雞源志賀菌IpaC基因表達載體的構建及其在畢赤酵母中的表達

韓志霞+馬金玉+王雪云+蔣大偉+劉芳+許蘭菊+李克宇

摘要：為使IpaC基因表達產物保持天然的生物學活性，實現在酵母表達系統中高效表達，本研究在不改變IpaC蛋白氨基酸序列的情況下，根據酵母密碼子偏愛性優化合成IpaC#基因，分別構建真核表達載體pGAPZαA-IpaC和pGAPZαA-IpaC#，然后將線性化重組質粒電轉化至畢赤酵母X-33中，對陽性轉化子用SDS-PAGE及Western blot檢測其表達產物。結果表明，經SDS-PAGE及Western blot檢測，僅在pGAPZαA-IpaC#/X-33重組菌表達產物菌體沉淀中檢測到大小為70 ku的目的蛋白，實現了雞源志賀菌IpaC# 基因在畢赤酵母中的胞內表達，從而驗證畢赤酵母表達系統與外源基因序列的相關性，為進一步提高雞源志賀菌IpaC基因在畢赤酵母中的高效表達提供科學依據，對研究該病的發病機制具有重要意義。

關鍵詞：雞源志賀菌；IpaC基因；畢赤酵母；優化密碼子；pGAPZαA；真核表達

中圖分類號：Q786；S852.61 文獻標志碼：

文章編號：1002-1302（2016）08-0039-04

志賀菌可以感染多種物種，不僅是人，志賀菌還可以引起豬、鼠、狐貍、兔、牛等多種動物痢疾，其中以幼年動物患病率最高，嚴重的會導致死亡[1]。在志賀菌侵襲腸道過程中，毒力大質粒上Ⅲ型分泌系統分泌的IpaC蛋白通過介導細胞骨架重排而使志賀菌趁機侵入腸上皮細胞，而且只有重組純化的IpaC蛋白才能夠在一定程度上恢復志賀菌的侵襲能力[2]。在分子水平上，IpaC蛋白不同結構域具有不同生物學功能[3-5]。志賀菌對人的侵襲感染機制的研究比較深入。雞源志賀菌擁有與人源菌株相同的IpaC蛋白分子[6-8]，但是至今尚不清楚雞腸上皮細胞是否存在與人腸上皮細胞相似的IpaC蛋白受體分子。目前，雞源志賀菌IpaC基因的克隆表達在原核表達系統表達技術已經比較成熟[9-11]，但目前國內外在畢赤酵母表達系統中的研究較少。因此，為使IpaC基因表達產物保持天然的生物學活性，為研究雞腸上皮細胞上的IpaC蛋白受體分子提供研究基礎，本研究通過根據酵母表達系統對密碼子的偏愛性，對雞源志賀菌IpaC基因進行優化合成，分別構建真核表達載體pGAPZαA-IpaC和pGAPZαA-IpaC#，使IpaC和IpaC#整合到酵母染色體中，從而驗證畢赤酵母表達系統與外源基因序列的相關性，為進一步提高雞源志賀菌IpaC基因在畢赤酵母中的高效表達提供科學依據，對研究該病的發病機制具有重要意義。

1材料與方法

1.1菌株及載體

原核重組載體pET32a-IpaC/BL21為河南農業大學牧醫工程學院微生物學實驗室構建保存；酵母真核載體pGAPZαA由河南農業大學尹清強教授惠贈；宿主菌大腸桿菌（Escherichia coli） TOP10購自上海北諾生物技術有限公司；畢赤酵母菌株X-33為河南科技大學張春杰教授惠贈。

1.2酶與試劑

rTaq DNA聚合酶、DL2000、DL5000均購自TaKaRa寶生物工程（大連）有限公司；限制性內切酶EcoRⅠ、XbaⅠ均購自Fermentas公司（美國）；T4連接酶購自于New England Biolabs（英國）公司；SanPrep柱式DNA膠回收試劑盒、PCR產物純化試劑盒及質粒DNA小量提取試劑盒均購自生工生物工程（上海）股份有限公司；PCR引物合成和重組質粒的測序均由生工生物工程（上海）股份有限公司完成。蛋白胨、酵母膏、Agar power均購自OXIOD公司；瓊脂糖凝膠購自GENVIEW公司；ZeocinTM購自invitrogen公司；鼠源 6-His單克隆抗體（Anti-His Tag Mouse Monoclonal Antibody），購自美國Abbkine試劑公司；羊抗小鼠IgG-HRP，購自索萊寶公司；IpaC蛋白免疫血清及雞源志賀菌滅活疫苗免疫血清均由筆者實驗室制備并保存。

1.3IpaC#基因序列的合成

根據酵母密碼子偏愛性，在不改變氨基酸序列的情況下，對IpaC基因原序列進行優化，由北京英茂盛業生物科技有限公司合成，并將基因序列克隆到pUCE載體上，命名為pUCE-IpaC#。

1.4引物設計與合成

根據雞源志賀菌IpaC基因與IpaC#基因全序列及畢赤酵母表達載體pGAPZαA多克隆位點序列分別設計1對引物P1、P2和P3、P4，上游引物加上EcoRⅠ、下游引物加上XbaⅠ這2個酶切位點（斜體加粗為酶切位點），并根據載體pGAPZαA序列設計檢測引物P5、P6，由生工生物工程（上海）股份有限公司合成，已經進行特異性檢測。序列如下：

1.5重組載體構建

分別以pET32a-IpaC和pUCE-IpaC#為模板進行PCR擴增，將擴增產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測并切下目的條帶，用普通瓊脂糖凝膠試劑盒回收目的片段?；厥债a物和質粒pGAPZαA用EcoRⅠ和XbaⅠ限制性內切酶同時進行雙酶切并經過瓊脂糖凝膠電泳檢測正確后，分別將IpaC和IpaC#基因雙酶切產物與載體pGAPZαA雙酶切產物在T4連接酶的作用下16 ℃連接過夜。將連接產物轉化至感受態大腸桿菌TOP10，在含ZeocinTM抗性平板上進行篩選。挑取陽性單克隆，經菌液PCR、質粒雙酶切鑒定和序列分析。獲得的重組質粒命名為pGAPZαA-IpaC、pGAPZαA-IpaC#。

1.6重組質粒轉化酵母宿主菌X-33

大量提取質粒pGAPZαA-IpaC和pGAPZαA-IpaC#，用限制性內切酶AvrⅡ進行單酶切線性化，電泳后用普通瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒回收，分別電轉化至酵母菌X-33感受態細胞中，電轉條件為：1.6 kV，25 μF，400 Ω，電擊時間43 ms。電擊完畢后，馬上將1 mL冰預冷的1 mol/L山梨醇溶液加入菌體中，吹打混勻，轉至1.5 mL EP管中，30 ℃靜置培養1～2 h。取100 μL菌體懸液涂布于含有抗生素Zeocin濃度為100 μg/mL的YPD固體培養基上，待菌液完全吸收后，將平板置于30 ℃恒溫培養箱中培養1～3 d，直至單菌落出現，同時電轉空質粒pGAPZαA作對照。

1.7高抗篩選

挑取在ZeocinTM濃度為100 μg/mL平板上的單菌落，分別刺種在ZeocinTM濃度為500、1 000、2 000 μg/mL的YPD平板上，置于30 ℃恒溫培養箱中培養2～3 d，直至有單菌落出現。將高抗性陽性克隆接種于Zeocin濃度為100 μg/mL的YPD平板上培養2～3 d，直至有單菌落出現。將高抗陽性轉化子按照酵母基因組DNA小量提取試劑盒說明書操作提取酵母基因組DNA，利用檢測引物P5、P6進行PCR擴增，并將PCR擴增產物送往生工生物工程（上海）股份有限公司進行測序。

1.8重組畢赤酵母表達產物檢測

挑取鑒定正確的重組酵母單菌落接種于液體YPD培養基中，于30 ℃、250 r/min下振蕩培養過夜。次日，取0.2 mL過夜培養物接種于100 mL液體YPD培養基中，于30 ℃、250 r/min 下振蕩培養。分別在0、24、32、48、60、72、84、96、108、120、144 h的各個時間點收集上清和細胞樣品10 mL，用于SDS-PAGE及Western blot分析，同時設立pGAPZαA/X-33表達為對照組。將各個不同時間點收集的菌液在4 ℃離心機中，于5 000 r/min下離心5 min，分別取菌體沉淀和上清。沉淀轉移至無菌的EP管中。將收集的培養基上清用超濾法濃縮后進行SDS及Western blot檢測。Western blot分別用His單抗、IpaC蛋白免疫血清及雞源志賀菌滅活疫苗免疫血清進行特異性檢測。

2結果與分析

2.2重組載體的鑒定結果

挑取轉化后平板上的單菌落過夜培養，各取1 μL作模板進行PCR擴增，結果顯示，電泳出現1條約1 107 bp的特異性條帶，與目的基因片段大小一致（圖1-A）。提取的質粒pGAPZαA-IpaC#和pGAPZαA-IpaC經EcoRⅠ和XbaⅠ雙酶切電泳出現2條帶，其中1條條帶為載體質粒，約3 084 bp，另1條條帶片段長約1 097 bp，酶切結果與預期結果相一致（圖1-B）。對重組質粒測序結果分析，結果表明IpaC基因及IpaC#基因均位于pGAPZαA質粒α因子信號肽序列下游，具有正確的閱讀框。

2.3高抗性陽性轉化子的鑒定

以轉化有線性化的重組質粒pGAPZαA-IpaC和pGAPZαA-IpaC#的酵母基因組為模板，以α-Factor sequencing primer和3′ AOX1 sequencing primer為引物進行PCR，若線性化的含目的基因的重組質粒與酵母成功重組則應擴增出[FL）]

長度為1 333 bp的片段，線性化的質粒pGAPZαA與酵母成功重組則應擴增出長度為299 bp的小片段，pGAPZαA-IpaC為陽性對照。經1%瓊脂糖凝膠檢測，結果（圖2）與預期一致，PCR產物經測序，線性化的重組質粒已經成功整合到酵母基因組中。

2.4重組酵母表達產物SDS-PAGE電泳結果

分別挑取pGAPZαA-IpaC/X-33和pGAPZαA-IpaC#/X-33陽性酵母菌培養表達，不同時間取的樣品中上清和菌體沉淀進行SDS-PAGE電泳及考馬斯亮藍染色，與空載體對照菌比較X-33菌體沉淀樣品用帶His單抗作Western blot檢測，結果如圖4-A所示，菌體沉淀中蛋白大小位置與預期一致，在108 h時表達量最高。將84、96、108、120、144 h取得的樣品用IpaC蛋白免疫后血清抗體作Western blot檢測，結果如圖4-B所示，蛋白大小位置與預期一致。將84、96、108、120、144 h取得的樣品用志賀菌全菌體疫苗菌免疫的血清抗體作Western blot檢測，結果如圖4-C所示，蛋白大小位置與預期一致。

3結論與討論

真核表達系統克服了原核表達系統持續表達可能會對宿主細胞產生毒害作用，過量表達可能導致非生理反應，目的蛋白常以包涵體形式表達，導致產物純化困難的缺點，而真核表達系統能誘導基因的高效表達，可達105倍，為其他系統所不及，可以嚴格調控基因表達，人為地調控基因表達量。因此，利用真核表達系統來表達目的蛋白越來越受到重視。目前，基因工程研究中常用的真核表達系統有酵母表達系統、昆蟲細胞表達系統和哺乳動物細胞表達系統。[FL）]

畢赤酵母表達系統可使外源對蛋白進行加工修飾，使得表達的外源蛋白具有類似天然蛋白質的構象[12]。而本研究選擇的真核表達載體pGAPZαA以GAP為啟動子，在表達過程中不須要添加甲醇，操作更為簡單，其含有α信號因子，利用該信號因子可將目的蛋白分泌到培養基中獲得純度較高的蛋白[13-14]。

影響外源基因在畢赤酵母中表達量的因素很多，其中外源基因自身的特點是影響表達量的重要因素，包括密碼子使用情況、GC含量等。國內外很多研究通過將外源基因的密碼子進行優化，使外源基因的密碼子使用頻率符合畢赤酵母的密碼子偏好性的要求，取得很好的效果[15-18]。本研究通過對IpaC基因的分析發現，該基因中含有畢赤酵母的稀有密碼子，基于這種情況，本研究根據畢赤酵母的密碼子偏好性，對雞源志賀氏菌來源的IpaC基因進行優化改造，在不改變其氨基酸序列的基礎上，選擇畢赤酵母偏愛型的密碼子，并調整基因的GC含量，使其更加符合畢赤酵母的要求。優化后的IpaC#基因與原始IpaC基因序列相比，共改變了269個堿基，涉及207個氨基酸，GC含量由原來的38.83%變為 40.02%，而在畢赤酵母中GC含量一般為40%～42%，優化合成的目的基因GC含量與畢赤酵母相符。

本研究分別構建了真核表達載體pGAPZαA-IpaC和pGAPZαA-IpaC#，重組菌的表達產物經SDS-PAGE及Western blot檢測，在pGAPZαA-IpaC重組菌菌體沉淀和表達上清中均沒有檢測到目的蛋白，而在pGAPZαA-IpaC#重組菌菌體沉淀中檢測到目的蛋白大小約為70 ku，這進一步驗證了畢赤酵母真核表達系統與外源基因本身有關[19-20]。而在pGAPZαA-IpaC#重組菌表達培養基上清中并未檢測到目的蛋白，有可能是因為IpaC蛋白本身具有膜結合區，在分泌過程中與酵母細胞發生結合，也有可能是α信號肽與IpaC基因在一定程度上不匹配，為后期進一步研究IpaC蛋白在畢赤酵母中的高效表達奠定基礎。在后續試驗中，更換信號肽序列或者優化信號肽序列密碼子可能使IpaC蛋白高效分泌表達。

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