植物角質層蠟質組成、生物合成及響應外界脅迫功能研究進展

劉亞欣 高小妹 黃夢月 裴臘明

文章編號：1671-3559（2024）01-0101-05DOI：10.13349/j.cnki.jdxbn.20230426.001

摘要：為了探討植物角質層蠟質在植物響應生物脅迫與非生物脅迫中的功能，為改良植物性狀、提高作物品質及作物遺傳育種提供新的資源，對植物角質層蠟質的組成、生物合成途徑及功能進行綜述：植物角質層蠟質主要由長鏈脂肪酸及其衍生物即烷烴、醛類、酮類、初級醇、次級醇和蠟酯等組成；生物合成途徑可分為3個步驟，即C16、C18脂肪酸的從頭合成、C16、C18脂肪酸延伸形成長鏈脂肪酸和長鏈脂肪酸通過?；€原途徑和脫羰基；植物角質層蠟質在植物響應干旱、紫外線輻射和抗病蟲害等非生物和生物脅迫中發揮重要功能。指出利用新的生物技術對蠟質功能及作用機制進行深入研究，探討植物的抗逆性，是今后的研究方向。

關鍵詞：植物學；角質層蠟質；生物脅迫；非生物脅迫；合成機制

中圖分類號：Q945.78

文獻標志碼：A

開放科學識別碼（OSID碼）：

Research Progresses on Composition， Biosynthesis， and

Functions in Response to Outer Stresses of Plant Cuticular Wax

LIU Yaxin， GAO Xiaomei， HUANG Mengyue， PEI Laming

（School of Biological Science and Technology， University of Jinan， Jinan 250022， Shangdong， China）

Abstract： To explore functions of plant cuticular wax in response to biotic and abiotic stresses， and provide new resources for improving plant traits as well as enhancing crop quality and genetic breeding， composition， biosynthesis pathways， and functions of plant cuticular wax were reviewed， including main composition of plant cuticular wax such as long-chain fatty acids and their derivatives （alkanes， aldehydes， ketones， primary alcohols， secondary alcohols， and wax esters）， three steps of biosynthesis pathway such as de novo synthesis of C16 and C18 fatty acids， elongation of C16 and C18 fatty acids to form long-chain fatty acids， and synthesis of wax components through acyl reduction and decarbonylation pathways of long-chain fatty acids， as well as important functions of plant cuticular wax in responses to abiotic and biotic stresses such as drought， ultraviolet radiation and disease and pest resistance. The future research direction was pointed out to be using new biotechnology to research functions and mechanism of wax and discussing stress resistance of plants.

Keywords： botany; cuticle wax; biotic stress; abiotic stress; synthesis mechanism

大多數植物的地上部分都覆蓋著一層疏水性角質層，這是植物抵御外界脅迫的第一道防線，主要由蠟質和角質組成。角質是一種三維聚合物，主要由中間鏈， ω-羥基， C16、C18環氧羥基脂肪酸通過酯鍵交聯形成，呈網狀結構，角質是角質層的支撐結構［1］。蠟質主要由超長鏈脂肪酸及其衍生物， 如烷

收稿日期：2022-11-21????????? 網絡首發時間：2023-04-27T10：20：01

基金項目：國家自然科學基金項目（31801278）

第一作者簡介：劉亞欣（1998—），女，山東棗莊人。碩士研究生，研究方向為植物分子育種。E-mail：liuyx122345@163.com。

通信作者簡介：裴臘明（1983—），女，山東日照人。副教授，博士，研究方向為作物遺傳育種。E-mail：mls_peilm@ujn.edu.cn。

網絡首發地址：https：//kns.cnki.net/kcms/detail/37.1378.N.20230426.1715.002.html

烴、初級醇、次級醇、醛、酮和蠟酯等組成，是角質層實現功能的主要承擔者［2］，因此，蠟質的功能及合成機制備受關注。

1? 植物表皮蠟質的組成

大多數植物表皮蠟質主要由超長鏈脂肪酸及其衍生物組成，如烷烴、初級醇、次級醇、醛、酮和蠟酯［2］，碳鏈長度大多在18～36個碳原子之間，較少見的有環狀化合物和甾醇化合物［3］。在不同植物中蠟質組分有所不同，如甘蔗的表皮蠟質主要由脂肪酸和烷烴組成［4］；玉米的表皮蠟質主要由醛和初級醇組成［5］；烷烴和酮類是韭菜葉中表皮蠟質的主要成分［6］。同一植物不同組織的蠟質成分也不同，如紫苜蓿葉的表皮蠟質以初級醇為主，而在莖中烷烴為主［7］。

2? 植物表皮蠟質的生物合成

植物表皮蠟質的合成途徑可分為3個步驟：1）C16、C18脂肪酸的從頭合成；2）C16、C18脂肪酸延伸形成蠟質合成前提物質即超長鏈脂肪酸（VLCFAs）；3）VLCFAs通過?；€原途徑和脫羰基途徑合成烷烴、醛類、酮類、初級醇、次級醇和蠟酯等蠟質組分［8］。以上合成過程在植物表皮細胞中完成。

2.1? C16、C18脂肪酸的從頭合成

C16、C18脂肪酸的從頭合成是在質體中進行的。在質體中，乙酰輔酶A在乙酰輔酶A羧化酶的催化下，形成丙二酰單酰輔酶A；丙二酰單酰輔酶A在脂肪酸合成酶復合體的催化下經縮合、還原、脫水和還原4步循環反應合成相應的?；?ACP，每個循環反應?；溤黾?個碳原子。當碳鏈長度為16或18時，循環反應停止，C16或C18的?；?ACP被?；鵄CP硫酯酶水解成C16或C18脂肪酸。

2.2? 長鏈脂肪酸及其衍生物的合成

脂肪酸的進一步延長是在內質網中進行的［9］。C16、C18脂肪酸在胞質中被長鏈?；o酶A合成酶催化形成相應的?；o酶A并轉運至內質網中［10］。在內質網中?；o酶A被脂肪酸延長酶復合體通過循環反應催化形成C20、C22、…、C36長鏈脂肪酸［11］。該過程與脂肪酸的從頭合成相似，同樣需要經4步反應，即縮合、還原、脫水和還原。脂肪酸延長酶復合體由β-酮脂酰輔酶A合成酶（KCS）、β-酮脂酰輔酶A還原酶（KCR）、β-羥酯酰輔酶A脫水酶（HCD）和反式烯脂酰輔酶A還原酶（ECR）4種酶組成，每個循環反應增加2個碳原子［12-13］。長鏈脂肪酸延伸的限速步驟是由KCS催化的，KCS是限速酶［14］。第1個編碼KCS酶的基因是從缺少長鏈脂肪酸的擬南芥突變體中分離出來的，因此將該基因命名為FAE1［15］。在擬南芥中，KCS基因家族有21個成員，其中8個編碼KCS［16］。AtFAE1（KCS18）在種子發育過程中發揮作用，并參與C20、C22、C24、C26脂肪酸的合成［15］；AtKCS5參與C26、C28、C30脂肪酸的合成［17］。 在玉米中， GL4是擬南芥CER6（KCS6）的同源基因， 參與幼苗葉片角質層蠟質的積累［18-19］；WSL1和ONI1是水稻中的2個KCS基因， 分別是葉片角質層蠟質的生物合成和新鞘正常發育所必需的［18］；在番茄中CER6是的編碼KCS的基因， 參與果實角質蠟質的積累［20］。

VLCFAs通過脫羰基途徑和?；€原基途徑合成各種蠟質組分。 在脫羰基途徑中， 主要合成醛類、酮類、烷烴和次級醇等。 首先VLCFAs被還原成醛類， 然后通過脫羰基反應形成烷烴， 烷烴可進一步修飾為次級醇和酮類［21］。 有學者對擬南芥中幾個CER基因在脫羰基途徑中的作用進行了研究。 CER3編碼VLCFAs還原酶， 將VLCFAs還原成醛， 在CER3缺失突變體中醛類、烷烴、次級醇和酮的含量顯著減少［21-24］；CER1編碼脫羰基酶， 將醛脫羰基為烷烴， 在CER1缺失突變體中烷烴、次級醇和酮類的含量顯著減少， 醛類含量略有增加［21， 25-26］。 研究［26］表明， 在擬南芥中CER1與CER3相互作用共同參與烷烴的合成；酵母雙雜實驗證明細胞色素b5亞型可與CER1和CER3相互作用并作為氧化還原輔助因子參與烷烴的合成。在?；€原途徑中，主要合成初級醇和蠟酯等。在擬南芥CER4突變體中初級醇和蠟酯的含量顯著減少，醛類、烷烴、次級醇和酮的含量略有增加；通過實驗進一步證明CER4編碼與醇合成相關的長鏈脂肪酰輔酶A還原酶，參與植物表皮蠟質中初級醇的合成［27］。蠟酯是由脂肪醇和脂肪酸形成的酯類物， 主要存在于角質層中。研究［28］表明，AtWSD1基因所編碼的蛋白是蠟酯合酶或二?；视王；D移酶家族中的一員，參與蠟酯的合成。

2.3? 植物表皮蠟質的轉運

在內質網中合成的各種蠟質組分需要轉運至植物表皮。首先各種蠟質組分從內質網中轉運到質膜，然后通過質膜運輸到原生質體外并通過細胞壁運輸到植物表面［29-31］。表皮蠟質的轉運是由多種轉運蛋白介導的。在擬南芥acbp1突變體的莖中蠟質的含量有所下降，ACBP1所編碼的?；o酶A結合蛋白1定位于內質網和質膜上，表明ACBP1可能介導蠟質組分從內質網轉運至質膜［32］。其中ABC轉運蛋白已被證實參與表皮蠟質的轉運：在擬南芥中CER5是ABC轉運蛋白WBC亞家族的成員，在cer5突變體的莖中表皮蠟質的含量僅為野生型的41%［33-34］，而表皮細胞中卻積累了較多的內含物，表明CER5所編碼的ABC轉運蛋白，參與蠟質組分從質膜向表皮的運輸過程［34］。

3? 植物表皮蠟質的響應外界脅迫功能

表皮蠟質是覆蓋于植物地上部分的疏水屏障，作為植物抵御外界脅迫的第一道防線，在生物和非生物脅迫中發揮重要作用。

3.1? 抗旱與保水功能

干旱是造成土地荒漠化和農業減產的最重要自然災害之一［35］，因此，植物在進化過程中形成了多種抗旱機制，如發達的根系［36］、高效的氣孔結構與調節系統［37］、葉片形態［38］、表皮蠟質增厚［39］等。在這些抗旱機制中，表皮蠟質是植物抵御干旱的重要屏障［18］。

表皮蠟質是在植物表皮形成的一層防止非氣孔水分流失的疏水層，具有維持植物體內水分平衡、防止水分流失的功能，在干旱脅迫中發揮一定作用。小麥在干旱條件下表皮蠟質中的烷烴的質量分數增加50%［40］；在干旱條件下煙草表皮蠟質通過減小氣孔導度來增強植株的抗旱性［41］，并通過調節氣孔發育來增強擬南芥的抗旱性［42］。在擬南芥中，在干旱條件下轉錄因子AtMYB94可以直接激活參與蠟質合成相關基因的轉錄，從而增強植株的抗旱性［43］；同時還有研究［44］報道了玉米中類似的轉錄因子ZmMYB94，通過參與幼苗中表皮蠟質的合成來增強植株對干旱的耐受性。

3.2? 抗紫外線輻射功能

太陽的紫外線輻射通過破壞脫氧核糖核酸（DNA）、膜系統和光合作用系統等對地球表面的植物造成傷害［45］。在漫長的進化過程中，陸地植物進化了多種抵御紫外輻射的機制，例如合成黃酮類或酚類化合物積累在表皮細胞的液泡、細胞壁、蠟質層或與角質單體結合，提高植物對紫外線輻射的吸收能力［46］。此外，植物葉表皮毛的結構與密度、蠟質層及表皮細胞層的厚度都會影響紫外線是否能穿透葉肉細胞［47］；蠟質含量高的植物葉片比含量低的葉片能吸收更多的紫外線［48］。隨著紫外線輻射的增加，黃瓜和大麥葉片的角質蠟的質量分數增加了約25%［49］。在玉米蠟質缺失突變體中，玉米植株葉片的葉片形態與遺傳物質均受到紫外線輻射的傷害［48］。研究［50］表明，植物葉表皮蠟對紫外線輻射有阻隔作用，只有不到1%的紫外線能通過蠟質進入葉肉細胞。

3.3? 抗病蟲害功能

在自然環境中， 植物會遇到細菌、真菌、病毒等各種病原體的侵襲， 嚴重威脅植物的生長和作物的產量［51］。 植物表皮蠟質的特殊化學成分和形態結構可使植物抵御病原體的侵染［52］。 真菌病原體可以合成或分泌角質酶和脂肪酶等水解酶來降解表皮蠟質［53］。 例如， 稻瘟病菌可以合成角質酶2（CUT2）并黏附于植物體表面， 通過激活CUT2使植株表面的角質層滲透性增加，從而降低植株對稻瘟病菌的抗性［54］。研究［54］表明，角質層滲透性的改變可以影響植物的抗病性。MdMYB30過表達的蘋果愈傷組織對蘋果潰瘍病表現出較強的抗性，表明MdMYB30正向調節蘋果果實蠟質的生物合成，增強蘋果對某些真菌病原菌的抗性［55］。

4? 展望

表皮蠟質是在植物表皮形成的一層防止非氣孔水分流失的疏水層， 可以保護植物免受強光、干旱、病原體入侵和昆蟲食草動物的侵襲。 植物表皮蠟質是植物從水生環境向干旱陸地環境進化而形成的結構， 因此研究植物表皮蠟質與響應各種逆境的調節機制以及角質層組分作為信號分子提高植物對病原體的敏感性是十分重要的。 隨著分子生物學的快速發展， 許多植物表皮蠟質合成相關基因被挖掘， 將為改良植物性狀、提高作物品質以及作物遺傳育種提供新的資源。

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（責任編輯：于海琴）