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VEGF-殼聚糖微囊復合緩釋載體的制備

2015-09-28 01:06伍尚敏洪曉婭蘇曉三
中國美容醫學 2015年22期
關鍵詞:工作液微囊藥量

伍尚敏,洪曉婭,伍 可,蘇曉三,余 璐,高 揚

(1.昆明市第一人民醫院暨昆明醫科大學附屬甘美醫院·昆明學院附屬醫院整形外科云南昆明650011;2.大連醫科大學附屬第二醫院婦產科遼寧大連116000)

VEGF-殼聚糖微囊復合緩釋載體的制備

伍尚敏1,洪曉婭1,伍可2,蘇曉三1,余璐1,高揚1

(1.昆明市第一人民醫院暨昆明醫科大學附屬甘美醫院·昆明學院附屬醫院整形外科云南昆明650011;2.大連醫科大學附屬第二醫院婦產科遼寧大連116000)

目的:研究VEGF(vascular endothelial growth factor)-殼聚糖緩釋微囊的制備工藝。方法:采用離子沉淀-凝聚法制備VEGF-殼聚糖緩釋微囊,并檢測其包封率和載藥量。結果:實驗制備的VEGF-殼聚糖緩釋微囊包封率為87%,載藥量為4.35%,微囊大小均勻,光潔度與成形度好。結論:本制備工藝方法簡單易行,穩定,重現性好。說明利用天然高分子多糖類物質殼聚糖來包封VEGF是切實可行的,VEGF-殼聚糖緩釋微囊具有進一步研究和應用價值。

血管內皮生長因子;殼聚糖;微囊;載藥量;包封率

在組織移植和創傷修復的過程中局部微循環的建立和充足的血供對提高移植組織的存活率、促進創傷的快速愈合具有重要作用。傳統方法多采用直接添加外源性生長因子的手段,此種添加方式易造成其濃度僅一過性增高而難以形成長期穩定的有效濃度。研究表明,血管內皮生長因子是血管生成的重要因子,它促進血管內皮細胞的增殖,血管增生,延長血管內皮細胞的壽命以及增加血管通透性和血管維持作用[1-2]。外源性單純局部供給VEGF往往利用率較低或較快代謝,影響了移植物的存活,因而研制一種能提高VEGF生物利用度的長效緩釋制劑就顯得尤為重要。

殼聚糖是一種無毒,無免疫抗原反應,可生物降解的天然高分子聚陽離子聚合物,具有pH響應性和良好的生物相容性及成膜性、且易于進行修飾[3-4],可作為優良的藥物控緩釋及靶向載體,黏膜吸附劑、吸收促進劑等,是一種新型生物醫學和藥物傳遞應用材料[5]。

近年來,殼聚糖作為控釋輔料在藥物傳遞系統中得到了廣泛的應用,曾見報道納米微囊-VEGF復合體對創傷、慢性創面等的愈合影響研究[6-9],但較少論及VEGF-殼聚糖緩釋微囊具體制備方法及結果測試。本實驗制備VEGF殼聚糖緩釋微囊并檢測其包封率、載藥量和體外釋放特征,旨在為VEGF-殼聚糖微囊復合緩釋載體在相關研究中的應用提供依據。

1 材料和方法

1.1材料

殼聚糖(sigma 448869)、吐溫-80(Solarbio T8360)、硫酸鈉(西隴化工股份有限公司)、冰醋酸(光東光華科技股份有限公司)、重組大鼠VEGF溶液(PEPROTECH 400-31)、大鼠VEGF ELISA試劑盒(欣博盛ERC103)、PBS(Hyclone SH30256);使用儀器有:移液槍、磁力攪拌器、超聲波發生器、顯微鏡、離心機、電子天平、凍干機、酶聯免疫檢測儀,恒溫孵育箱、紫外分光光度計。

1.2方法

1.2.1制備空白殼聚糖微囊球:制作空白殼聚糖,用作VEGF載體。

1.2.1.1微囊球溶解液:①2%冰醋酸溶液(2ml冰醋酸加雙蒸水至100ml,pH值6.2);②20%硫酸鈉溶液(20克硫酸鈉溶解到雙蒸水中,定容至100ml)。

1.2.1.2稱取0.25g殼聚糖,用100ml 2%冰醋酸溶液溶解、磁力攪拌器攪拌20min。加入1ml吐溫-80,磁力攪拌20min,滴加20%的硫酸鈉溶液至溶液渾濁。

1.2.1.3取少量溶液通過紫外分光光度計于500nm處檢測其濁度來判定微球的形成。微球形成后繼續磁力攪拌30min,超聲波處理10min,轉移到50ml離心管中,1 200rpm離心15min,上清液倒掉。重復“加入5ml雙蒸水重懸,1 200rpm離心15min,上清液倒掉”3次。冷凍干燥,4℃保存。

1.2.2制備VEGF殼聚糖微囊

1.2.2.1溶液:①空白殼聚糖微囊溶解液;②2%冰醋酸溶液(2ml冰醋酸加雙蒸水至100ml,pH值6.2);③重組大鼠VEGF溶液(30μg VEGF溶于500μl雙蒸水中)。

1.2.2.2制備VEGF殼聚糖微囊:取1mg冷凍干燥的空白殼聚糖微球,用2ml醋酸緩沖液溶解,加入500μl(500μg)VEGF溶液。4℃條件下磁力攪拌60min,轉入到15ml離心管。4℃,10 000~12 000rpm離心10min,收集上清液,為離心液。沉淀中加入1ml雙蒸水,重懸。4℃,10 000~12 000rpm離心10min,收集上清液,為洗滌液。沉淀中加入1ml雙蒸水,重懸。收集上清液,為洗滌液。沉淀中加入1ml雙蒸水,重懸。將收集的上清液(離心液和洗滌液)收集合并為“合并液”共3.5ml,放入4℃冰箱備用。沉淀物凍干保存與-20℃備用。

1.2.3VEGF殼聚糖微囊載藥量及其包封率的測定

1.2.3.1樣品準備:將制備VEGF殼聚糖微囊時所收集的合并液用ELISA試劑盒中的標準品跟樣品通用稀釋液稀釋1 000倍。

1.2.3.2檢測前準備工作:提前20min從冰箱中取出試劑盒,以平衡至室溫;用雙蒸水將20×濃縮洗滌液稀釋成1×工作液;標準品:加入標準品跟樣品通用稀釋液0.5ml至凍干標準品中,靜止15min,待其充分溶解后,輕輕混勻(濃度為1 000pg/ml)。然后再進行梯度稀釋,稀釋后標準曲線使用濃度為1 000pg/ml、500pg/ml、250pg/ml、125pg/ml、62.5pg/ml、31.25pg/ ml、15.60pg/ml;生物素化抗體工作液:使用前20min,用生物素化抗體稀釋液將30×的濃縮生物素化抗體稀釋成1×工作液;酶結合物工作液:使用前20min,用酶結合物稀釋液將30×的濃縮酶結合物稀釋成1×工作液。

1.2.3.3測定吸光度:從已平衡至室溫的密封袋中取出試驗所需板條,空白孔加標準品標本通用稀釋液,其余相應孔中加不同濃度標準品和待測樣品(100μl/孔),用封板膠紙封住反應孔,36℃孵箱孵育90min。提前20min準備生物素化抗體工作液。甩盡孔內液體,在潔凈的吸水紙上拍干,每孔加洗滌液350μl,靜止30s后甩盡液體,在干凈的吸水紙上排干,洗板5次??瞻卓准由锼鼗贵w稀釋液,其余孔加入生物素化抗體工作液(100μl/孔)。用新封板膠紙封住反應孔,36℃孵箱孵育60min。提前20min準備酶結合物工作液。避光室溫(22~25℃)放置。洗板5次??瞻卓准用附Y合物稀釋液,其余孔加入酶結合物工作液(100μl/孔)。用新封板膠紙封住反應孔,36℃孵箱,避光孵育30min。打開酶標儀電源,預熱儀器,設置好檢測程序。洗板5次。加入顯色底物(TMB)100 μl/孔,避光36℃孵箱,避光孵育15min。加入終止液100μl/孔,混勻后即刻測量OD450值(3min內)。

1.2.4計算包封率(%)和載藥量(%):根據標準品所測的OD值,得出標準曲線和標準曲線公式。包封率(%)=(投藥量-合并液中藥量)/投藥量×100%,載藥量(%)=(投藥量-合并液中藥量)/微囊重量×100% 1.2.5 VEGF殼聚糖微囊囊體外釋放實驗:取0.05mg VEGF-殼聚糖微囊,混懸于1ml PBS中,濃度為50μg/ml。37℃恒溫下磁力攪拌30min。將攪拌好的VEGF-殼聚糖微囊用PBS進行梯度稀釋,稀釋梯度為10,102,103,104,105,稀釋后VEGF-殼聚糖微囊的濃度分別為5μg/ml、0.5μg/ml、0.05μg/ml、0.005μg/ml、0.0005μg/ml。分別將5個梯度的VEGF-殼聚糖微囊溶液于24h、48h、72h、96h、120h時收集樣品,每個樣本收集500μl溶液。將收集的樣品以10 000r/min離心15min,取上清液10μl,凍存于-20℃冰箱中。待120h后樣品全部收集完成,ELISA檢測其450nm處的OD值,根據所測樣品OD值得出標準曲線公式(表3)及標準曲線(圖4)。

2 結果

2.1微囊500nm處的OD值

空白管OD值0.035,殼聚糖管OD值1.975,OD500nm=1.975-0.035=1.940。

2.2微囊外觀

在光學顯微鏡100倍下觀察制的空白殼聚糖微囊(圖1)和VEGF殼聚糖微囊(圖2)。

2.3VEGF殼聚糖微囊包封率(%)和載藥量(%)

不同濃度標準品和待測樣品(100μl/孔)OD450值見表1,標準曲線公式為:Y=0.00104X+ 0.0842,R2=0.999,VEGF殼聚糖微囊樣品在450nm處的OD值為1.292、1.290、1.291,平均值為1.291,即

圖1 A超聲波處理之前空白殼聚糖微囊顯微鏡照片(×200)

圖1 B超聲波處理之后空白殼聚糖微囊顯微鏡照片(×200)

表1 450nm處所測OD值的數據

表2 標準曲線公式

公式中的Y=1.291,將1.291帶入公式中得出X= 1114(pg/ml),樣品稀釋倍數為1 000倍,合并液總體積為3.5ml,則3.5ml合并液中的VEGF量為:1.114X10-3×103×3.5=3.9μg,包封率=(30-3.9)/ 30×100%=87%,載藥量=(30-3.9)/600×100%= 4.35%。標準曲線見圖3。

2.5VEGF殼聚糖微囊體外釋放趨勢

ELISA檢測450nm處的OD值,得出標準曲線公式(表2)及標準曲線(圖4)。根據標準曲線的線性回歸方程,即可得出VEGF-殼聚糖微囊在PBS溶液中同一濃度不同時間藥物釋放趨勢(圖5)和同一時間不同濃度藥物釋放趨勢曲線(圖6)。

3 討論

殼聚糖微囊包封藥物有以下特點:①有明顯的控制藥物釋放和延長藥效的作用;②增加藥物的靶向性;③降低所包封藥物的毒副作用;④提高藥物的穩定性;⑤提高疏水性藥物對細胞膜的通透性。

圖2 VEGF殼聚糖微囊顯微鏡照片(×200)

圖3 根據標準品所測的OD值作標準曲線

圖4 VEGF殼聚糖微囊在PBS溶液中釋放的標準曲線

圖5 同一濃度不同時間藥物釋放趨勢

圖6 同一時間不同濃度藥物釋放趨勢

本實驗采用離子沉淀-凝聚法制備VEGF-殼聚糖緩釋微囊,微囊在500nm處的OD值:空白管OD值0.035,殼聚糖管OD值1.975,OD500nm=1.975-0.035=1.940,即實驗組(殼聚糖組)跟空白組(冰醋酸溶液跟硫酸鈉溶液)相比,OD值明顯升高,可見實驗組已經形成了大量的殼聚糖微囊。在圖1中,從A圖和跟B圖看出,超聲波處理之后殼聚糖微囊大大降低了粘附程度,這樣更有利于VEGF進入殼聚糖中。

載藥量可直接影響臨床用藥劑量,而包封率則體現了制備工藝的優劣及制劑質量[10]。本實驗所得的VEGF殼聚糖緩釋微囊包封率尚好,為87%,表明本實驗VEGF-殼聚糖緩釋微囊制備工藝較好,原料利用率高,微球的球型度和光潔度也比較好。但載藥量較低,為4.35%,預計可通過增加VEGF濃度加以提升,或者進一步尋求更利于提高載藥量的方法。

從圖5中可以看出:當VEGF殼聚糖微球的濃度相同時,隨著時間的推移,VEGF是持續地從殼聚糖中釋放出來,當釋放到一定量時VEGF將不再釋放,其中12~48hOD值變化較小,即VEGF的濃度變化較小,VEGF殼聚糖微球中的VEGF釋放較慢,48~72hOD值變化較大,VEGF的濃度變化較大,及VEGF殼聚糖微球中的VEGF釋放較快,72~96hOD值變化又趨于平緩,VEGF殼聚糖微球中的VEGF緩慢釋放。96h之后OD值幾乎不再變化,即VEGF幾乎不再釋放。

圖6顯示:5個不同的濃度在24h之內OD值幾乎不變化,即VEGF的濃度幾乎沒有變化,VEGF殼聚糖微球中的VEGF幾乎不釋放,48h之后VEGF殼聚糖微球濃度越高,所測OD值越大,即PBS溶液中VEGF濃度越高,即48h之后VEGF殼聚糖微球濃度越高,VEGF殼聚糖微球中的VEGF釋放越多。但當VEGF殼聚糖微球濃度稀釋到1 000倍時,OD值變化緩慢,即VEGF釋放緩慢。

殼聚糖具有良好的生物相容性和生物可降解性,可作為優良的藥物控緩釋及靶向載體,黏膜吸附劑、吸收促進劑,因此利用天然高分子多糖類物質殼聚糖包封VEGF是切實可行的。由于VEGF在血管生成過程中具有重要而廣泛的活性,VEGF-殼聚糖緩釋微囊作為新劑緩釋載體,對細胞和組織等無毒性,能以適當速度被吸收降解,對VEGF有較高的包封率及穩定的緩釋效果,因而具有很好的科研和臨床應用前景。

[1]GolocheikineA,TiriveedhiV,AngaswamyN,etal. Cooperativesignalingforangiogenesisand neovascularization by VEGF and HGF following islet transplantation[J].Transplantation,2010,90(7):725 731.

[2]雷鳴,劉世清,劉宇蘭,等.轉染VEGF基因提高游離自體顆粒脂肪移植物存活率的實驗研究[J].中華整形外科雜志,2008,24(1):67-70.

[3]Zarzycki R,Modrzejewska Z.Use of chitosan in medicine and biomedicalengineering[J].PolimMed,2003,33(1-2):47-58.

[4]Jayakumar R,Prabaharan M,Nair SV,et al.Tamura H.Novel chitin and chitosan nanofibers in biomedical applications[J]. BiotechnolAdv,2010,28(1):142-50.

[5]盧華定,呂璐璐,趙慧清,等.體外培養包埋透明質酸/殼聚糖/質粒DNA納米粒的殼聚糖支架負載軟骨細胞[J].中華實驗外科雜志,2014,31(2):362-364.

[6]彭湃,韓巖,楊力,等.納米微囊-VEGF復合體轉染對慢性創面愈合影響的研究[J].中國美容醫學,2007,16(3):291-295.

[7]彭湃,郭樹忠,夏文森,等.納米微囊-VEGF復合體對創傷組織中VEGF、受體KDR的表達及微血管形成的影響[J].中國美容醫學,2007,16(4):455-4589.

[8]高崧瀛,劉長松,黃巍.微囊化對轉VEGF基因成肌細胞血管內皮生長因子分泌的實驗研究[J].黑龍江醫學,2012,36(6):417-419.

[9]蔣良福,陳鷗,褚庭綱.納米微囊緩釋VEGF促血管化修復大鼠周圍神經缺損的研究[J].同濟大學學報(醫學版),2013,34(5):7-10,15.

[10]馮怡,沈嵐,徐德生,等.麥冬皂苷腸溶微球的載藥量和包封率研究[J].中成藥,2004,26(8):611-613.

編輯/張惠娟

Preparation of VEGF-chitosan microcapsules

WU Shang-min1,HONG Xiao-ya1,WU Ke2,SU Xiao-san1,YU Lu1,GAO Yang1
(1.Department of Plastic Surgery,The First People's Hospital of Kunming,The Affiliated Calmette Hospital of Kunming Medical University,Kunming 650011,Yunnan,China;2.Department of Oncology,The Second Hospital of Dalian Medical University,Dalian 116000,Liaoning,China)

ObjectiveTo investigate the preparation of VEGF-chitosan microcapsules.Methods VEGF-chitosan microcapsules were prepared by using of ion precipitation-coacervation method,and the drug loading and encapsulation efficiency were investigated.Results The microcapsules were in uniformsize,goodfinishandshape,entrapmentefficiencyof87%,drugloadingof4.35%. Conclusions The coagulation method is simple,stable and good reproducible.The results show that it is practicable to encapsulate VEGF by using of natural polymer polysaccharide chitosan.The VEGF-chitosan microcapsules have futher development and application value.

VEGF(vascularendothelialgrowthfactor);chitosan;microcapsules;drugloading;encapsulated efficency

Q813.1

A

1008-6455(2015)22-0029-04

2015-08-15

2015-10-30

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