傳染性法氏囊病病毒新型變異株VP2蛋白原核表達及免疫效果評價

馬景霞 王常偉 吳洪才 何吉鑫 牛曉賽 段志強 朱杰

DOI：10.3969/j.issn.2095-1191.2023.06.029

摘要：【目的】構建傳染性法氏囊病病毒新型變異株（vaIBDV）VP2蛋白原核表達質粒，并明確VP2蛋白的免疫原性，為vaIBDV亞單位疫苗的開發提供技術支持?！痉椒ā繌腎BDV新型變異株（BZ）中擴增VP2基因片段，亞克隆至pET-28a（+）載體上構建重組原核表達質粒，并轉化大腸桿菌BL21（DE3）感受態細胞，以IPTG誘導表達后通過SDS-PAGE和Western blotting進行鑒定，并以vaIBDV陽性血清進行瓊擴效價測定；經Ni-NTA親和層析純化及適當濃縮后，制備乳化疫苗并免疫21日齡SPF雞，通過安全性檢驗、抗體效價測定及攻毒保護評價進一步驗證融合蛋白VP2的免疫原性?！窘Y果】在25 ℃下以IPTG進行誘導表達，獲得的融合蛋白VP2主要呈可溶性表達，大小約40 kD，且表達上清液中的融合蛋白VP2能與vaIBDV陽性血清發生特異性反應，其瓊擴效價可達1∶32；經Ni-NTA親和層析純化及適當濃縮后，融合蛋白VP2的瓊擴效價高達1∶256。以融合蛋白VP2為抗原制備的亞單位疫苗穩定性好，安全性高，無免疫引起的不良反應，剖檢也未發現接種部位有明顯損傷、局部炎癥或疫苗吸收不良等現象。免疫21 d后雞血清瓊擴效價平均值達1∶76.8，而血清抗體效價均在1∶20000以上，表明以融合蛋白VP2制備的疫苗可刺激機體產生強烈的體液免疫反應，抗體陽性率達100%；使用IBDV BZ株攻毒后7 d剖檢觀察雞法氏囊病變情況，結果顯示免疫組雞只均未發病，其法氏囊也無明顯萎縮現象，即免疫保護率達100%?！窘Y論】通過原核表達系統能成功實現vaIBDV VP2蛋白的可溶性表達，且獲得的融合蛋白VP2免疫原性良好，能對vaIBDV提供100%的免疫保護效果，為開發vaIBDV亞單位疫苗提供了技術支持。

關鍵詞：傳染性法氏囊病病毒（IBDV）；新型變異株；VP2蛋白；亞單位疫苗；免疫效果

中圖分類號：S852.659.4? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? 文獻標志碼：A 文章編號：2095-1191（2023）06-1876-08

Prokaryotic expression and immune effect evaluation of VP2 protein of a novel variant infectious bursal disease virus strain

MA Jing-xia1， WANG Chang-wei2， WU Hong-cai2， HE Ji-xin2， NIU Xiao-sai2，

DUAN Zhi-qiang3， ZHU Jie2

（1Binzhou Argo-tech Extension Center，Binzhou，Shandong? 256600，China； 2Shandong Binzhou Wohua Biological

Engineering Co.，Ltd.，Binzhou，Shandong? 256600，China； 3College of Animal Sciences， Guizhou University，

Guiyang，Guizhou? 550025，China）

Abstract：【Objective】This paper constructed the prokaryotic expression plasmid of VP2 protein of a novel variant of infectious bursal disease virus （vaIBDV）， and clarified the immunogenicity of VP2 protein， so as to provide technical support for the development of vaIBDV subunit vaccine. 【Method】The VP2 gene fragment was amplified from vaIBDV isolate （BZ strain） and cloned into vector pET-28a（+） to recombine prokaryotic expression plasmid， then transformed into the Escherichia coli BL21（DE3） competent cell， and induced by IPTG. The expressed products were identified by SDS-PAGE and Western blotting， and the titer was determined by vaIBDV-positive serum through agar-gel precipitation （AGP）. After purification by Ni-NTA affinity chromatography and proper concentration， the emulsified vaccine was prepared and used to immunize 21-day-old SPF chickens. The immunogenicity of the fusion protein VP2 was further verified by safety test， antibody titer determination and immune challenge experiment. 【Result】The fusion protein VP2 was mainly expressed in soluble form at 25 ℃ induced by IPTG， and the size was about 40 kD. The fusion protein VP2 in the expression supernatant could specifically react with vaIBDV positive serum， and its agar diffusion titer could reach 1∶32. After purification by Ni-NTA affinity chromatography and appropriate concentration， the agar diffusion titer of the fusion protein VP2 was as high as 1∶256. The subunit vaccine prepared with the fusion protein VP2 as the antigen had good stability， high safety， and no adverse reactions caused by immunization. No obvious damage， local inflammation， and poor vaccine absorption were found at the inoculation site. After 21 d of immunization， the average agar diffusion titer of chi-cken serum was 1∶76.8， and the serum antibody titer was above 1∶20000， indicating that the vaccine prepared with the fusion protein VP2 could stimulate the body to produce a strong humoral immune response， and the antibody positive rate was 100%. The pathological changes of bursa of Fabricius in chickens were observed 7 d after challenging with IBDV BZ strain. The results showed that none of the chickens in the immunized group had disease， and there was no obvious atrophy of bursa of Fabricius， which meant that the immune protection rate was 100%. 【Conclusion】The soluble expression of vaIBDV VP2 protein is successfully achieved by prokaryotic expression system， and the obtained fusion protein VP2 has good immunogenicity and can provide 100% immune protection against vaIBDV， which provides technical support for the development of vaIBDV subunit vaccine.

Key words： infectious bursal disease virus（IBDV）； novel variant strain； VP2 protein； subunit vaccine； immune effect

Foundation items： National Natural Science Foundation of China （31960698）； Binzhou Wohua Biological Fund （［WH］201901QB01-02）

0 引言

【研究意義】傳染性法氏囊?。↖nfectious bursal disease，IBD）是一種全球范圍內廣泛流行且主要危害青年雞群的免疫抑制性疾病，其病原是傳染性法氏囊病病毒（Infectious bursal disease virus，IBDV）（王占偉等，2012；梅永杰等，2016）。IBDV可分為I型和II型2個血清型，但只有血清I型對雞有致病性。在過去長時間的流行過程中，血清I型IBDV發生過2次較大的變異，先后出現了經典毒株（cIBDV）、變異株（vIBDV）和超強毒株（vvIBDV）（范林進等，2019；王雨龍，2021）。自2017年以來，不同于早期vIBDV的新型變異株（vaIBDV）在我國呈現流行趨勢，感染雞群雖然眼觀無明顯的臨床癥狀，但其生產性能下降，剖檢可見法氏囊嚴重萎縮，給我國養禽業帶來新的挑戰（嚴專強等，2020；程小果等，2022）。值得注意的是，感染vaIBDV的雞群均免疫過vvIBDV疫苗，說明在實際生產中針對vvIBDV開發的商品疫苗并不能對vaIBDV產生免疫作用（崔平等，2020）。vaIBDV具備一定的免疫逃逸能力，且會引起嚴重免疫抑制，影響雞群的整體免疫效果（Fan et al.，2020；Xu et al.，2020）。因此，研發針對vaIBDV的疫苗對科學防控IBD暴發流行具有重要意義?！厩叭搜芯窟M展】目前，疫苗接種仍是防控IBD暴發流行最主要的措施，使用的疫苗主要有傳統減毒活疫苗、滅活疫苗及新型疫苗（Witter and Hunt，1994；楊宵玥等，2018）。免疫活疫苗可誘導雞群在短時間內產生主動免疫，但免疫效果易受母源抗體的干擾，甚至導致免疫失?。↗ackwood，2017）。此外，一些商品化IBDV活疫苗毒力偏強，不僅有可能引起免疫抑制，還存在毒力返強和散毒等生物安全風險（Müller et al.，2012）。滅活疫苗相對來說安全性更高，但其免疫效果略低，需要多次加強免疫，因而增加了免疫成本（朱思思和李永紅，2019）。目前，絕大多數傳統疫苗都是基于cIBDV或vvIBDV研制，未能對vIBDV或vaIBDV提供可靠的免疫保護作用（Yang and Ye，2020），已商品化的新型疫苗主要有亞單位疫苗及病毒載體疫苗。IBDV基因組由A和B片段組成，共編碼5種蛋白，分別是VP1、VP2、VP3、VP4和VP5（李賽賽等，2017；Sahithi et al.，2019），其中，VP2蛋白是病毒核衣殼的主要組成部分，占病毒總蛋白的51%，也是主要的宿主保護性抗原（范林進，2020；秦穎，2021）。VP2至少包含2～3個與宿主保護相關的中和表位，通過刺激機體產生中和抗體而免受病毒侵害（Li et al.，2020）。至今，針對IBDV的亞單位疫苗均以VP2為主要疫苗抗原，而禽痘病毒、禽腺病毒、新城疫病毒和火雞皰疹病毒常被用作基因工程病毒載體以表達VP2蛋白，該策略獲得的VP2蛋白重組病毒活載體疫苗在免疫后不會導致法氏囊損傷，從而避免活疫苗免疫可能導致的免疫抑制（Huang et al.，2004；Zhou et al.，2010；Kurukulasuriya et al.，2017）。國外已有多種商業化表達IBDV VP2蛋白的活載體疫苗上市，在國內市面上相關載體活疫苗主要是雞傳染性法氏病病毒火雞皰疹病毒載體活疫苗（vHVT-013-69株）?！颈狙芯壳腥朦c】在vvIBDV的防控過程中，以VP2蛋白為抗原的亞單位疫苗取得了理想防控效果，但以vvIBDV為基礎開發的亞單位疫苗已無法控制vaIBDV的感染，因此亟待以新出現的vaIBDV為防控目標研發新的亞單位疫苗?！緮M解決的關鍵問題】以山東濱州沃華生物工程有限公司2019年分離獲得的IBDV新型變異株（BZ）為研究對象，構建其VP2蛋白原核表達質粒并利用大腸桿菌進行誘導表達，以期獲得針對vaIBDV的保護性抗原，為vaIBDV亞單位疫苗的開發提供技術支持。

1 材料與方法

1. 1 試驗材料

IBDV BZ株由山東濱州沃華生物工程有限公司分離并保存（崔平等，2020）；21日齡SPF雞由山東濱州沃華生物工程有限公司實驗動物中心提供；pET-28a（+）載體購自Novagen公司；大腸桿菌DH5α和BL21（DE3）感受態細胞及HRP標記兔抗雞IgG購自生工生物工程（上海）股份有限公司；核酸提取試劑盒（EasyPure Viral DNA/RNA Kit）、反轉錄試劑盒及Phanta? Max Super-Fidelity DNA聚合酶購自南京諾唯贊生物科技股份有限公司；AxyPrepTM DNA Gel Extraction Kit購自愛思進生物技術（杭州）有限公司；限制性內切酶和T4 DNA連接酶購自賽默飛世爾科技（中國）有限公司；2×Easy Taq PCR Super Mix購自北京全式金生物技術股份有限公司；質粒提取試劑盒購自天根生化科技（北京）有限公司；Ni-NTA親和層析介質購自南京金斯瑞生物科技有限公司；BeyoColor?彩色預染蛋白分子量標準購自上海碧云天生物技術有限公司；DAB顯色試劑盒購自上海雅酶生物醫藥科技有限公司；IBDV VP2蛋白ELISA抗體檢測試劑盒購自百沃特（天津）生物技術有限公司；vaIBDV瓊擴抗原購自中國獸醫藥品監察所（農業農村部獸藥評審中心）；雞vaIBDV陽性血清由山東濱州沃華生物工程有限公司自制。

1. 2 引物設計與合成

根據GenBank已公布的IBDV A節段基因序列（NC_004178.1），設計VP2基因特異性擴增引物（VP2-F：5'-CGAGGATCCTAAATGACAAACCTGCA AGATC-3'；VP2-R：5'-AGCACTCGAGCCTTATGGC CCGGATTATG-3'）（下劃線部分分別為BamH I和Xho I酶切位點），并委托生工生物工程（上海）股份有限公司合成。

1. 3 核酸提取及VP2基因PCR擴增

按照EasyPure Viral DNA/RNA Kit說明提取IBDV BZ株組織RNA，并反轉錄合成cDNA，然后使用Phanta? Max Super-Fidelity DNA聚合酶進行PCR擴增。PCR反應體系30.0 μL：2×Phanta Max Buffer 15.0 μL，Phanta? Max Super-Fidelity DNA聚合酶0.6 μL，cDNA模板2.0 μL，dNTP Mix（10 mmol/L） 0.6 μL，上、下游引物各1.2 μL，ddH2O 9.4 μL。擴增程序：95 ℃預變性3 min；95 ℃ 15 s，56 ℃ 15 s，72 ℃ 90 s，進行35個循環；72 ℃終延伸5 min。PCR擴增產物經1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測后，使用膠回收試劑盒進行純化回收。

1. 4 重組原核表達質粒構建與鑒定

使用BamH I和Xho I限制性內切酶對VP2基因片段和pET-28a（+）載體進行雙酶切，回收酶切產物后以T4 DNA連接酶進行連接。連接產物轉化DH5α感受態細胞，挑取5個單菌落進行菌液PCR鑒定，陽性菌液送至生工生物工程（上海）股份有限公司測序。測序正確的菌液適量擴大培養，提取質粒并進行雙酶切鑒定，陽性重組原核表達質粒命名為pET-28a-VP2。以重組原核表達質粒pET-28a-VP2轉化BL21（DE3）感受態細胞，挑取單個菌落接種于含50 μg/mL卡那霉素的LB液體培養基中培養過夜，即獲得表達質粒菌液。

1. 5 融合蛋白VP2誘導表達與鑒定

取對數生長期的新鮮菌液按1∶100比例接種至LB液體培養基（含50 μg/mL卡那霉素）中，37 ℃下220 r/min振蕩培養2～3 h，至菌液OD600 nm達0.4～0.6時加入終濃度為0.5 mmol/L的IPTG，在25 ℃下進行誘導表達，誘導過夜后離心收集菌體。用1∶10體積的PBS重懸菌體，高壓破碎后4 ℃下10000 r/min離心10 min，收集上清液，沉淀用等體積的PBS重懸。取上清液、沉淀懸浮液與5×蛋白上樣緩沖液按4∶1比例混勻，金屬浴100 ℃煮沸5 min，冷卻至室溫后進行SDS-PAGE檢測和Western blotting鑒定，并以vaIBDV陽性血清測定上清液中的蛋白瓊擴效價。

1. 6 融合蛋白VP2純化及疫苗制備

使用Ni-NTA親和層析對誘導表達上清液進行純化，并用PEG-6000進行適當濃縮。純化濃縮產物經SDS-PAGE檢測后，以vaIBDV陽性血清測定其瓊擴效價。用PBS將融合蛋白VP2原液進行1∶8稀釋作為水相，加入適量Tween-80；將Marcol 52白油、Span-80和硬脂酸鋁按照合適比例混勻，高壓滅菌后作為油相。按水相∶油相=1∶3（v/v）進行乳化，根據《中華人民共和國獸藥典》（2005年版）對配制的疫苗進行劑型、穩定性及無菌檢驗。

1. 7 融合蛋白VP2安全性檢驗

取10羽21日齡SPF雞，于頸部皮下注射制備的疫苗（1.0 mL/羽），同時設空白對照組（5羽21日齡SPF雞），注射后連續觀察14 d，檢驗是否存在因疫苗注射引起任何局部或全身不良反應。

1. 8 融合蛋白VP2免疫效果評價

選擇20羽21日齡SPF雞隨機分成3組，其中，免疫組10羽（頸部皮下注射制備的疫苗，注射劑量為0.3 mL/羽），攻毒對照組5羽，空白對照組5羽。于免疫后21 d翅下靜脈采血并分離血清，以純化的融合蛋白VP2為抗原測定血清瓊擴效價，同時以ELISA抗體檢測試劑盒測定血清抗體效價。使用IBDV BZ株對SPF雞進行點眼和口服攻毒，攻毒劑量為101.5 EID50，連續觀察7 d后進行剖檢，觀察法氏囊有無病變。

2 結果與分析

2. 1 VP2基因擴增結果

以IBDV BZ株的cDNA為模板對VP2基因進行擴增，經1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測可觀察到1380 bp大小的目的條帶（圖1），與預期結果相符。

2. 2 重組原核表達質粒pET-28a-VP2構建及鑒定結果

使用BamH I和Xho I限制性內切酶對重組原核表達質粒pET-28a-VP2進行酶切鑒定，結果如圖2所示，重組原核表達質粒的雙酶切產物分別獲得1365 bp的VP2基因條帶和5300 bp左右的載體條帶，且測序結果顯示無堿基突變，表明重組原核表達質粒pET-28a-VP2構建成功。

2. 3 融合蛋白VP2表達與鑒定結果

通過SDS-PAGE對融合蛋白VP2的表達情況進行檢測，結果（圖3-A）發現誘導表達獲得的融合蛋白VP2主要存在于上清液中，即呈可溶性表達，蛋白大小約40 kD，與預期結果相符。Western blotting鑒定結果（圖3-B）顯示，上清液中的融合蛋白VP2能與vaIBDV陽性血清發生特異性反應，其瓊擴效價可達1∶32?？梢?，構建的重組原核表達質粒pET-28a-VP2通過BL21（DE3）感受態細胞能成功表達出VP2蛋白，且表達獲得的融合蛋白VP2具有良好反應原性。

2. 4 融合蛋白VP2純化與疫苗制備情況

2. 4. 1 融合蛋白VP2純化效果 通過Ni-NTA親和層析純化上清液中的融合蛋白VP2并進行適當濃縮，經SDS-PAGE檢測及瓊脂擴散試驗鑒定其純化效果。結果如圖4所示，融合蛋白VP2純化洗脫液在預期的位置獲得單一條帶，純化效果較好，純化濃縮后的融合蛋白VP2瓊擴效價高達1∶256。

2. 4. 2 疫苗制備情況 根據《中華人民共和國獸藥典》（2005年版）對配制的疫苗進行劑型、穩定性及無菌檢驗，結果顯示，制備獲得的疫苗呈典型油包水型，少量疫苗滴入（除第1滴外）冷水中后無擴散現象；10 mL的疫苗經3000 r/min離心15 min，管底未見水相析出；無菌檢驗結果顯示疫苗無細菌生長，均符合相關規定。

2. 5 VP2蛋白亞單位疫苗安全性檢驗結果

疫苗安全性檢驗結果顯示，接種疫苗后所有雞只的精神狀態、采食及飲水均未見異常，接種部位無紅腫反應，且剖檢也未發現接種部位有明顯損傷、局部炎癥或疫苗吸收不良等現象（圖5）。

2. 6 VP2蛋白亞單位疫苗的免疫保護效果評價

免疫后21 d采集雞血清，分別使用vaIBDV瓊擴抗原和ELISA抗體檢測試劑盒測定血清瓊擴效價及抗體效價，結果顯示，雞血清瓊擴效價平均值達1∶76.8，而血清抗體效價均在1∶20000以上，表明誘導表達獲得的融合蛋白VP2具有良好免疫原性，免疫后可刺激機體產生強烈的體液免疫反應，抗體陽性率達100%。使用IBDV BZ株攻毒后7 d，剖檢雞只并觀察其法氏囊病變情況，結果顯示，攻毒對照組雞只發病率為100%，其法氏囊出現萎縮的典型病變（圖6）；免疫組雞只均未發病，其法氏囊也無明顯萎縮現象，即免疫保護率達100%。

[圖 6 IBDV BZ株攻毒7 d后雞法氏囊剖檢結果

Fig.6 Results of autopsy on bursa of Fabriciusof chicken IBDV BZ strain after 7 d of challenge]<G：＼2023.6＼馬景霞6.jpg>[免疫組

Immune group][攻毒對照組

Challenge control group][空白對照組

Blank control group]

3 討論

自20世紀90年代以來，vvIBDV的流行給養禽業帶來巨大經濟損失，雖然隨著疫苗的普遍使用及生物安全意識和飼養管理水平的提高，vvIBDV逐漸得到控制，但vaIBDV仍在雞群中廣泛流行（Li et al.，2015；Fan et al.，2020；Xu et al.，2020）。vaIBDV不會造成明顯的臨床癥狀或死亡率升高，但能導致法氏囊在短時間內萎縮，引起嚴重的免疫抑制而影響疫苗免疫效果（崔平等，2020；王雨龍，2021）。此外，多項研究數據表明，現有的商品化疫苗已不能對vaIBDV提供100%的保護效果（崔平等，2020；Fan et al.，2020）?？梢?，vaIBDV的出現給當前家禽養殖業帶來極大挑戰，因此亟待研發針對vaIBDV的疫苗。

VP2蛋白是IBDV主要的結構蛋白，也是主要的保護性抗原。VP2蛋白的第206～350位氨基酸區域變異較頻繁，被稱為IBDV高變區，與病毒毒力及中和抗體表位等密切相關（秦穎，2021）。本研究中，IBDV BZ株包含有vIBDV的特征性氨基酸位點（222T、249K、286I和318D），也具有vaIBDV的獨特氨基酸位點（221K、252I和299S），當前的IBD疫苗已不能對IBDV BZ株提供有效的免疫保護（崔平等，2020）。范林進（2020）也研究證實，VP2蛋白是IBDV毒力和抗原變異的重要決定因素，各關鍵氨基酸位點的變異均會對病毒毒力、中和抗體活性及免疫逃逸能力造成一定影響。由于VP2高變區與抗體中和活性及病毒毒力密切相關，導致vaIBDV與vvIBDV的抗原差異明顯，也進一步佐證VP2蛋白是最優的IBDV基因工程亞單位疫苗抗原靶點（洪家兵等，2020；王彥偉等，2020；肖倩等，2022；張文英等，2022）。因此，根據VP2蛋白開發針對vaIBDV的亞單位疫苗具有可行性。

亞單位疫苗是將病原體中具有免疫原性的蛋白在體外通過合適的表達系統進行表達，再利用純化蛋白作為免疫原進行免疫，以誘導產生抗體而達到保護的目的（譚偉等，2014；汪夢竹等，2022）。本研究通過大腸桿菌表達系統成功表達出vaIBDV的VP2蛋白，經Ni-NTA親和層析純化獲得高純度的融合蛋白VP2。融合蛋白VP2主要呈可溶性表達，為后續的處理及規?；a提供了便利條件。但Ni-NTA親和層析純化技術操作復雜且成本較高，不適合大規模生產，如后續應用到生產中宜采用飽和硫酸銨鹽析進行蛋白純化。本研究結果表明，通過原核表達獲得的融合蛋白VP2在未經純化處理前（誘導表達上清液）的瓊擴效價為1∶32，經純化及濃縮后瓊擴效價高達1∶256。高效率的可溶性表達能顯著提高蛋白產量，同時有效降低生產成本，因此在實際生產應用過程中還需進一步優化誘導表達條件及蛋白后期處理工藝。

在免疫效果評價中，以融合蛋白VP2配制的疫苗可刺激機體產生強烈的體液免疫反應，抗體水平較高，也反映了該蛋白具備良好的免疫原性；在攻毒保護試驗中，VP2蛋白亞單位疫苗能為免疫雞只提供100%的免疫保護。本課題組前期研究發現，傳統的雞新城疫—禽流感（H9亞型）—雞傳染性法氏囊病三聯滅活疫苗在免疫后21 d對包括BZ株在內的5株vaIBDV的免疫保護率僅為50%～80%，對BC6/85株（vvIBDV）則可以提供100%的免疫保護。隨著vaIBDV的暴發流行，國內各地分離獲得的IBDV毒株也逐漸增多，針對vaIBDV疫苗開發的研究也日益增多。榮俊等（2020）利用IBDV FJ-1812株構建了能表達VP2蛋白的表達載體及工程菌，誘導表達獲得的VP2蛋白能對IBDVFJ-1812株提供完全保護，而vvIBDV基因工程亞單位疫苗對IBDV FJ-1812株的攻毒只提供部分保護。此外，由于原核表達體外表達技術對于蛋白結構的修飾程度較弱，很難保證蛋白的天然構象，而可能對蛋白的免疫原性造成不利影響（汪夢竹等，2022）。已有研究證實，在VP2蛋白表達盒N端添加構象原件模擬IBDV VP3蛋白C末端與VP2蛋白互作，有利于VP2蛋白正確構象的形成，從而提高其免疫原性（Saugar et al.，2005；張文英等，2022）。因此，今后應在本研究基礎之上進一步優化VP2蛋白的誘導表達條件，以期將免疫原性更強、保護效果最佳的VP2蛋白應用到vaIBDV疫苗研發中，為有效防控IBD暴發流行及保障家禽養殖業健康發展提供技術保障。

4 結論

通過原核表達系統能成功實現vaIBDV VP2蛋白的可溶性表達，且獲得的融合蛋白VP2免疫原性良好，能對vaIBDV提供100%的免疫保護效果，為開發vaIBDV亞單位疫苗提供了技術支持。

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（責任編輯 蘭宗寶）

收稿日期：2023-03-31

基金項目：國家自然科學基金項目（31960698）；濱州沃華生物基金項目（［WH］201901QB01-02）

第一作者：馬景霞（1966-），https：//orcid.org/0009-0007-0834-7382，推廣研究員，主要從事動物疫病防控研究工作，E-mail：hjx20211105 @163.com