附子白絹病拮抗細菌的分離鑒定及發酵條件優化

施春蘭 湯永玉 葉坤浩 曾舒泉 張永科 何霞紅 魏朝霞 曾華蘭 葉鵬盛 吳國星

DOI：10.3969/j.issn.2095-1191.2023.06.013

摘要：【目的】從黃粉甲中分離獲得對附子白絹病病原菌具有較好抑制作用的拮抗細菌，為附子白絹病的生物防治提供菌種資源?！痉椒ā恳灶静↑S粉甲為材料，通過稀釋涂布法和平板對峙法分離并篩選對附子白絹病菌具有拮抗作用的細菌，通過形態結構、生理生化特征及16S rDNA序列分析等對拮抗細菌進行種類鑒定；以拮抗細菌發酵液在600 nm波長下的OD值為指標，采用單因素試驗的方法對拮抗細菌的培養基組分以及發酵條件進行優化；通過室內盆栽試驗明確拮抗細菌對附子白絹病的防治效果?！窘Y果】采用稀釋涂布法從罹病黃粉甲中分離獲得4株細菌，經平板對峙法篩選獲得對附子白絹病菌具有較好拮抗效果的菌株TS1，該菌對齊整小核菌菌絲生長的抑制率可達68.03%。根據菌株TS1的菌落形態結構、生理生化特征及16S rDNA序列分析結果，確定菌株TS1為枯草芽孢桿菌（Bacillus subtilis）。菌株TS1的優化培養基配方：蛋白胨10.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、麥芽糖15.0 g/L；最佳發酵條件：裝液量30 mL、初始接種量0.50%、轉速210 r/min、培養溫度42 ℃、初始pH 9、培養時間48 h。室內盆栽保護和治療試驗結果表明，菌株TS1對附子白絹病的平均防治效果分別為49.39%和62.97%?！窘Y論】優化的發酵方案可用于快速、大批量培養菌株TS1菌懸液。菌株TS1對附子白絹病有較好的防治效果，具有開發成附子白絹病生防菌的潛力。

關鍵詞：黃粉甲；內生細菌；枯草芽孢桿菌；齊整小核菌；發酵條件；防治效果

中圖分類號：S435.672? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ?文獻標志碼：A 文章編號：2095-1191（2023）06-1720-12

Isolation， identification and fermentation conditions optimization of antagonistic bacteria against southern blight on

Aconitum carmichaeli

SHI Chun-lan1， TANG Yong-yu1， YE Kun-hao1， ZENG Shu-quan1， ZHANG Yong-ke1， HE Xia-hong1， WEI Zhao-xia1， ZENG Hua-lan2， YE Peng-sheng2， WU Guo-xing1*

（1College of Plant Protection，Yunnan Agricultural University，Kunming，Yunnan? 650201，China； 2Institute of Industrial Crop Breeding and Cultivation，Sichuan Academy of Agricultural Sciences，Chengdu，Sichuan? 610066，China）

Abstract：【Objective】This study screened and obtained antagonistic bacteria with good inhibitory effect on the pathogen of southern blight on Aconitum carmichaeli from Tenebrio moliter， so as to provide strain resources for the biological control of southern blight on A. carmichaeli. 【Method】Using diseased T. moliter as the material， the bacteria with antagonistic effect on southern blight on A. carmichaeli was isolated and screened by dilution coating and plate confrontation methods. The antagonistic bacteria was identified by morphological， physiological and biochemical characteristics and 16S rDNA sequence. With the OD value of bacterial fermentation broth at 600 nm as the index， the culture medium components and fermentation conditions of antagonistic bacteria were optimized by single factor experiment. The control effect of antagonistic bacteria on southern blight on A. carmichaeli was confirmed by pot experiment in laboratory. 【Result】Four strains of bacteria were obtained from T. moliter by dilution coating method. And TS1 strain with greater antagonistic effect against southern blight on A. carmichaeli was obtained by plate confrontation method， with an average inhibitory rate for Sclerotium rolfsii mycelial growth of 68.03%. The TS1 strain was identified as Bacillus subtilis based on its morphological， physiological and biochemical characteristics and the result of 16S rDNA sequence analysis. The optimized medium formula was peptone 10.0 g/L， yeast extraction powder 5.0 g/L and maltose 15.0 g/L. The optimal fermentation conditions were 30 mL of liquid， 0.50% of initial inoculum， 210 r/min of rotation speed， 42 ℃ of temperature， initial pH 9， and 48 h of incubation. The results of laboratory pot experiment and experimental treatment showed that the average control efficiency of TS1 strain against southern blight on A. carmichaeli were 49.39% and 62.97% respectively. 【Conclusion】The optimized fermentation scheme can be used to rapidly culture TS1 strain suspensions in large quantities. TS1 strain has a good control effect on southern blight on A. carmichaeli and has the potential to be developed into a biocontrol bacterium for southern blight on A. carmichaeli.

Key words： Tenebrio moliter； endogenous bacteria； Bacillus subtilis； Sclerotium rolfsii； fermentation conditions； control effect

Foundation items： Sichuan Provincial Regional Innovation Cooperation Project （2021YFQ0022）； Yunnan Science and Technology Planning Project （202105AC160037）

0 引言

【研究意義】附子（Aconitum carmichaeli）是雙子葉植物綱原始植物花被亞綱毛茛目毛茛科金蓮花亞科烏頭屬植物，可形成塊根，可作為塊根類植物的代表（李玉龍，2019）。附子在我國有很高的藥用價值，在四川、陜西和云南均有種植，其加工品有回陽、溫理逐寒、止痛等功效（陳芳，2007）。附子白絹病是由齊整小核菌（Sclerotium rolfsii）引起的土傳性真菌病害，主要危害附子的根莖部，對我國附子的產量和質量產生較大影響，與霜霉病、根腐病及病毒病混發嚴重時減產率可達50%以上（唐莉等，2004）。此外，齊整小核菌還會侵染辣椒、魔芋和花生等作物，宿主十分廣泛，可侵染500種以上的植物物種（Iquebal et al.，2017），造成嚴重的經濟損失。目前，對于白絹病的防治以化學藥劑井岡霉素、噻呋酰胺、氟酰胺和異菌脲等殺菌劑為主，但由于長期不規范用藥，造成環境污染、農藥殘留、病原菌抗性增強等一系列問題。因此，利用綠色高效生防菌進行生物防治對附子的安全無公害生產具有重要意義?！厩叭搜芯窟M展】目前，已報道防治附子白絹病的生防菌主要有芽孢桿菌（Bacillus sp.）、假單胞桿菌（Pseudomonas adaceae）、綠粘帚霉（Gliocladium virens）、木霉菌（Trichoderma）、青霉菌（Penicillium）、根瘤菌（Rhizobium）和鏈霉菌（Streptomycetaceae）等（李敏等，2022）。其中，枯草芽孢桿菌（B. subtilis）和木霉菌等生防菌已作為菌劑廣泛投入市場，實現商品化（阮盈盈和劉峰，2020）。宋漳和陳輝（2002）從百合根部分離得到1株綠色木霉T02，用其對齊整小核菌進行抑菌試驗，結果顯示其拮抗系數為2～3；劉任等（2005）用甲醇法、乙醇法、超聲波水法和堿法等4種方法對哈茨木霉（T. harzianum）T2菌株分生孢子中的抗菌物質進行提取，并通過抑菌試驗測定各種粗提物對齊整小核菌的抑菌活性，發現其活性均較好，其對齊整小核菌的抑制活性可達82.2%；文毅（2010）從魚腥草根際分離得到枯草芽孢桿菌B8，該菌對附子白絹病的盆栽防效可達56.8%；胡朝暉等（2017）從蠶沙發酵肥中分離得到枯草芽孢桿菌、熒光假單胞菌（Psdeuomnoda fluoerncnet）、類芽孢桿菌（Paenibacillus ash）和黃桿菌（Flavobacterium mizutaii），其中枯草芽孢桿菌對齊整小核菌的抑菌率可達67.6%；Thampi和Bhai（2017）從黑胡椒根際土壤中分離得到3株鏈霉菌菌株IISRBPAct1、IISRBPAct25和 IISRBPAct42，其中菌株IISRBPAct1對齊整小核菌表現出90%以上的抑制作用；Volpiano等（2018）從菜豆根結中分離得到16株對齊整小核菌菌絲生長抑制率超過84%的根瘤菌菌株，這些拮抗菌株可產生高達36.5 μg/mL的IAA，同時驗證了IAA產生與菌絲體抑制之間的直接相關性；Li等（2019）發現灰黃青霉（P. griseofulvum）菌株CF3不僅可以抑制齊整小核菌菌絲生長，還能抑制菌核的形成和萌發；何俊烺等（2021）分別用哈茨木霉和綠色木霉（T. virid）對齊整小核菌進行平板對峙，結果表明2株菌株對齊整小核菌的抑菌率分別為56.72%和58.01%；李界秋等（2022）從桑樹中分離得到貝萊斯芽孢桿菌（B. velezensi）NN04，該菌對齊整小核菌的抑菌活性可達74.81%?？梢?，齊整小核菌的拮抗菌大多來源于土壤或植物體內，利用昆蟲內生菌進行病害防治的報道極少，常見的對昆蟲腸道微生物的研究則更多集中于微生物與昆蟲之間的關系等方面，在植物病害防治方面的相關研究較少（郭軍等，2015；魏曉瑩等，2019）?！颈狙芯壳腥朦c】目前齊整小核菌拮抗菌株的獲取對象多局限于土壤或植物，其他來源的報道較少。黃粉甲是一種雜食性昆蟲，危害五谷雜糧、麥麩、果皮及天然纖維，且可降解PE；黃粉甲生存環境多樣，對環境的適應性較強（劉玉升等，2010；丁夢琪，2021），其抗逆性較強可能是一些共生菌在發揮重要作用；罹病黃粉甲致病菌在致病時其體內菌群發生變化，有益共生菌發揮作用對抗致病菌，此時容易分離到重要的生防菌?！緮M解決的關鍵問題】通過稀釋涂布法和平板對峙法從罹病黃粉甲中分離獲得對附子白絹病菌具有高效拮抗作用的細菌，通過形態和生理生化特征及16S rDNA序列分析等對拮抗細菌進行種類鑒定，并研究拮抗菌株的最佳發酵條件及對附子白絹病的室內防治效果，為后續拮抗菌株的開發利用提供數據，也為附子白絹病生防菌的來源及其生物防治提供參考。

1 材料與方法

1. 1 試驗材料

1. 1. 1 供試菌株 拮抗細菌：從罹病黃粉甲中分離篩選獲得。病原菌：齊整小核菌，由云南農業大學昆蟲毒理學實驗室自行分離并鑒定。

1. 1. 2 供試培養基 營養瓊脂培養基（NA）：牛肉膏3.0 g/L、蛋白胨10.0 g/L、NaCl 5.0 g/L、瓊脂1.5 g/L，121 ℃滅菌20 min；馬鈴薯培養基（PDA）：馬鈴薯20.0 g/L、葡萄糖2.0 g/L、瓊脂1.5 g/L，121 ℃滅菌30 min；蛋白胨酵母蔗糖培養基（YSP）：蛋白胨10.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、蔗糖20.0 g/L、瓊脂15.0 g/L，115 ℃滅菌30 min；牛肉膏酵母葡萄糖培養基（NYBD）：牛肉膏8.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、葡萄糖10.0 g/L、瓊脂15.0 g/L，115 ℃滅菌30 min；細菌基礎培養基（CM）：葡萄糖5.0 g/L、（NH4）2SO4 2.0 g/L、檸檬酸鈉1.0 g/L、MgSO4·7H2O 2.0 g/L、K2HPO4 4.0 g/L、KH2PO4 6.0 g/L、瓊脂15.0 g/L，121 ℃滅菌20 min；蛋白胨酵母培養基（LB）：蛋白胨10.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、氯化鈉10.0 g/L、瓊脂15.0 g/L，121 ℃滅菌20 min。

1. 1. 3 主要儀器和試劑 超凈工作臺（江蘇安泰空氣技術有限公司）、冰箱（青島海爾股份有限公司）、高壓滅菌鍋（ZEALWAY GR85DA）、-80 ℃超低溫冰箱（Thermo 906）、SPX-300B-Ⅱ型生化培養箱（北京市永光明醫療儀器有限公司）、普通天平（賽多利斯科學儀器有限公司）、人工氣候箱（寧波東南儀器有限公司）、電熱鼓風恒溫干燥箱（上海市崇明實驗儀器廠）。蛋白胨、牛肉膏、葡萄糖、酵母浸粉和氯化鈉等分析純試劑均購自廣東環凱微生物科技有限公司。

1. 2 拮抗細菌分離

參照何明川等（2021）的方法，先將罹病黃粉甲用75%酒精處理，后用無菌水漂洗3次，將處理好的黃粉甲放入裝有1 mL無菌水的離心管中用研磨棒充分研磨，制備梯度稀釋菌懸液。取10-5、10-6和10-7稀釋度的菌懸液100 μL分別涂布于NA培養基上，每個梯度3次重復。倒置平皿于28 ℃培養箱中培養3 d。在超凈工作臺中用無菌挑針挑取NA培養基上長出的單菌落并于LB培養基上劃線培養；純化3～4次，將菌株保存于4 ℃冰箱備用。

1. 3 拮抗細菌抑菌效果測定

1. 3. 1 平板對峙法 將培養4 d的齊整小核菌打成6 mm大小的菌餅，接種于PDA培養基中央，用無菌牙簽在距菌餅2 cm左右處十字線對稱接種細菌，以不接種細菌的PDA培養基為對照，于28 ℃培養4 d后觀察并記錄抑菌圈大小，20 d后觀察并記錄菌核產生情況。重復3次。

菌落直徑（cm）=（橫徑+縱徑）/2

抑菌率（%）＝（對照菌落直徑-處理菌落直徑）/對照菌落直徑×100

式中，處理菌落直徑為對稱拮抗細菌的兩點間距離減去兩點拮抗細菌的抑菌圈半徑。

菌核萌發抑制率（%）=（對照菌核數量-處理菌核數量）/對照菌核數量×100

1. 3. 2 拮抗細菌揮發物對附子白絹病菌生長的影響 參考張霞等（2020）的方法并加以改進。將拮抗細菌在LB培養基上劃線培養，同時將齊整小核菌6 mm大小的菌餅接種于PDA培養基上，采用對扣法（劉海洋等，2018）將有病原菌的一面置于上方，以不劃線作對照，3次重復，于28 ℃培養4 d后觀察并記錄抑菌圈大小。培養20 d后觀察并記錄菌核產生情況。計算方法參照1.3.1。

1. 3. 3 拮抗細菌無菌發酵液對附子白絹病菌菌絲生長的影響 參照李玉龍（2019）及彭啟超等（2022）的方法并加以改進。將拮抗細菌發酵液以8000 r/min離心15 min，收集上清液，用0.22 μm濾膜過濾得到無菌濾液。無菌濾液用無菌水進行5倍和10倍稀釋后，將原液、5倍和10倍稀釋液與加熱冷卻至50～55 ℃的PDA培養基以1∶4的比例混合后倒入90 mm的平板中，即得到最終稀釋為5倍、25倍和50倍發酵液PDA平板。將齊整小核菌6 mm大小的菌餅接于平板中央，以添加等量無菌水的PDA培養基平板為對照，3次重復，于28 ℃下培養，每天觀察并記錄抑菌圈大小。培養20 d后觀察并記錄菌核產生情況。計算方法參照1.3.1。

1. 3. 4 拮抗細菌無菌發酵液對附子白絹病菌菌核萌發的影響 參照李玉龍（2019）的方法并加以改進。將拮抗細菌發酵液以8000 r/min離心15 min，收集上清液，用0.22 μm濾膜過濾得到無菌濾液。無菌濾液用無菌水進行5倍和10倍稀釋后，將原液、5倍和10倍稀釋液與加熱冷卻至50～55 ℃的PDA培養基以1∶4的比例混合后倒入90 mm的平板中，即得到最終稀釋為5倍、25倍和50倍發酵液PDA平板。每個平板放置12個菌核，以添加等量無菌水的PDA培養基平板為對照，3次重復，于28 ℃培養，每24 h觀察菌核萌發情況并記錄。計算方法參照1.3.1。

1. 4 拮抗細菌鑒定

1. 4. 1 形態結構及生理生化特征 在LB培養基上接種拮抗細菌，28 ℃培養3 d，待長出單菌落觀察形態。根據《微生物學實驗》對菌株的生理生化特性進行測定（何明川等，2021）。

1. 4. 2 系統發育進化樹構建 采用細菌16S rDNA基因通用引物27F（5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCA-3'）和1492R（5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3'）對拮抗細菌的16S rDNA進行PCR擴增（引物由上海生工生物工程技術有限公司合成）。PCR反應體系50 μL：PCR Mix 25 μL，上、下游引物各2 μL，DNA模板3 μL，Rnase H2O 18 μL。擴增程序：94.8 ℃預變性2.5 min；98 ℃ 10 s，55 ℃ 10 s，72 ℃ 20 s，進行30個循環；72 ℃延伸2 min。PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測合格后送至昆明擎科生物科技有限公司測序。測序結果在NCBI上進行BLAST比對，并選擇同源性較高的序列使用ClustalX 1.83和MEGA 7.0構建系統發育進化樹（何明川等，2021）。

1. 5 拮抗細菌發酵條件篩選

1. 5. 1 種子液制備 挑取拮抗細菌單菌落于100 mL LB液體培養基中28 ℃、180 r/min振蕩培養24 h，備用。

1. 5. 2 培養基優化 配制YSP、NYBD、NA、LB和CM培養基各100 mL，分別接入50 μL種子液，于28 ℃下180 r/min搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選最佳培養基（何明川等，2021）。每處理3次重復（下同）。

1. 5. 3 碳源對拮抗細菌生長速度的影響 以最佳培養基為基礎培養基，分別以麥芽糖、乳糖、葡萄糖、蔗糖和淀粉作為碳源，其余成分保持不變，接入50 μL種子液在28 ℃下180 r/min搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選出最佳碳源。

1. 5. 4 氮源對拮抗細菌生長速度的影響 以最佳培養基為基礎培養基，分別以蛋白胨、酵母浸粉、硝酸銨、氯化銨和甘氨酸作為氮源，其余成分保持不變，接入50 μL種子液在28 ℃下180 r/min搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選出最佳氮源。

1. 5. 5 初始接菌量對拮抗細菌生長速度的影響 采用最佳培養基，種子液為液體培養基體積比的0.05%、0.10%、0.50%、1.00%和2.00%，接入菌種在28 ℃下180 r/min搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選出最佳初始接菌量。

1. 5. 6 裝液量對拮抗細菌生長速度的影響 采用最佳培養基，裝液量分別配置為30、60、90、120和150 mL，接入50 μL種子液在28 ℃下180 r/min搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基細菌的OD600，篩選出最佳裝液量。

1. 5. 7 轉速對拮抗細菌生長速度的影響 采用最佳培養基，分別設置120、150、180、210和240 r/min的轉速，接入50 μL種子液在28 ℃下不同轉速搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選出最佳轉速。

1. 5. 8 溫度對拮抗細菌生長速度的影響 采用最佳培養基，分別設置20、24、28、32、36、40和46 ℃，接入50 μL種子液在優化條件下搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選出最佳培養溫度。

1. 5. 9 初始pH對拮抗細菌生長速度的影響 采用最佳培養基，分別調節pH為4、5、6、7、8、9和10，接入50 μL種子液在優化條件下搖床振蕩培養24 h，取出測定不同培養基中細菌的OD600，篩選出最佳初始pH。

1. 5. 10 培養時間對拮抗細菌生長速度的影響 采用最佳培養基，接入50 μL種子液在優化條件下搖床振蕩培養，開始培養24 h內每隔2 h測量1次OD600，24 h后每隔12 h測量1次OD600，繪制細菌生長曲線，篩選出最佳培養時間。

1. 6 附子白絹病室內盆栽防效試驗

參考何明川等（2022）、彭啟超等（2022）的方法并加以改進。采用拮抗細菌菌液灌根處理附子測定其對白絹病的防效。試驗共設4個處理，每處理9盆附子，每盆1株，試驗盆栽隨機擺放。保護試驗：分別用拮抗細菌發酵液（1×108 CFU/mL）、噻呋酰胺和無菌水進行灌根處理，2 d后接種病原菌。治療試驗：先接種病原菌，2 d后分別用拮抗細菌發酵液（1×108 CFU/mL）、噻呋酰胺和無菌水進行灌根處理。接種病原菌后每隔20 d對附子白絹病發病情況進行調查。病情分級：按附子莖葉枯萎程度分為4級，0級，無病葉；1級，病葉數量小于總葉片數的50%；2級，病葉數量為50%～100%，但莖稈未枯萎；3級，病葉數量為100%，莖稈枯萎。分別統計各處理各病級的株數，計算發病率、病情指數及防治效果。

發病率（%）=發病株數/調查總株數×100

病情指數=［∑（各級病株×各級代表值）/調查總株數×3］×100

防治效果（%）=（對照病情指數-處理病情指數）/對照病情指數×100

1. 7 統計分析

采用SPSS 26.0、GraphPadPrism 8.0和Excel 2010對試驗數據進行處理分析和圖表制作，采用Duncan’s新復極差法檢驗不同處理間的差異顯著性。

2 結果與分析

2. 1 拮抗細菌的分離與篩選

從罹病黃粉甲初步分離得到4株細菌。經平板對峙法進行篩選，發現菌株Z1和T2對齊整小核菌菌絲無抑制效果，菌株TS1和TZ1均有抑制效果，且菌株TS1的效果最佳，對齊整小核菌菌絲的抑制率可達68.03%（表1）。表明菌株TS1對齊整小核菌有較好的抑制作用，選取菌株TS1進行后續試驗。

2. 2 拮抗菌株TS1對齊整小核菌的抑制效果

2. 2. 1 平板對峙結果 由圖1和表2可知，菌株TS1對齊整小核菌菌絲的生長具有較好的抑制效果，抑制率可達68.03%；菌株TS1處理與對照產生的菌核數量也存在較大差異，處理的菌核數量顯著少于對照（P<0.05，下同）。

2. 2. 2 拮抗細菌揮發物對附子白絹病菌菌絲生長及產菌核的影響 由表3可知，菌株TS1產生的揮發性物質對齊整小核菌菌絲的抑制率可達71.8%；處理與對照產生的菌核數量也存在較大差異，處理的菌核數量顯著少于對照。

2. 2. 3 拮抗細菌無菌發酵液對附子白絹病菌菌絲生長及產菌核的影響 不同稀釋倍數的拮抗細菌無菌發酵液對齊整小核菌菌絲生長及菌核產生均有一定影響，且隨著稀釋倍數的增加，無菌發酵液對菌絲生長及菌核產生的抑制效果總體上呈逐漸下降的趨勢（表4和表5）。

2. 2. 4 拮抗細菌無菌發酵液對附子白絹病菌菌核萌發的影響 由表6可知，拮抗細菌無菌發酵液可抑制附子白絹病菌菌核萌發，且隨著稀釋倍數的增加呈現抑制率降低的趨勢。

2. 3 拮抗細菌鑒定結果

2. 3. 1 拮抗菌形態特征及其生理生化特征 菌株TS1在LB培養基上培養2～3 d后，形成圓形乳白稍黃菌落，表面干燥，邊緣完整且凸起有褶皺，菌體桿狀，產生橢圓形芽孢，為革蘭氏陽性菌（圖2）。生理生化特征測定結果（表7）顯示，淀粉水解試驗、牛奶石蕊試驗、明膠液化試驗、葡萄糖發酵、甲基紅試驗、H2S水解試驗均為陽性。

2. 3. 2 拮抗細菌分子鑒定結果 將菌株TS1校對后的序列提交至GenBank數據庫進行同源性比對，結果顯示該序列與B. subtilis的相似性為87%。下載同源性高的序列，使用ClustalX 1.83和MEGA 7.0構建系統發育進化樹，結果（圖3）表明，菌株TS1與B. subtilis subsp.聚為一類。綜合拮抗細菌的形態特征及分子鑒定結果，初步鑒定菌株TS1為枯草芽孢桿菌。

2. 4 拮抗細菌發酵條件優化結果

2. 4. 1 培養基優化 由圖4可知，菌株TS1分別在YSP、NYBD、NA、LB和CM等5種培養基上培養24 h的OD600分別為1.640、1.490、1.460、1.630和0.586，各處理間存在一定差異，其中YSP培養基最適合菌株TS1生長，是菌株TS1生長的最佳培養基。

2. 4. 2 碳源對菌株TS1生長速度的影響 由圖5可知，分別以麥芽糖、乳糖、葡萄糖、蔗糖和淀粉作為YSP培養基的碳源，其余成分保持不變，所培養菌株TS1的OD600存在一定差異，其中麥芽糖為碳源時的OD600最高，為1.796，說明麥芽糖是菌株TS1的最佳碳源。

2. 4. 3 氮源對菌株TS1生長速度的影響 由圖6可知，分別以蛋白胨、酵母浸粉、氯化銨、硝酸銨和甘氨酸作為YSP培養基的氮源，其余成分保持不變，所培養菌株TS1的OD600存在一定差異，其中蛋白胨作為氮源時的OD600最高，為1.647，說明蛋白胨為最佳氮源。

2. 4. 4 初始接菌量對菌株TS1生長速度的影響 由圖7可知，不同初始接菌量下培養的菌株TS1的OD600相近，各處理間無顯著差異（P>0.05），其中接菌量為0.50%時OD600最大值，為1.821，說明0.50%的初始接菌量為最佳接菌量。

2. 4. 5 裝液量對菌株TS1生長速度的影響 由圖8可知，不同裝液量下培養的菌株TS1的OD600存在一定差異，其中，當裝液量為30 mL時的OD600最高，為1.890，說明30 mL為最佳裝液量。

2. 4. 6 轉速對菌株TS1生長速度的影響 由圖9可知，不同轉速條件下培養的菌株TS1的OD600存在一定差異，當轉速為210 r/min時菌株TS1的OD600達最大值，為1.740，說明210 r/min為最佳轉速。

2. 4. 7 溫度對菌株TS1生長速度的影響 由圖10可知，在20～46 ℃條件下菌株TS1均可生長，但不同溫度下的OD600存在一定差異，其中42 ℃時菌株TS1的生長最好，OD600達2.158，說明42 ℃為最佳生長溫度。

2. 4. 8 初始pH對菌株TS1生長速度的影響 由圖11可知，不同pH條件下培養的菌株TS1的OD600存在一定差異。菌株TS1在pH 5～10時均可生長，其中pH為9時菌株生長情況最好，OD600可達1.790，說明pH 9為最佳初始pH。

2. 4. 9 發酵時間對菌株TS1生長速度的影響 由圖12可知，不同培養時間下菌株TS1的生長速度存在一定差異。剛開始培養時菌株TSI的OD600隨培養時間增加而逐漸上升，培養4 h后菌株的生長速度加快，在48 h時達最大值，此時的OD600為1.960，繼續在搖床上培養，72～120 h時菌株的生長速度開始減緩，呈現一個平穩下降的趨勢，說明48 h為最適發酵時間

2. 5 室內盆栽防效試驗結果

保護試驗結果（表8）顯示，噻呋酰胺處理的平均防效為66.67%，而用菌株TS1發酵液處理的防效也可達49.39%，二者間差異顯著；治療試驗結果顯示，菌株TS1發酵液處理與噻呋酰胺處理的平均防效相當，分別為62.97%和58.03%。

3 討論

芽孢桿菌具有耐高溫、抗紫外線、耐鹽等特性，同時與大多數根際促生細菌相似，可產生細胞壁降解酶類以及脂肽類抗生素，對真菌和一些細菌病原體具有拮抗活性，其代謝物可促進植物生長，并且通過影響根際微生物，觸發宿主的防御反應提高植物的抗逆性，使其成為很好的生物防治劑（Wulff et al.，2002；李永麗等，2021；王蕊等，2021）?？莶菅挎邨U菌屬于細菌，其作為芽孢桿菌的模式菌株，具有生長速度快、營養簡單以及產生耐高溫、具抗逆性的芽孢等特點，在生物防治應用方面具有較大潛力（黃曦等，2010；何藝琴等，2019）。目前，具有拮抗作用的枯草芽孢桿菌通常從土壤或植物體內分離獲得，少有從昆蟲體內分離并應用。而昆蟲的生命活動與其體內存在的微生物有著密切關系，二者相互依存，相互影響，對昆蟲體內微生物的研究開發具有深遠的意義（何明川等，2022）。

本研究對從黃粉甲分離到的1株枯草芽孢桿菌菌株TS1進行抑菌試驗，發現該菌對齊整小核菌的平板抑制率可達68.03%。本研究采用單因素試驗方法對其基礎培養基和發酵條件進行優化，結果表明最佳培養基為YSP培養基，麥芽糖為最佳碳源，蛋白胨為其最佳氮源，其優化培養基配方為：蛋白胨10.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、麥芽糖15.0 g/L；最佳發酵條件為裝液量30 mL、接菌量0.50%、轉速為210 r/min、培養溫度42 ℃、初始pH 9、培養時間48 h。將菌株TS1與金黎明等（2020）和夏俊芳等（2020）從土壤中分離得到的枯草芽孢桿菌21-1-2、T3，何明川等（2021）從美洲大蠊體內分離得到的枯草芽孢桿菌MC4-2的最佳發酵條件進行比較，可發現除菌株TS1外其他3株菌株在pH的選擇上相似，集中在6～7，而菌株TS1的最適pH為9；轉速基本集中在180～210 r/min；菌株TS1與MC4-2在最適裝液量的選擇相同，而且二者對于氮源的選擇也相同。將菌株TS1與實驗室保存的菌株枯草芽孢桿菌ZLSY-2的生理生化測定結果進行比較，發現在尿素分解、葡萄糖發酵和H2S水解等方面存在差異，可能是不同菌株對尿素、葡萄糖和硫化氫的不同作用所致。

本研究探究了生防菌株TS1的揮發物和非揮發物對附子白絹病菌菌絲營養生長及菌核產生情況的影響，結果表明，菌株TS1的揮發物和非揮發物可有效抑制齊整小核菌菌絲的生長和菌核的形成。葉云峰等（2011）發現枯草芽孢桿菌B47可通過產生環狀脂肽iturin A進而對多種病原真菌產生抑制作用；王雅等（2014）從柑橘葉片分離得到枯草芽孢桿菌Bv10，從該菌株的無菌發酵液中提取得到A、B兩種對芝麻白絹病具有較好抑制作用的活性物質，經鑒定，純化物A為脂肽化合物伊枯草菌素iturinA2，純化物B為iturinA4；李廣等（2022）發現枯草芽孢桿菌1151通過產生抗菌肽物質降低辣椒軟腐病發病程度和病斑直徑，其抗菌肽類物質可能包括AP01339（BHP）、AP00889（SP-B）、AP02860（Hb 98-114）、subtilosin A和Subtilosin Sbox等。綜上，菌株TS1也極有可能通過產生上述物質從而抑制附子白絹病病原菌的生長以及菌核的產生。

本研究對附子白絹病進行了室內盆栽防效測定，發現菌株TS1發酵液在保護試驗中有49.39%的防效，在治療試驗中可達到62.97%的防治效果。本研究結果與文毅（2010）用枯草芽孢桿菌B8對魚腥草白絹病和楊義等（2010）用枯草芽孢桿菌Bv22對茉莉花白絹病進行室內盆栽防效測定，20 d時分別達66.1%和56.8%的防效相似。綜上可以看出，同一種病原菌在不同作物上的發生情況不同，而且來源不同的枯草芽孢桿菌對齊整小核菌的影響效果也不盡相同。

本研究為枯草芽孢桿菌應用于生物防治提供了更多的參考和依據，并豐富了昆蟲內生細菌的研究，同時也表明菌株TS1存在較好的生防潛力，下一步可加強對該菌株的代謝產物、生防機制的研究。

4 結論

枯草芽孢桿菌菌株TS1對齊整小核菌具有較好的抑制作用，其最佳培養基為YSP，最佳碳源為麥芽糖，最佳氮源為蛋白胨；優化培養基配方為：蛋白胨10.0 g/L、酵母浸粉5.0 g/L、麥芽糖15.0 g/L；最佳發酵條件為裝液量30 mL、接種量0.50%、轉速210 r/min、培養溫度42 ℃、初始pH 9、培養時間48 h。優化的發酵方案可用于快速、大批量培養菌株TS1菌懸液。室內盆栽試驗結果表明，菌株TS1對附子白絹病有較好的防治效果，具有開發成附子白絹病生防菌的潛力。

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（責任編輯 麻小燕）

收稿日期：2022-09-14

基金項目：四川省區域創新合作項目（2021YFQ0022）；云南省科技計劃項目（202105AC160037）

通訊作者：吳國星（1975-），https：//orcid.org/0000-0002-7308-2161，博士，教授，主要從事農業有害生物綜合治理研究工作，E-mail：wugx1@163.com

第一作者：施春蘭（1998-），https：//orcid.org/0000-0001-6914-1774，研究方向為生物農藥開發與利用，E-mail：shiclan22@163.com