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海南省某奶牛場“兩病”凈化效果監測分析

2024-02-06 09:58朱建明趙華林
草食家畜 2024年1期
關鍵詞:奶牛場牛場布魯氏菌

韓 榮,朱建明,趙華林

(1.新疆農業大學動物醫學學院,烏魯木齊 830052;2.海南志勤畜牧業技術研究院,海南 三亞 572000)

奶?!皟刹 笔侵覆剪斒暇『团=Y核病,兩者均為我國二類動物疫病[1]。世界動物衛生組織(OIE)列為B 類動物疫病。布魯氏菌?。ú疾。┦且环N由布魯氏菌引起的人畜共患傳染病,也被稱為“馬耳他熱”或“波浪熱”[2]。它在臨床上的特征是母畜發生流產和不孕,而公畜則發生睪丸炎、附睪炎和關節炎[3]。牛結核病是一種慢性傳染病,由牛結核桿菌引起,也會在人畜之間傳播[4],其臨床特點是產乳量迅速下降,懷孕母??赡馨l生流產,體溫可上升到40 ℃以上,呈稽留熱、呼吸極度困難,最后窒息而死[5]。海南省目前沒有發現牛種布魯氏菌,主要是羊種3 型和豬種3 型[6-7],未發現牛結核病[8]。牛布病診斷方法主要是通過血清學技術,虎紅平板凝集試驗(RBT)進行初次篩查、試管凝集試驗(SAT)做確診;牛結核病檢測方法主要為免疫學檢測,即牛結核菌素皮內變態反應(PDD)。

隨著海南建設“自由貿易港”和“國際旅游島”的快速發展,牛肉及牛奶制品需求量猛增,保證畜產品安全和高質是海南畜牧業在新時代面臨的緊迫要求。同時海南省屬我國的無規定動物疫病區重點建設省份之一[9-10],防控和凈化奶牛場“兩病”是建設“無疫區”的重點內容。持續開展奶牛場“兩病”監測對保證海南奶牛養殖業健康發展和公共衛生安全具有重大意義。加大對奶牛主要疫病的凈化,將為海南畜牧業建設動物多病種無疫區提供基礎保障。

1 材料與方法

1.1 牛場背景

海南省某牛場于2017 年從澳大利亞引進娟珊牛500 頭。通過自繁自育,現有育成牛229 頭、生產母牛168頭、犢牛90頭,均未免疫接種牛布魯氏菌病、牛結核病疫苗。

1.2 主要試劑與儀器

1.2.1 主要試劑

布魯氏菌病虎紅平板凝集抗原、布魯氏菌病陽性血清、布魯氏菌病試管凝集試驗抗原、提純牛型結核菌素、虎紅反應板,均購自哈藥集團生物疫苗有限公司。

1.2.2 主要儀器

恒溫培養箱、微量加樣器、游標卡尺、5 mL注射器、微量振蕩器、冰箱、離心機。

1.3 試驗方案

1.3.1 布病檢測

采集奶牛血樣,按照國標《動物布魯氏菌病診斷技術》(GB/T 18646-2018)[11]操作先進行RBT 初次篩查,然后將初篩為陽性個體再進行SAT 復檢。確診為布病陽性的奶牛為陽性個體;陽性個體所在的場群為陽性污染場群。對陽性場開展全群采樣檢測,撲殺陽性個體,隔離飼養其余健康牛,以后每月進行一次隨機采樣檢測;連續三個月未檢測到布病陽性后,將該場設定為假設健康場群,對其進行常規監測。

1.3.2 牛結核檢測

按照國標《動物結核病診斷技術》(GB/T18645-2020)[12]進行操作,通過PDD 檢測牛結核病,對初檢陽性的牛60 d后復檢,對復檢陽性的牛進行撲殺與無害化處理。

1.4 樣品采集

常規消毒后,采集6月齡的母牛與產后半月至1個月的犢牛靜脈血樣2~5 mL。

1.5 檢測方法

1.5.1 虎紅平板凝集試驗(RBT)

(1)提前1 h從冰箱取出被檢血清、布魯氏菌標準陰、陽性血清和虎紅平板凝集實驗抗原,平衡到和室溫一致;

(2)將30 uL 被檢血清和30 uL 虎紅抗原加在一次性虎紅反應板內,使用滅菌槍頭快速混勻,4 min內讀取結果;

(3)每批次試驗同時用陰性、陽性血清各一份作對照;

(4)結果判定:在標準陰性血清不出現凝集,標準陽性血清出現凝集時,試驗成立,方可對受檢血清進行判定。出現肉眼可見的凝集反應判定為陽性,記為“+”,無凝集現象且反應混合液呈均勻粉紅色者判定為陰性,記為“-”。

1.5.2 試管凝集試驗(SAT)

(1)提前1 h從冰箱取出被檢血清,布魯氏菌病陽性血清和試管凝集抗原,平衡到和室溫一致;

(2)取6 支試管放于試管架上,依次編號,1 號管為血清對照管,2~5 號為試驗管,6 號為抗原對照管;

(3)血清稀釋:1號管加2.3 mL生理鹽水;2號管不加,第3~6號管各加入0.5 mL生理鹽水。取受檢血清0.2 mL,加人1號管內,并混合均勻;從1號管中吸0.5 mL 混合液加入2號管并充分混勻,以此類推,做倍比稀釋,到第5號管棄去混勻液0.5 mL;

(4)試管凝集抗原做10倍稀釋:即1 mL抗原加9 mL生理鹽水混勻;從2號管開始各加入0.5 mL,加入抗原之后血清的最終稀釋倍數為:從2號管開始為1:25、1:50、1:100、1:200、1:400;

(5)標準比濁管的配置:取5 支試管依次編號;取2 mL 生理鹽水和(4)中抗原稀釋液2 mL 加入燒杯中混勻;1號管加1 mL生理鹽水,2號管加0.25 mL抗原稀釋液和0.75 mL生理鹽水,3號管加0.5 mL抗原稀釋液和0.5 mL 生理鹽水,4 號管加0.75 mL 抗原稀釋液和0.25 mL 生理鹽水,5 號管加1 mL 抗原稀釋液;

(6)將加樣后的試管充分搖勻置37 ℃培養箱20~24 h,取出室溫下放置1 h,檢查并記錄結果;

(7)結果判斷:1號血清對照管清亮無沉淀,6號抗原對照管均勻渾濁,在兩種對照管都成立的情況下將試驗管與標準比濁管作比較,如果試驗管透明度與1號比濁管相近,菌體呈傘狀沉淀或塊狀沉淀,標記為“++++”呈100%凝集;試驗管透明度與2號比濁管相近,菌體呈傘狀沉淀,標記為“+++”呈75%凝集;試驗管與3號比濁管相近,菌體呈較薄傘狀沉淀,標記為“++”呈50%凝集;試驗管與4號比濁管相近,管底有不明顯的傘狀沉淀,標記為“+”呈25%凝集;如果試驗管不透明無沉淀,標記為“-”呈陰性。

1.5.3 牛結核菌素皮內變態反應(PDD)

(1)提前1 d在牛頸中部上1/3處剪毛或剃毛,三月齡以內的犢牛在肩胛部作試驗,用游標卡尺測量術部中央皮皺厚度,作好詳細記錄;

(2)用生理鹽水稀釋每毫升含10萬國際單位后使用。不論牛只大小,一律皮內注射0.1 mL;

(3)注射后72 h 后,觀察局部有無熱痛腫脹等炎性反應,并用游標卡尺測量術部皮皺厚度,作好詳細記錄;

(4)凡判斷為可疑反應的牛,即刻在另一頸部以同一批結核菌素進行第二次注射,再經72 h后觀察反應;

(5)判斷標準:陽性反應,局部有炎性反應,皮厚差等于或大于4.0 mm;可疑反應,局部炎性反應較輕,皮厚差在2.1~3.9 mm;陰性反應,無炎性反應,皮厚差在2.00 mm以下。

2 結果與分析

2.1 布病檢測結果

2.1.1 檢測

2020-2023 年采集牛血樣共2 104 份。其中,RBT 初篩陽性73 份,平均個體陽性率為3.5%;SAT試驗確診陽性0份,陽性率為0,見表1。表明該奶牛場未檢出布魯氏菌病。

表1 奶牛場布病血清學檢測結果

2.1.2 時間分布

如表1 所示,該奶牛場的RBT 陽性率2020 年為5.7%,2021 年為3.3%,2022 年為2.3%,2023 年為1.8%,呈逐年下降趨勢,表明該牛場布病凈化工作效果顯著。

根據布魯氏菌病初檢結果,一個月后重新采集73頭RBT陽性奶牛的血清,再次進行布魯氏菌病RBT 初篩與SAT 確診。結果顯示,RBT 陽性依然為73 頭,SAT 確診陽性依然為0 份。綜上表明該奶牛場為未患布魯氏菌病牛場。

2.2 牛結核檢測結果

2020—2023 年,總計對2 063 頭奶牛進行PDD 試驗檢測。結果顯示,疑似PDD 陽性奶??傆?0頭,見表2。對初檢疑似PDD 陽性的80 頭奶牛60 d 后進行PDD 復檢,結果顯示,陽性頭數均為0,表明該牛場為未患牛結核病牛場。

3 討 論

目前海南省對奶?!皟刹 眱艋裱皺z測-撲殺-監測-凈化”原則。從2020-2023年監測數據顯示,海南該牛場未發現“兩病”病例,達到了凈化標準,表明該牛場已初步建成奶?!皟刹 眱艋瘓?。

在凈化監測中,RBT 檢測初篩的陽性率為3.5%,而SAT 檢測確診的陽性率為0%,此情況與劉坤洋等[11]研究報道相一致。本研究顯示,RBT檢測很容易受到特異性抗體的影響呈假陽性。因此在檢測中應當保證樣品新鮮,避免樣品反復凍融和溶血等因素的干擾。而SAT具有較高的特異性和敏感性[12],能更準確的檢測出布病。PDD 疑似陽性率為3.8%,復檢陽性率為0%,此情況與李文文和雷程紅等[13-14]研究報道相一致。本研究表明,感染其他分支桿菌而致敏的動物沒有特異性,因此不能判斷病情,同時因病情嚴重而導致免疫反應低下的動物也易出現假陽性。此外,提純結核菌素質量、劑量、判定標準及操作等因素的影響也易產生誤差[15]。如荷蘭英特威的結核菌素,每頭牛的劑量為3 000IU[16],而國產為10 000IU[17],國際獸疫局規定為3 250IU,不低于2 000IU[18]。國內結核菌素檢疫劑量遠遠超過國際標準劑量,這就導致了結核病陽性和疑似病例的數量增加。因此,本研究嚴格按照說明書劑量檢疫,對于初檢判為疑似反應的80頭奶牛距上次檢疫60 d后復檢,結果陽性0頭,陽性率為0,由此可見,該牛場未患有牛結核病。

4 結 論

海南該奶牛場2020-2023年連續4年未檢出布魯氏菌病和牛結核病,凈化工作成效明顯,表明該奶牛場已進入凈化維持階段,已建成海南省首個奶?!皟刹 眱艋瘓?。針對海南奶牛場的實際氣候環境和飼養管理狀況,該牛場將繼續提高疫病防控執行力度,每年至少進行兩次針對奶牛布魯氏菌病和牛結核病的有效檢測,保障當地奶牛業穩定發展。

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