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新型Argonaute蛋白的挖掘及體外活性表征

2024-01-10 02:41方蒙君司振軍沈培杰徐志南
關鍵詞:核酸酶序列號去離子水

方蒙君, 司振軍, 沈培杰, 黃 迪, 徐志南

(浙江大學 化學工程與生物工程學院,浙江 杭州 310000)

Argonaute 蛋白(Agos)廣泛存在于原核和真核生物中[1],可以通過短核苷酸的介導來結合或切割與其序列互補的核酸分子[2]。真核生物來源的Agos(eukaryotic Agos,eAgos)是RNA 干擾途徑(RNA interference,RNAi)中的主要組成部分,用于調控基因的表達和抵抗病毒的入侵[3-5]。而原核生物來源的Agos(prokaryotic Agos,pAgos)也有免疫功能,可以降解入侵的遺傳元件,如質粒和噬菌體核酸等[6-7]。

eAgos主要通過RNA的介導特異性切割RNA分子,而pAgos則更偏好以單鏈DNA(single-stranded DNA,ssDNA)為導向切割DNA 靶標[8-9]。然而隨著研究的深入,越來越多具有多樣功能的pAgos 引起了人們的注意。例如,來自Kurthia massiliensis的KmAgo[10-11]和Marinitoga piezophila的MpAgo[12]可以通過ssDNA 或RNA的介導切割DNA和RNA底物。除了導向核酸類型之外,pAgos的核酸酶活性還受導向的5末端修飾基團的影響。大多數pAgos偏好具有5末端磷酸基團的導向核酸,此時切割位點位于導向的第10-11位堿基對應的磷酸二酯鍵[13]。而某些pAgos也可利用5′末端為羥基的核酸為導向,此時切割位點會發生遷移,位于第11-12位堿基之間[10]。

pAgos的可編碼核酸內切酶活性使得它在核酸操作領域,例如基因組編輯[14-15]、人工限制性核酸內切酶開發[16]和核酸檢測[17]等,具有廣闊的應用前景。然而,目前只有少數幾種pAgos的酶學性質、催化機理和結構進行了研究分析。因此,對于新型pAgos的挖掘和研究不僅可以深化我們對Agos的了解,還可以為核酸操作領域提供更多的工具蛋白。本研究通過在NCBI中比對已報道的、具有核酸酶活性的pAgos序列,獲得了一些同源性較高的新型pAgos,并對其進行了表達純化和體外活性驗證,為后續的pAgos研究工作提供了新的參考和借鑒。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 培養基LB培養基:10 g/L氯化鈉、5 g/L酵母提取物、10 g/L蛋白胨(固體培養基再添加1.5%的瓊脂粉);TB培養基:24 g/L酵母提取物、12 g/L蛋白胨、12.5 g/L磷酸氫二鉀、2.3 g/L磷酸二氫鉀、4 g/L甘油。

1.1.2 商品化試劑

Bradford 蛋白濃度測定試劑盒,翌圣生物,貨號20202ES86;2 × SSCP去離子甲酰胺凝膠上樣緩沖液,上海生工,貨號B548;4 × Protein SDS-PAGE Loading Buffer,TaKaRa,貨號9173;Acryl/Bis 40% Solution,37.5∶1,上海生工,貨號B54601;大腸桿菌BL21(DE3)感受態細胞,上海生工,貨號B528419-0005。

1.1.3 SDS-PAGE試劑

15%分離膠:3.867 mL Acryl/Bis 40% Solution(37.5∶1)、2.533 mL Tris-HCl(1.5 mol/L,pH8.8)、100 μL 10% APS、100 μL 10% SDS、10 μL TEMED,去離子水補充至10 mL;5%濃縮膠:0.62 mL Acryl/Bis 40% Solution(37.5∶1)、0.62 mL Tris-HCl(1 mol/L,pH6.8)、50 μL 10% APS、50 μL 10% SDS、4 μL TEMED,去離子水補充至5 mL;5×SDS-PAGE 電泳緩沖液:0.125 mol/L Tris、1.25 mol/L glycine、0.5% SDS;染色液:80 mL 去離子水、100 mL甲醇、20 mL乙酸、0.5 g考馬斯R-250;脫色液:600 mL去離子水、300 mL甲醇、100 mL乙酸。

1.1.4 尿素-PAGE試劑

10×TBE:108 g/L Tris、55 g/L 硼酸、7.44 g/L 二水合Na2EDTA;14%尿素-PAGE 配方:4.2 g 尿素、3.5 mL Acryl/Bis 40% Solution(37.5∶1)、1 mL 10×TBE、100 μL 10% APS、10 μL TEMED,去離子水補充至10 mL。

1.1.5 親和純化試劑破胞緩沖液:20 mmol/L Tris-HCl、0.3 mol/L NaCl、20 mmol/L 咪唑,pH7.5;洗脫緩沖液:20 mmol/L Tris-HCl、0.3 mol/L NaCl、250 mmol/L咪唑,pH7.5;蛋白保存緩沖液:20 mmol/L Tris-HCl、0.1 mol/L KCl,pH7.5。

1.1.6 寡核苷酸序列

FAM-tDNA:FAM-aaaataatttaatatactatacaacctactacctcttata;

FAM-tRNA:FAM-aaaauaauuuaauauacuauacaaccuacuaccucuuaua;

P/OH-gDNA:P/OH-tgaggtagtaggttgtata;

P/OH-gRNA:P/OH-gagguaguagguuguaua。

1.1.7 氨基酸序列

TtrAgo(Thermococcus thioreducens):MLMKVLTNMVKLNQDIIPNEIYLYKIFNKPEDGMNIYKIAYRNHGIVI DPQNRIIATPSELEYSGKFAIEDEISFNELPENYQNRLVLRILRDNGISDHALSRTLQKYRKPKPFGDFEVIPEIRSS VIKHGGDFYLVLHLSHQIRSKKTLWELVGRNKDALRDFLKEHRGTILLRDIASEHKVVYKPIFKRYNGDPDLIED NSNDVEHWYDYHLERYWNTPELKKEFYKKFGPVDLNQPIILAKPLRQHNRGDLVHLLPQFVVPVYNAEQLNDI LASEILEYLKLTSNQRISLLSRLINDIKTNTNIIVSSLTELEANTFDVDLNDMLQVRNADNVKVTLSELEISKTRLFTW MKSRKYPVILPYDIPQKLKKIEKIPVFIIVDSALSRDIQTFAKDEFRYLISSLQKSLSNWVDFPILDIRDKYIFTIDLTS DKDIVNLSIKLVNLMKNAELGLALIATRTKLPNETFDEVKKRLFSVNIISQVVNEATLYKRDKYNESRLNLYVQH NLLFQILSKLGIKYYVLRHKFSYDYIVGIDVTPMKLSHGYIGGSAVMFDSQGYIRKIIPVEIGEQMGESIDMKEFFK DMVVQFGKFGIDLEGKSILILRDGKITKDEEEGLAYISKVFGIKITTFNIVKRHLLRIFANRKLYLRLANSVYLLPH RIKQSVGTPVPLKLSEKRLILDGTITSQEITYNDIFEILLLSELNYGSISADMKLPAPVHYAHKFVRALRKGWRIRE ELLAEGFLYFV;

TeAgo(Thermococcus eurythermalis):MNIDEYQTNMYKIKSSIVKEAFSDLVSVEILLGQKLNHREIYRIVQGK FGGLVYKHDEMLGKVVAVIKEEYISELENEPEIQVLSIQAFDVSSLDKNKREKLLLNILKKKGHLFQILRHKQVIG KIENRTIRRTFRVSIESEGKEYYIVVLPRHEIIEDSTIMDLLIKGELTIEDLKINLIEKGTWKITSFRKDIDVSPNAVE EIILKVEDPSRYNAELKRINEYFITRTSLEPIDDSKYPDKYNMILITKGKRYSYHPSRAMLIRPVEGELQKKIHHSG EFLKALNIAAEYIKDIIETSKRATFEGVQIPSQDIYYKATFLENGRIIRKKIAPYYNIKNTFNWLFKNEPFEKTYSLI VPTKTPKFIKDKKIAIYLLYPKEFSKERTTLVSDVKSALDRVSEYFAYLRTISMTSSLSLPVEITTPLIAVDYTNLAQ RLTKIFEKYENYDYHLAITFVPSMSREQFDRIKKFFFERGIIHKAINIDNLNSKFGKNKQRIIESVILQALYAFGIYF YSLDNLPYDIIIGIDVTREKDKNGKYYGISGAAVVQNKNGEIIKIVPITQPQSSSETVDVEKIFESLQPELDQIVETKS NVDILILRDGRIPSREIEQLKRLSLRRPYTFTLVGIIKRPLVRFFKGTDRHLFGPKPNYYFRIGDTYYLTSHFLEHYL KVPLKLERKYVISRGKLATSPLNHEDILAITKLTKLNYSQPKNPDRMKLPAPVHLSHRLINYERRGLRFARPEFLQ EGALYFL;

DeAgo(Domibacillus enclensis):MEPYITEATAIGLASDIHLHVYEFPVDNPLKKYEGVSDICREWKRANGYM AVAYNQSTIATLEPVVNYAGFEPLSYQEKPIDPDNPFERSLLERLLKEGLLTAGQQKLKLKRVGADLQEWEPKRV GRILIYPALSFHVNVLNNRVHIGFAMTHKFEYEVTLQQMLEQGEVVEEGLKVVHSDVWNNYTYEVEQIAPYSVM DMCPKLKKPIHQYYVDKGNQKMADTLHENVKVIYAKPLHGDSLSYAASVLKPLCSFETMKPFEAKKIMDVLKLK PDERMRKQLEQAKKLLSVFSYLQFEKRPFLLQANQYELMTLSEPAVFTNKRFNKPIYGLKNGPLFKGGTVTLSIFF DEAIESSLGLSKKLVFQFVKVLQKIAEQNGVIMKISHETKHIKGKLNESFFQHFSWEIRELENVFTDTTVLALMTEE HLTKLPNKLYNEFKRQFGGKWDISSQIITEKVLKTFQYALTRHQLTDFNVNDEKECERVADIVKNDSLSYPVFNIL LGIYVKSGMQPWVLAERAHSDCFIGLDVSHEDGKSAAGIMNVIGSNGHLIKQSALNGVLAGEKIDEPTLNEIITEV LYSYQKQFGHFPKHVTIHRDGKWRESSELVGRLFKDRNVAYDIVEVIKKPNRRMAFYNNETGKFETKQGVCYV RNQEAFLCSTNPRETIGMAQPVKIVQLTNTLPFKQIIQDCYDLSFMHIHAVNKMRLPATIHYADLSSTAYQRGQVA PRTTNGTHLPFV;

MhAgo(Marinitoga hydrogenitolerans):MYLNLYEIKIPYRVKRLYYFNKENDPKEFARNLSRVNNIRFNDSKD LVWLEIPDIDFKITPQQAEKYKIEKNEIIGEKEDSDLFVKTIYRYIKKKFIDNNFYYKRGNNYISINDKFPLDSNTNV NAHLTYKIKLYKINERYYISVLPKFTFLSDKPALESPIKSTYLFNIKSGKTFPYISGLNGVLKIDLGENGIKEVLFPEN YYFNFTSKEAEKFGFSKEIHNIYKEKIFSGYKKIKQSLYFLEDIININNYNLTMDKKIYVNIEYEFKKGISRNIKDVF KYSFYKNDQKIKIAFFFSSKKQIYEIQRSLKMLFQNKNSIFYQTIYEMGFSKVIFLREPKTNSSAFMYNPETFEISNK DFFENLEGNIMAIIILDKFLGNIDSLIQKFPENLILQPILKEKLEKIQPYIIKSYVYKMGNFIPECQPYVIRNLKDKNK TLYIGIDLSHDNYLKKSNLAISAVNNFGDIIYLNKYKNLELNEKMNLDIVEKEYIQILNEYYERNKNYPENIIVLRD GRYLEDIEIIKNILNIENIKYSLIEVNKSVNINSCEDLKEWIIKLSDNNFIYYPKTYFNQKGVEIKIIENNTDYNNEKIL EQVYSLTRVVHPTPYVNYRLPYPLQVVNKVALTELEWKLYIPYMK。

1.2 方法

1.2.1 新型pAgos的篩選

分別使用PfAgo(NCBI 序列號:WP_011011654.1)、MpAgo(NCBI 序列號:WP_014295921.1)或KmAgo(NCBI序列號:WP_010289662.1)的氨基酸序列在NCBI中進行序列比對。

1.2.2 系統發育樹構建

使用MEGA7.0軟件比對和分析了4個候選蛋白以及已報道的活性pAgos的氨基酸序列,并以此構建了系統發育樹,其中序列比對采取MUSCLE算法,進化樹構建則選擇Neighbor-Joining方法。

1.2.3 pAgos表達載體的構建

以大腸桿菌為表達系統,對候選pAgos的基因進行密碼子優化。蛋白純化采取親和層析,因此在目的蛋白的N 端添加6 個組氨酸,委托金斯瑞公司合成設計好的基因。表達載體選擇pET28a,基因插入位點為NcoI 和EcoRI。4 個pAgos 表達質粒分別命名為pET28a-TtrAgo、pET28a-TeAgo、pET28a-MhAgo、pET28a-DeAgo。

1.2.4 質粒的轉化

從-80 ℃冰箱中取出4 支大腸桿菌BL21(DE3)感受態細胞,將其放置于冰上5 min;分別加入100 ng 的pAgos質粒,用槍頭輕輕攪動后放置于冰上30 min;將細胞轉移到42 ℃水浴鍋中進行90 s熱擊;將細胞轉移到冰上,靜置3 min后加入900 μL新鮮的LB培養基,轉移至37 ℃、220 r/min 搖床復蘇1 h;取100 μL復蘇后的細胞,涂布在含有50 ng/μL卡那霉素的LB固體平板上,在37 ℃下倒置培養12~16 h。轉化后的菌株分別命名為BL21(DE3)/pET28a-TtrAgo、BL21(DE3)/pET28a-TeAgo、BL21(DE3)/pET28a-MhAgo、BL21(DE3)/pET28a-DeAgo。

1.2.5 pAgos的表達

使用牙簽挑取上一步質粒轉化所得的單菌落,放入5 mL LB液體培養基中,37 ℃、220 r/min培養12 h;取2 mL 種子液,接種于200 mL TB 液體培養基中,37 ℃、220 r/min 培養至OD600為2.0 ~ 3.0;加入終濃度為0.1 mmol/L 的IPTG 溶液,25 ℃、220 r/min 培養12 h;將菌液轉移至50 mL 離心管中,5000 r/min 條件下離心10 min,倒掉上清液,收集的菌體可用于后續純化或保存于-80 ℃冰箱。

1.2.6 SDS-PAGE驗證pAgos的表達

取1 mL發酵菌液,12 000 r/min條件下離心1 min,倒掉上清液;加入1 mL去離子水重懸菌體,12 000 r/min離心1 min,倒掉上清液;加入適量體積的破胞緩沖液,調整菌液的OD600約為5;取0.5 mL上一步驟的菌液放入2 mL EP管中,冰浴條件下進行超聲破胞(3 s工作,7 s間隙,20次循環,工作功率為250 W);4 ℃、12 000 r/min離心10 min,取15 μL上清液與5 μL 4 × loading buffer混合,作為可溶表達樣本;在沉淀中加入1 mL去離子水清洗,12 000 r/min離心10 min,倒掉上清液;加入0.5 mL 8 mol/L尿素溶液重懸菌體,取15 μL與5 μL 4×loading buffer混合,作為包涵體樣本;將可溶表達和包涵體樣本在沸水中煮5 min后,取10 μL樣品進行電泳(120 V、90 min);將凝膠放入染色液中,在水平旋轉振蕩儀中染色30 min;倒掉染色液,加入脫色液振蕩,至脫色完全;加入清水,振蕩30 min后記錄結果。

1.2.7 pAgos的純化

取出發酵后的菌體,加入適量體積的破胞緩沖液,調整菌液的OD600約為10;用高壓勻漿機進行破胞,壓力設為60 ~ 70 MPa,進行3個循環的破碎;將破碎后的混合液在4 ℃、10 000g條件下離心30 min,上清液使用0.22 μm的濾膜進行超濾;往鎳離子層析柱中加入3倍柱體積的破胞緩沖液;然后加入上一步得到的破胞液;再用破胞緩沖液進行清洗,直到280 nm的吸收峰穩定;加入洗脫緩沖液洗脫目標蛋白。

為提高目的蛋白濃度以及更換為蛋白保存緩沖液,使用孔徑為30 kDa的超濾管對洗脫樣本進行超濾,方法為4 ℃、5 000 r/min離心30 min,棄下層液體后加入適量蛋白保存緩沖液,重復上述步驟,直至咪唑濃度低于0.1 mmol/L。使用Bradford 試劑盒對濃縮后的蛋白樣品進行定量,再加入加入等體積的甘油、1 mmol/L二硫糠醇(DTT)、0.1 mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA),混勻后分裝,置于-80℃保存。

1.2.8 pAgos的可編碼核酸酶活性測試

反應體系如下:10 mmol/L Tris-HCl(pH7.5),0.2 mol/L NaCl,5 mmol/L MnCl2,0.5 μmol/L pAgos,0.5 μmol/L向導核酸,0.5 μmol/L靶標核酸,加入去離子水補充至總體積20 μL。首先將除了靶標核酸以外的組分混勻,在50 ℃條件下孵育10 min;加入靶標核酸后,將各個pAgos 反應液分別置于相應的溫度下反應1 h,其中TtrAgo、TeAgo、MhAgo和DeAgo的溫度分別為90、90、60和50 ℃;反應結束后加入等體積的2× SSCP去離子甲酰胺凝膠上樣緩沖液,95 ℃變性5 min;取10 μL樣本進行尿素-PAGE,在1 × TBE緩沖液、150 V條件下電泳1 h;將凝膠轉移至藍光切膠儀觀察結果。

2 結果與討論

2.1 pAgos的篩選與序列分析

NCBI的比對結果顯示TtrAgo(NCBI序列號:WP_055429304.1)和TeAgo(NCBI序列號:WP_050002102.1)與PfAgo 的同源性分別為54.46%和33.02%,MhAgo(NCBI 序列號:WP_072865986.1)與MpAgo 的同源性為65.41%,DeAgo(NCBI 序列號:WP_052698403.1)與KmAgo 的同源性為49.8%。由于經文獻報道的活性Agos在催化四聯體(DEDX,X可以為D、H或N)位置高度保守,因此本研究分析了4個候選蛋白和已報道的活性pAgos的氨基酸序列,并以此構建了系統發育樹。結果顯示四個候選pAgos均具有催化四聯體(圖1A),分別為TtrAgo(D538、E576、D608、H725)、TeAgo(D529、E570、D602、H728)、MhAgo(D445、E481、D515、N623)及DeAgo(D529、E564、D598、D715)。在系統發育樹中,各個候選蛋白與對應的參考蛋白均處于相鄰分支(圖1B),表明其親緣關系較近。

圖1 候選pAgos的序列分析Figure 1 The sequence analysis of pAgos (A: Results of sequence alignments; B: The phylogenetic tree)

2.2 pAgos在大腸桿菌系統中的可溶表達

為了分析pAgos 的表達對宿主細胞生長速率的影響,本研究記錄了各個菌株的生長曲線(圖2)。與對照組(含有pET28a空質粒)相比,TtrAgo、TeAgo和MhAgo的表達對細胞的生長無明顯影響,而含有DeAgo 質粒的菌株最終的OD600僅為6 ~ 7 左右,我們推測這可能是由于表達的DeAgo 在大腸桿菌胞內環境下也具有核酸酶活性,因此對細胞產生了一定毒性所導致的。而TtrAgo、TeAgo 和MhAgo 的工作溫度較高,在胞內的核酸酶活性不明顯,因此對細胞的生長影響不大。

圖2 生長曲線Figure 2 The growth curves

對表達了pAgos蛋白的菌液進行SDS-PAGE驗證,結果顯示TtrAgo(88.6 kDa)、TeAgo(89.3 kDa)、MhAgo(77.9 kDa)以及DeAgo(86 kDa)在對應的理論分子量位置均有明顯的可溶表達(圖3)。其中TtrAgo和DeAgo的可溶部分含量與包涵體部分相當,而TeAgo和MhAgo則主要以包涵體形式存在,這可能與pAgos的密碼子、氨基酸序列以及蛋白的結構與功能有關。

圖3 候選pAgos的表達結果Figure 3 The expression of pAgos

2.3 pAgos的純化

對親和層析后的洗脫樣本進行SDS-PAGE分析,以確定是否含有目標蛋白以及目標蛋白純度。結果顯示所有候選蛋白均成功純化(圖4)。其中TeAgo的回收率低于其余3個pAgos,主要原因是其組氨酸標簽與鎳柱的結合強度較低,這可能是由于TeAgo的折疊導致組氨酸標簽未暴露在蛋白表面導致的??偟膩碚f,利用大腸桿菌表達系統及親和層析可有效獲得高純度的pAgos蛋白。

圖4 候選pAgos的純化結果Figure 4 Purification of pAgos

2.4 候選pAgos的可編碼核酸酶活性

本研究測試了4 個pAgos 在4 種向導核酸,即5’末端磷酸基團或羥基修飾的ssDNA 或RNA 介導下,對DNA或RNA靶標的切割效率。

當以DNA為靶標核酸時,4個pAgos均具有可編碼核酸酶活性(圖5)。其中TeAgo和TtrAgo可在DNA介導下高效切割DNA底物,且5’末端羥基或磷酸基團修飾的向導DNA對應的切割產物大小不一致,表明切割位點不同;MhAgo可在4種向導核酸作用下切割DNA,但效率均不高;DeAgo也能以DNA為向導核酸,但催化效率較低。除此之外,MhAgo與DeAgo的切割產物有多個條帶,表明此時存在多個切割位點。

圖5 4個pAgos的可編碼DNA內切酶活性測試結果(AD分別為TtrAgos、TeAgo、MhAgo和DeAgo對DNA的切割結果;N表示未加入向導核酸的陰性對照,PD表示磷酸修飾的DNA,OHD為羥基修飾的DNA,PR為磷酸修飾的RNA,OHR為羥基修飾的RNA,靶標為FAM-tDNA)Figure 5 The programmable DNA endonuclease of four pAgos (A-D: The results of TtrAgos, TeAgo, MhAgo and DeAgo, respectively; N represented negative control, PD represented P-gDNA, OHD represented OH-gDNA, PR represented P-gRNA, OHR represented OH-gRNA, FAM-tDNA was used as target)

當以RNA為靶標核酸時,4個pAgos也展現出可編碼的RNA切割活性(圖6)。其中TeAgo和TtrAgo的活性最佳,在DNA向導的作用下可將RNA底物切割完全,不過此時的切割位點也受向導5末端的修飾基團影響;MhAgo 的結果與DNA靶標的類似,雖然在向導核酸的類型上具有全能性,但催化效率均不佳;DeAgo 則僅能使用羥基修飾的DNA作為向導,但活性較弱。

圖6 4個pAgos的可編碼DNA內切酶活性測試結果(AD:分別為TtrAgos、TeAgo、MhAgo和DeAgo對DNA的切割結果;N表示未加入向導核酸的陰性對照,PD表示磷酸修飾的DNA,OHD為羥基修飾的DNA,PR為磷酸修飾的RNA,OHR為羥基修飾的RNA,靶標為FAM-tDNA)Figure 6 The programmable RNA endonuclease of four pAgos (A-D: The results of TtrAgos, TeAgo, MhAgo and DeAgo, respectively; N represented negative control, PD represented P-gDNA, OHD represented OH-gDNA, PR represented P-gRNA, OHR represented OH-gRNA, FAM-tRNA was used as target)

3 結語

本研究首先通過序列比對,獲得了與靶序列具有高同源性的候選pAgos氨基酸序列;其次利用大腸桿菌系統實現了候選pAgos的可溶表達,并采取親和層析對目的蛋白進行純化;最后建立了可編碼核酸切割活性的測定方法,并以此測試了TtrAgo、TeAgo、MhAgo以及DeAgo的核酸酶活性。本研究不僅深化了對Ago的理解,且對于后繼Ago核酸酶的研究工作也具有借鑒和參考價值。

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