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KIF26B在膀胱癌組織中的表達及對膀胱癌細胞增殖、侵襲、遷移的影響

2024-02-27 11:02盧保德黃勇平
醫學研究雜志 2024年1期
關鍵詞:培養箱膀胱癌結果顯示

盧保德 龍 賢 黃勇平

膀胱癌是泌尿系統常見的惡性腫瘤,復發率高[1]。手術切除是膀胱癌治療的主要手段,但大部分患者5年內會復發和進一步發展,最終發生轉移,發生轉移患者大部分在2年內死亡,病死率高[2,3]。因此,研究膀胱癌復發、轉移的原因及機制對膀胱癌防治有重要意義。驅動蛋白家族成員26B(kinesin family member 26B, KIF26B)是驅動蛋白超家族成員之一,在細胞運輸和有絲分裂中有重要作用。驅動蛋白一類可沿微管軌道運動的分子馬達蛋白,在紡錘體形成、染色體凝聚分離、細胞分裂等方面具有重要作用,目前在人類中發現有45個功能不同的成員[4]。

近年來,越來越多的驅動蛋白成員被報道與癌癥的發生、發展有關,如KIF4A在肝癌中高表達,高表達KIF4A可促進肝癌細胞的增殖[5]。KIFC1與前列腺癌預后不良有關[6]。KIF2A與骨肉瘤分期和預后相關,敲除KIF2A可抑制骨肉瘤細胞生長和轉移[7]。KIF23可通過Wnt/β-catenin信號通路調控結直腸癌細胞的增殖和侵襲[8]。KIF26B在多種惡性腫瘤中異常表達,參與癌癥的增殖和轉移過程,高表達KIF26B可通過激活FGF2/ERK信號通路促進乳腺癌細胞增殖和遷移,KIF26B表達水平與乳腺癌腫瘤直徑、TNM分期、分化有關[9]。但KIF26B在膀胱癌中的作用尚未明確。本研究將利用公共數據庫分析KIF26B在膀胱癌組織中的表達及與患者生存預后的關系,同時沉默KIF26B后,觀察膀胱癌T24細胞增殖、侵襲、遷移能力的變化,并初步探討其分子機制。

材料與方法

1.主要材料:膀胱癌細胞系(T24、J82)和膀胱正常細胞SV-HUV-1購自中國科學院上海生命科學研究院生物化學與細胞生物學研究所;Trizol購自天根生化科技(北京)有限公司;胎牛血清購自美國Gibco公司;1640培養基購自美國Hyclone公司;MTT試劑盒購自生工生物工程(上海)股份有限公司;轉染試劑購自美國Invitrogen公司;KIF26B siRNA由湖州河馬生物科技有限公司設計與合成;p-MEK、MEK、ERK、p-ERK抗體購自安諾倫(北京)生物科技有限公司。

2.生物信息學分析KIF26B在膀胱癌組織中的表達及預后:在GEO數據庫中下載數據集GSE13507“Series Matrix file”文件,數據集中含有膀胱癌組織165例,癌旁正常組織68例,數據集內容包含患者性別、年齡、基因表達量等信息,KIF26B對應的探針為ILMN_1673620。以KIF26B表達中位數為界,分為KIF26B高表達組和KIF26B低表達組,用UaLcan數據庫在線分析KIF26B表達與膀胱癌患者預后的關系[10]。

3.細胞培養:T24、J82和SV-HUV-1細胞用含10%胎牛血清、1%雙抗的1640培養基,在37℃飽和濕度、含5%CO2的培養箱中培養。

4.實時熒光定量聚合酶鏈反應(real-time quantitative polymerase chain reaction,RT-qPCR)檢測細胞KIF26B mRNA表達:Trizol法提取細胞中的總RNA,反轉錄合成cDNA,用primer6進行引物設計,合成由生工生物工程(上海)股份有限公司完成。引物序列如下:KIF26B上游引物:5′-GCTTCTCAGGCTGAAGTGTG-3′,下游引物:5′-GTAGGATTTTCCAGTTTGGCGTGG-3′;GAPDH上游引物:5′-CCAGGTGGTCTCCTCTGA-3′,下游引物:5′-GCTGTAGCCAAATTCGTTGT-3′。反應條件:94℃預變性10min,95℃變性5s,60℃退火15s,72℃延伸10s,40個循環。記錄CT值,計算基因相對表達量。采用ImageJ軟件進行分析,以GAPDH為內參,觀察結果。

圖1 KIF26B在膀胱癌組織中的表達及生存分析

圖2 KIF26B在膀胱癌細胞T24、J82、SV-HUV-1中的表達量

圖3 轉染后T24細胞中KIF26B的表達量

5.Western blot法檢測KIF26B蛋白表達水平:收集對數生長期的各組細胞(T24、BIU-87、SV-HUV-1),用放射免疫沉淀緩沖液(radioimmunoprecipitation assay buffer,RIPA)裂解細胞,提取KIF26B蛋白,用BCA蛋白濃度測定試劑盒(BCA Protein Assay Kit)測定蛋白濃度。取各組蛋白樣品40μg,經凝膠電泳分離后轉至聚偏二氟乙烯(polyvinylidenefluoride,PVDF)膜上,用濃度為5%的脫脂奶粉封閉2h,加入抗KIF26B抗體孵育,4℃過夜。洗膜3次,加入二抗,室溫孵育2h后,化學發光法檢測蛋白表達水平。

6.細胞轉染:將T24細胞分為對照組(si-NC組)和沉默組(si-KIF26B組),轉染前1天,在無抗培養基中接種(0.5~2.0)×105個細胞,轉染時細胞融合度為50%,分別稀釋siRNA和轉染試劑并混勻后加入到24孔板中,輕搖細胞板混合均勻,置于37℃、5%CO2培養箱中培養24~48h。用RT-qPCR和Western blot法檢測轉染效率。

7.噻唑藍(methyl thiazolyl tetrazolium, MTT)法檢測:細胞轉染48h后,將細胞接種到96孔板中,待細胞貼壁后,按實驗要求進行藥物處理,于0、24、48、72h后進行MTT法檢測。各組細胞在檢測時間點時,每孔加1/10體積MTT溶液,在37℃、5%CO2培養箱中培養4h。在酶標儀上波長為490nm處測定各孔吸光度(A)值,以時間為橫坐標,A490nm為縱坐標,繪制細胞生長曲線。

8.Transwell實驗:將Matrigel基質膠稀釋,小室各加100μl(20~30微克/孔),放入培養箱中待其凝固,出現“白色層”取出小室;取出小室后,加入無血清培養基,放入培養箱水化30min;吸掉培養基后用胰酶消化收集狀態良好的目的細胞,制成單細胞懸液(無血清培養基配置);上室加300μl調好密度的細胞懸液(3×104個);下室加500μl全培養基(侵襲小室外);于37℃、5% CO2培養箱中培養相應時間;用4%多聚甲醛室溫固定20min,用棉簽擦拭去除侵襲小室內未穿過基底層膜的細胞,新24孔板中加入結晶紫染色,將侵襲小室浸入染色10min后用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)洗去多余的染料,置于空氣中晾干;顯微鏡拍照,計算各孔穿過膜的細胞數量。

9.劃痕實驗:將已轉染的T24細胞用胰酶消化后,將細胞接種到6孔板中,待細胞鋪滿單層后用移液器槍頭比著直尺,盡量垂至于背后的橫線劃痕;PBS清洗細胞,去除劃下的細胞;加入含2%胎牛血清的培養基繼續培養,于相應時間在100倍鏡下進行拍照。

10.Western blot法檢測沉默KIF26B表達對T24細胞MEK、p-MEK、ERK、p-ERK蛋白表達的影響:將KIF26B 對照組細胞株(si-NC)和KIF26B沉默細胞株(si-KIF26B)進行擴大培養,以抗p-MEK、抗MEK、抗ERK、抗p-ERK為一抗,其余方法同材料與方法5。

結 果

1.生物信息學分析KIF26B在膀胱癌組織中的表達及預后:GEO數據庫分析結果顯示,KIF26B在膀胱癌組織中相對表達水平顯著高于癌旁組織(P<0.05),詳見圖1A。Kaplan-Meier生存分析顯示,KIF26B高表達組的膀胱癌患者總體生存期明顯低于低表達組(P<0.05),詳見圖1B。

2.KIF26B在膀胱癌細胞中的表達:RT-qPCR檢測結果顯示,KIF26B mRNA在J82、T24、SV-HUV-1中的表達量分別為1.76±0.02、1.83±0.03、1.08±0.04,與SV-HUV-1比較,膀胱癌細胞系J82及T24中KIF26B mRNA的相對表達量明顯升高(P<0.05,圖2A)。Western blot法檢測結果顯示,KIF26B蛋白在膀胱癌細胞T24、J82中的相對表達量均高于正常膀胱上皮細胞SV-HUV-1,(P<0.05,圖2中B、C)。因KIF26B在T24細胞中表達最高,選擇T24細胞進行下一步實驗。

3.轉染后T24細胞中KIF26B mRNA和蛋白的表達情況:RT-qPCR檢測結果顯示,si-KIF26B組中KIF26B mRNA的表達水平顯著低si-NC組(P<0.05,圖3A)。Western blot法檢測結果顯示,si-KIF26B組中KIF26B蛋白的表達水平低于si-NC組(P<0.05,圖3中B、C)。表明T24細胞中KIF26B表達被有效抑制,可用于下一步功能研究。

4.沉默KIF26B對膀胱癌細胞增殖的影響:采用MTT法檢測沉默KIF26B表達對T24細胞增殖的影響,結果顯示,si-NC組在48h的A值為0.788±0.003,si-KIF26B組為0.596±0.003,兩組比較,差異有統計學意義(t=40.29,P<0.05)。si-KIF26B組在72h的A值為1.274±0.139,si-NC組為0.891±0.033,差異有統計學意義(t=10.81,P<0.05),詳見圖4。表明沉默KIF26B后,膀胱癌T24細胞的增殖能力明顯下降。

圖4 兩組細胞MTT增殖曲線圖

5.沉默KIF26B后對膀胱癌細胞侵襲的影響:通過Transwell實驗檢測細胞侵襲能力的變化,結果顯示,si-KIF26B組穿過小室膜的細胞數為90.67±6.33,si-NC組為201.71±7.69,差異有統計學意義(t=11.14,P<0.05),詳見圖5。表明沉默KIF26B后細胞侵襲能力減弱。

圖5 KIF26B基因沉默對膀胱癌T24細胞侵襲能力的影響

6.沉默KIF26B后對膀胱癌細胞遷移的影響:劃痕實驗檢測T24細胞轉染KIF26B siRNA后細胞遷移的變化,結果顯示,si-KIF26B細胞24h的愈合率為60.19%±2.43%,si-NC組為96.67%±3.33%,差異有統計學意義(t=8.85,P<0.05),詳見圖6。表明沉默KIF26B后,T24細胞遷移能力下降。

圖6 沉默KIF26B對膀胱癌T24細胞遷移的影響

7.沉默KIF26B對MEK/ERK信號通路蛋白表達的影響:沉默KIF26B表達后,si-NC組和si-KIF26B組中MEK、ERK蛋白的相對表達量未見明顯差異;而在si-KIF26B組中,p-ERK、p-MEK蛋白的相對表達量明顯低于si-NC組(P<0.05),詳見圖7。

圖7 沉默KIF26B后p-ERK、ERK、p-MEK、MEK蛋白表達變化

討 論

膀胱癌病因未明,其發生率高,易復發。世界范圍內膀胱癌的發生率在男性惡性腫瘤中排第7位[11]。我國膀胱癌發生率為5.8/10萬,病死率為1.31/10萬,城市發生率高于農村[12]。膀胱癌病理類型以尿路上皮癌最常見,大約占90%,手術為主要治療方式,但復發率和進展率高,在5年內復發的患者比例占到70%,有10%~30%的患者進展為肌層浸潤性尿路上皮癌[13]。浸潤性膀胱癌易復發和轉移,為膀胱癌死亡的主要因素,研究膀胱癌侵襲、轉移的特征及分子機制,對膀胱癌的診治有重要意義。

KIF26B為驅動蛋白家族成員之一,驅動蛋白可沿微管定向運動,主要參與細胞內mRNA、囊泡、生長因子、轉錄因子等物質轉運,與細胞內信號轉導、有絲分裂、免疫反應、細胞分化和凋亡等病理生理過程密切相關,驅動蛋白突變可引起細胞有絲分裂停止和凋亡[14~16]。此外,KIF26B對間充質細胞的黏附和極化具有重要作用,其機制可能是通過Wnt5a/Ror信號通路調節細胞骨架,影響細胞的遷移、極化和黏附[17,18]。有研究表明,干擾KIF26B的表達可抑制乳腺癌細胞的增殖、侵襲及遷移能力。

本研究先通過GEO數據庫分析KIF26B在膀胱癌組織中的表達水平,結果顯示,KIF26B在膀胱癌組織中的表達高于癌旁組織,同時在細胞水平上進行檢測,發現KIF26B在膀胱癌細胞中的表達亦明顯高于正常膀胱上皮細胞。進一步在UaLcan數據庫中進行生存分析發現,KIF26B高表達的膀胱癌患者生存預后更差,提示KIF26B可能是膀胱癌診斷和預后的標志物。為進一步揭示KIF26B在膀胱癌中的作用,本研究在沉默KIF26B后,檢測膀胱癌細胞增殖能力的變化,結果顯示,膀胱癌細胞的增殖能力明顯下降。進一步檢測膀胱癌細胞侵襲和遷移能力的變化,發現沉默KIF26B基因后,膀胱癌細胞的侵襲和遷移能力明顯下降,說明KIF26B表達異??捎绊懓螂装┘毎鲋?、侵襲、遷移的能力,但KIF26B是如何影響癌細胞的增殖、侵襲,目前尚不明確。

有研究對KIF26B基因進行富集分析發現,KIF26B在腫瘤中的作用機制與PI3K/Akt信號通路、細胞凋亡、細胞周期通路關系密切。Zhang等[19]研究發現,KIF26B在胃癌中通過激活VEGF信號通路促進癌細胞增殖和轉移。而Liu等[20]在髓母細胞瘤中研究發現,沉默KIF26B后,癌細胞增殖、遷移能力明顯下降,其機制為通過激活PI3K/Akt通路促進腫瘤的惡性進展。MEK/ERK信號通路為經典的激酶通路,也是被研究最多的通路之一,參與細胞增殖、分化、轉移等調控過程。本研究發現,在沉默KIF26B后,膀胱癌T24細胞中MEK、ERK蛋白表達水平無明顯變化,而p-MEK、p-ERK蛋白的表達明顯下調,提示沉默KIF26B可能通過抑制MEK/ERK通路活性調控膀胱癌細胞的增殖、侵襲。

綜上所述,KIF26B在膀胱癌組織和細胞中表達水平升高,與患者的預后不良有關,沉默KIF26B后,膀胱癌細胞增殖、侵襲、遷移能力下降,其機制可能是通過影響MEK/ERK信號通路而發揮作用。但本研究僅在體外探索KIF26B對膀胱癌的作用,缺乏體內動物實驗及直接機制探索,因此KIF26B在膀胱癌中的具體作用機制仍有待于進一步研究。

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