&

2.5 各組幼鼠肺組織MyD88、NF-κB p65和NLRP3 mRNA表達水平

與對照組比較，模型組幼鼠MyD88和NLRP3 mRNA表達升高（P＜0.05）；與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠肺組織MyD88和NLRP3 mRNA表達水平降低（P＜0.05）；與丹酚酸B低劑量組比較，丹酚酸B中、高劑量組幼鼠肺組織MyD88和NLRP3 mRNA表達水平降低（P＜0.05）；與丹酚酸B中劑量組比較，丹酚酸B高劑量組幼鼠MyD88和NLRP3 mRNA表達水平降低（P＜0.05）。見表3。

表3 各組幼鼠肺組織MyD88、NF-κB p65和NLRP3 mRNA表達水平Table 3 The expression levels of MyD88，NF-κB p65 and NLRP3 mRNA in the lung tissue of young mice in each group(±s)

表3 各組幼鼠肺組織MyD88、NF-κB p65和NLRP3 mRNA表達水平Table 3 The expression levels of MyD88，NF-κB p65 and NLRP3 mRNA in the lung tissue of young mice in each group(±s)

與對照組比較：*P＜0.05；與模型組比較：#P＜0.05；與丹酚酸B低劑量組比較：@P＜0.05；與丹酚酸B中劑量組比較：&P＜0.05。

組別對照組模型組丹酚酸B低劑量組中劑量組高劑量組MyD88 0.96±0.11 6.23±0.43*NF-κB p65 1.04±0.10 1.27±0.74 NLRP3 0.97±0.10 8.71±1.21*5.99±0.47*#4.04±0.38*#@2.51±0.30*#@&n 8 5 6 7 7 4.74±0.45*#3.83±0.38*#@2.73±0.21*#@&1.79±0.56 1.52±0.68 1.39±0.43

2.6 各組幼鼠肺組織MyD88、p-NF-κB p65、NF-κB p65和NLRP3蛋白表達水平

與對照組比較，模型組幼鼠肺組織MyD88、p-NF-κB p65和 NLRP3蛋白表達水平升高（P＜0.05）；與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠肺組織MyD88、p-NF-κB p65和NLRP3蛋白表達水平降低（P＜0.05）；與丹酚酸B低劑量組比較，丹酚酸B中、高劑量組幼鼠肺組織 MyD88、p-NF-κB p65 和NLRP3蛋白表達水平降低（P＜0.05）；與丹酚酸B中劑量組比較，丹酚酸B高劑量組幼鼠MyD88、p-NF-κB p65和 NLRP3蛋白表達水平降低（P＜0.05）。見表4、圖2。

圖2 各組幼鼠肺組織 MyD88、p-NF-κB p65、NF-κB p65 和NLRP3蛋白表達圖Figure 2 The protein expression of MyD88，p-NF-κB p65，NF-κB p65 and NLRP3 in the lung tissue of young mice in each group

表4 各組幼鼠肺組織MyD88、p-NF-κB p65、NF-κB p65和NLRP3蛋白表達水平Table 4 The protein expression levels of MyD88，p-NF-κB p65，NF-κB p65 and NLRP3 in the lung tissue of young mice in each group(±s)

表4 各組幼鼠肺組織MyD88、p-NF-κB p65、NF-κB p65和NLRP3蛋白表達水平Table 4 The protein expression levels of MyD88，p-NF-κB p65，NF-κB p65 and NLRP3 in the lung tissue of young mice in each group(±s)

與對照組比較：*P＜0.05；與模型組比較：#P＜0.05；與丹酚酸B低劑量組比較：@P＜0.05；與丹酚酸B中劑量組比較：&P＜0.05。

組別對照組模型組丹酚酸B低劑量組中劑量組高劑量組n 8 5 6 7 7 MyD88 0.19±0.02 0.79±0.05*0.58±0.06*#0.42±0.04*#@0.29±0.02*#@&NF-κB p65 1.01±0.07 1.04±0.09 1.02±0.09 1.01±0.07 1.04±0.06 p-NF-κB p65 0.21±0.02 0.82±0.06*0.63±0.05*#0.49±0.05*#@0.36±0.03*#@&NLRP3 0.26±0.03 0.88±0.07*0.68±0.05*#0.49±0.06*#@0.41±0.04*#@&

3 討論

肺炎可分為細菌性肺炎和病毒性肺炎，肺炎鏈球菌是細菌性肺炎的常見致病菌[8]，當機體免疫力低下時，肺炎鏈球菌侵入人體，引起肺泡壁水腫、肺泡炎、甚至累及全肺[9]，兒童的自身免疫功能尚不成熟，因此，肺炎患者中兒童較多[10]。本研究采用鼻腔滴入肺炎鏈球菌菌液的方式建立肺炎鏈球菌肺炎幼鼠模型，HE染色結果顯示，對照組幼鼠肺組織結構完整，無明顯病理改變，而模型組幼鼠肺組織結構模糊，有大量炎性細胞浸潤，提示模型制備成功。

FVC和PEF是判斷肺功能的重要指標，指標低于正常值表示肺功能低下[11]，通過檢測發現，模型組幼鼠FVC和PEF較對照組降低，與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠FVC和PEF升高，提示丹酚酸B可改善肺炎鏈球菌肺炎幼鼠肺功能，且改善作用存在劑量依賴性。機體感染肺炎鏈球菌后，巨噬細胞活化，產生大量TNF-α、IL-6和IL-1β等促炎因子，促進炎癥反應[12]，因此，減輕炎癥反應是延緩肺炎鏈球菌肺炎發展的關鍵。李建成等[13]研究表明，丹酚酸B能夠減輕金黃色葡萄球菌肺炎小鼠體內炎癥，促進肺組織修復。本研究結果顯示，模型組幼鼠肺組織中TNF-α和IL-6水平較對照組顯著升高，經丹酚酸B治療后，TNF-α和IL-6水平顯著下降，提示丹酚酸B可減輕肺炎鏈球菌肺炎幼鼠炎癥反應。

MyD88/NF-κB/NLRP3是機體內經典的促炎信號傳導途徑[14]。MyD88是Toll樣受體（TLR）信號通路中的關鍵接頭分子，NF-κB家族由p50、p52、p65、c-Rel和Rel B 5個相關的轉錄因子組成[15]，其中，NF-κB p65是細胞內最常見的作用形式，NF-κB p65蛋白在磷酸化后發揮作用[16]。NLRP3炎癥小體是NF-κB介導的炎性途徑中重要的下游因子，當機體受到刺激時，MyD88可激活NF-κB，誘導NLRP3炎癥小體表達[17]。通過抑制TLR4/MyD88/NF-κB信號通路，可抑制NLRP3炎癥小體激活，從而減輕炎癥反應[18]。本研究結果顯示，與對照組比較，模型組幼鼠肺組織MyD88、NLRP3 mRNA和蛋白表達水平以及p-NF-κB p65蛋白表達水平均顯著升高，與模型組比較，丹酚酸B各劑量組幼鼠肺組織中以上mRNA和蛋白表達水平均下降，提示丹酚酸B可能通過抑制MyD88/NF-κB/NLRP3通路相關蛋白及基因表達，減輕肺炎鏈球菌小鼠炎癥反應。

綜上所述，丹酚酸B對肺炎鏈球菌肺炎幼鼠具有治療作用，其機制可能與抑制MyD88/NF-κB/NLRP3通路，減輕炎癥反應有關。