廣藿香60Co-γ射線輻射誘變植株的篩選及評價

巫鍇麗 劉鍵鍾 李成梅 曾建榮 龐玉新 嚴寒靜

摘??要：為應對廣藿香藥材需求量急速增加、無突出優點的品種且品種單一的情況，解決廣藿香道地藥材缺失及種質退化、種質來源混亂、易遭受病害蟲害等問題，本研究通過輻照誘變育種，設置梯度劑量的60Co-γ射線，對愈傷組織、叢生芽、生根苗3種不同生長階段的廣藿香進行輻照處理，觀測再生植株外觀形態，篩選出變異植株，測量其農藝性狀和生理生化指標，采用氣相色譜-質譜聯用技術（GC-MS）測定其主要揮發性成分廣藿香酮及百秋李醇含量。結果表明：愈傷組織和叢生芽對60Co-γ射線較為敏感，死亡率較高，生根苗對60Co-γ射線較為耐受，死亡率較低，最佳誘變育種的方式是采用100?Gy?60Co-γ射線輻照處理生根苗，其誘變率高達10%。本研究最終獲得29株廣藿香變異植株，分別為三葉輪生、異型葉、深裂葉、狹葉、卷葉、下卷葉和紫色葉7種形態類型植株，通過比較分析滲透調節物質（可溶性糖、可溶性蛋白和游離脯氨酸）、抗氧化物質（丙二醛、過氧化物酶、過氧化氫酶）、廣藿香酮和百秋李醇含量，最終篩選得到15株具有潛力植株，分別為：抗逆且高有效成分植株SY7和ZY1；對環境敏感且高有效成分植株SY15、SY18和XY1；抗逆植株SY2、SY6、SY19、YY2、YY9和XJY1；高有效成分植株SY10和SY17；“酮型”廣藿香植株SY3和JY1。其中SY7和ZY1為雙重優良特性新種質，2株“酮型”廣藿香植株對于解決道地藥材缺失及其種質退化等問題具有應用價值。本研究采用60Co-γ射線輻照誘變方法選育的廣藿香變異植株，具有較強抗逆性、高有效成分等優點，為廣藿香誘變育種以及新品種選育提供成熟方法和潛在種質。

關鍵詞：廣藿香；60Co-γ射線；生理生化指標；GC-MS；百秋李醇；廣藿香酮中圖分類號：S567.239??????文獻標識碼：A

Screening?and?Evaluation?of?Induced?Mutation?by?60Co-γ?Radiation?of?Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.

WU?Kaili1，?LIU?Jianzhong2，?LI?Chengmei1，?ZENG?Jianrong3，?PANG?Yuxin4*，?YAN?Hanjing1*

1.?School?of?Traditional?Chinese?Medicine，?Guangdong?Pharmaceutical?University，?Guangzhou，?Guangdong，?510006，?China;?2.?Baoan?Peoples?Hospital，?Shenzhen，?Guangdong?518101，?China;?3.?Guangdong?Chaozhou?Health?Vocational?College，?Chaozhou，?Guangdong?515632，?China;?4.?School?of?Pharmacy，?Guizhou?University?of?Traditional?Chinese?Medicine，?Guiyang，?Guizhou?550025，?China

Abstract：?The?study?was?aimed?to?cope?with?the?rapid?increase?in?demand?for?patchouli?[Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.]?and?to?solve?the?problems?of?lack?of?patchouli?medicinal?materials，?germplasm?degradation，?confusion?of?germplasm?sources，?and?vulnerability?to?diseases?and?pests.?Callus，?cluster?buds?and?rooting?seedling?of?patchouli?were?irradiated?with?a?gradient?dose?of?60Co-γ?rays.?The?appearance?and?morphology?of?regenerated?plants?were?observed，?the?mutated?plants?were?screened，?the?agronomic?traits?and?physiological?and?biochemical?indicators?were?measured，?and?the?content?of?pogostone?and?patchouli?alcohol，?the?main?volatile?components，?were?determined?by?gas?chromatography-mass?spectrometry?（GC-MS）.?The?results?showed?that?calluses?and?cluster?buds?were?more?sensitive?to?60Co-γ?rays?and?had?higher?mortality?rate，?while?rooting?seedlings?were?more?tolerant?to?60Co-γ?rays?and?had?lower?mortality.?The?best?way?to?breed?mutagenesis?is?60Co-γ?treated?rooting?seedlings?with?irradiation?doses?of?100?Gy?with?a?mutagenesis?rate?of?up?to?10%.?In?this?experiment，?29?patchouli?variant?plants?were?obtained，?which?were?divided?into?seven?morphological?types，?namely?three-leaf?whorls，?heteromorphic?leaves，?deep-split?leaves，?narrow?leaves，?coiled?leaves，?undercoiled?leaves?and?purple?leaves.?The?contents?of?osmotic?conditioning?substances?[soluble?sugar，?soluble?protein?and?free?proline?（Pro）]，?antioxidant?substances?[malondialdehyde?（MDA），?peroxidase?（POD），?catalase?（CAT）]，?pogostone?and?patchouli?alcohol?were?compared?and?analyzed.?According?to?the?analysis?results?of?the?above?determination?indicators，?15?potential?plants?were?finally?screened，?namely：?stress-resistant?plants?with?high?effective?components?SY7?and?ZY1;?environmentally?sensitive?plants?with?high?effective?components?SY15，?SY18?and?XY1;?stress-resistant?plants?SY2，?SY6，?SY19，?YY2，?YY9?and?XJY1;?high?active?ingredient?plants?SY10?and?SY17;?“pogostone-type”?patchouli?plants?SY3?and?JY1.?Among?them，?SY7?and?ZY1?are?new?germplasms?with?double?excellent?characteristics，?and?the?two?“pogostone-type”?patchouli?plants?have?application?value?for?solving?the?problems?of?the?lack?of?authentic?medicinal?materials?and?the?degradation?of?germplasm.?In?this?study，?patchouli?variant?plants?bred?by?the?60Co-γ?ray?irradiation?mutagenesis?method?have?the?advantages?of?strong?stress?resistance?and?high?active?ingredients，?which?would?provide?mature?methods?and?potential?germplasm?for?patchouli?mutagenesis?breeding?and?new?variety?breeding.

Keywords：?Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.;?60Co-γ?ray;?physiological?and?biochemical?indicators;?GC-MS;?patchouli?alcohol;?pogostone

DOI：?10.3969/j.issn.1000-2561.2024.02.007

廣藿香[Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.]為唇形科刺蕊草屬植物，以干燥地上部分入藥，具有開胃止嘔、芳香化濕、發表解暑等功效[1]，是藿香正氣水、抗病毒口服液等中成藥的主要原料之一，在醫藥、化妝品等領域有廣泛應用[2]。廣藿香在防治新型冠狀病毒感染中起到了重要的作用，為外用預防方最常用藥，內服預防方常用藥[3]，并且為《新型冠狀病毒肺炎診療方案（試行第六版）》中推薦使用中藥治療復方的高頻使用藥[4]。廣藿香具有較好的抗病毒抗菌能力，在治療COVID-19及抗菌方面有很好的發展前景[5-7]。廣藿香原產東南亞國家，最早自梁代前傳入中國[8]，在我國有悠久的栽培歷史。廣藿香罕見開花，即使偶有開花，也無結實，所以各地栽種的廣藿香主要以扦插的方式繁殖[9]，因此難以采用傳統雜交育種方式獲得優良品種。廣州石牌一帶盛產廣藿香，由于其質量優、療效好，被稱為“牌香”道地藥材[10]，羅集鵬等[11]根據廣藿香揮發油成分中的百秋里醇與廣藿香酮含量的不同，將不同產地的廣藿香分為2個化學型，石牌及肇慶高要產的為“廣藿香酮型”，廣東吳川、遂溪、雷州和海南萬寧產的為“廣藿香醇型”。

目前廣藿香道地藥材缺失，種源混亂，無抗逆性強、產量高、有效成分含量高等突出優點、性狀穩定的品種，優良品質的中藥材種子種苗是保障中藥材品質的必要條件，是中醫藥事業發展的物質基礎，因此選育廣藿香優良品種迫在眉睫。輻照誘變技術具有方法簡便、育種周期短、效果好等特點[12]，本研究以廣藿香為試材，采用60Co-γ射線為輻射源對不同生長階段的廣藿香進行誘變，確定60Co-γ射線的誘變條件，通過植株外觀形態、農藝性狀初步篩選出變異植株，以生化指標及主要揮發性成分含量對廣藿香變異植株進行品質評價，以期獲得性狀優良的突變植株并為廣藿香誘變育種提供參考，后續可對廣藿香變異植株的遺傳穩定性進一步研究。

1??材料與方法

1.1??材料

1.1.1??植物材料??采用廣藿香無菌愈傷組織、叢生芽和生根苗為材料，經廣東藥科大學中藥學院嚴寒靜教授鑒定為廣藿香[Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.]，為醇型廣藿香。

1.1.2??主要試劑與儀器??主要試劑：脯氨酸（20200906）、蒽酮（20201114）均購自北京博奧拓達科技有限公司；茚三酮（S19209）購自上海源葉生物科技有限公司；考馬斯亮藍法試劑盒（A045-2-1）、丙二醛（MDA）試劑盒（A003-1-2）、過氧化氫酶（CAT）試劑盒（A064-1-1）、過氧化物酶（POD）試劑盒（A084-3-1）均購自南京建成生物工程研究所；十八烷（A13111044）購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司；二氯甲烷（分析純）、正己烷（色譜純）均購自天津市科密歐化學試劑有限公司；百秋里醇（質量分數>98%，B-037-180122）、廣藿香酮（質量分數>98.5%，G-055-180710）對照品均購自成都瑞芬思生物科技有限公司。

儀器：1530酶標儀（賽默飛世爾科技公司）；3K15冷凍離心機（SIGMA公司）；7890B-7000D型氣相色譜-質譜聯用儀（Agilent?Technologies?Inc公司），RE-52A型旋轉蒸發儀（上海亞榮生化儀器廠）。

1.2??方法

1.2.1??60Co-γ射線輻照處理及變異植株的篩選??以廣藿香愈傷組織、叢生芽及生根苗為60Co-γ射線輻照材料，各組實驗個體約100個培養瓶，以未輻照處理的材料為對照（CK）。設計6組梯度輻照劑量組，輻照劑量分別為10、20、40、60、80、100?Gy，劑量率為0.82?Gy/min，60Co-γ射線輻照處理后的愈傷組織團塊轉移至叢生芽培養基中進行分化培養，輻照處理后的叢芽及CK接種至生根培養基中培育3個月，經水培煉苗，營養土育苗。根據分枝、葉序、葉型及葉色等形態差異，遵循分枝數≥2、三葉輪生葉序、葉型及葉色較大差異者的原則，篩選變異植株，于4月將變異植株定植于花盆內，相同管理措施，11月采收。

1.2.2??農藝性狀觀測??在廣藿香生長茂盛期，觀測廣藿香株高、地徑、分枝數、葉型指數（葉長/葉寬）、葉色、葉型、葉序等農藝性狀指標。

1.2.3??生理生化指標測定??（1）采樣。取廣藿香主枝第2～3對新鮮成熟葉片若干，液氮速凍，置于–80?℃冰箱保存。

（2）指標測定。參考張志良等[13]的方法測定可溶性糖（soluble?sugar，?SS）含量和脯氨酸（proline，?Pro）含量?？扇苄缘鞍祝╯oluble?protein，?SP）含量、MDA含量、CAT活性和POD活性參照考馬斯亮蘭法試劑盒（A045-2-1）、MDA試劑盒（A003-?1-2）、CAT試劑盒（A064-1-1）、POD試劑盒（A084-3-1）說明書進行測定。

1.2.4??變異植株主要揮發性成分測定??（1）溶液的配制。內標溶液：1?mg/mL正十八烷內標溶液；對照品溶液：2?mg/mL百秋李醇及1?mg/mL廣藿香酮對照品溶液。供試品的制備：稱取0.3?g廣藿

香變異植株地上部分干燥粗粉，置于具塞錐形瓶中，加入二氯甲烷30?mL，超聲處理3次，每次20?min，過濾，合并濾液，旋轉蒸發儀回收溶劑，稠膏加正己烷溶解后，全量轉移至5?mL容量瓶中，定容，測定時按比例稀釋，加入內標溶液，用0.45?μm微孔濾膜過濾。

（2）氣相色譜-質譜分析條件。參考歐曉華等[14]的方法進行氣相色譜-質譜分析。氣相條件：色譜柱為DB-5?MS毛細管柱（30?m×0.25?mm，?0.25?μm）；初始溫度為120?℃，保持2?min；以2?℃/min速率升溫至160?℃，保持2?min；以10?℃/min速率升溫至180?℃，保持2?min；以30?℃/min速率升溫至280?℃，保持0?min；進樣量為1?μL，分流比為30∶1，載氣為高純氦氣，柱箱溫度為120?℃，進樣口溫度為250?℃，接口溫度為250?℃。質譜條件：EI離子源，離子源溫度為200?℃，電離能量為70?eV，掃描質量范圍m/z為50～500，溶劑延遲2?min。標準庫NIST14.lib。百秋李醇含量的線性范圍為0.01～0.50?mg/mL，回歸方程為y=80.5061x+?0.0197（R?=0.9999），樣品精密度r=0.53%，加樣回收率為97.02%，重復性r=4.56%；廣藿香酮含量的線性范圍為0.01～0.10?mg/mL，回歸方程為y=?11.892x–0.1135（R?=0.9993），樣品精密度r=0.99%，加樣回收率為102.9%，重復性r=4.97%，結果重現性好，準確度高（圖1）。

1.3??數據處理

采用Excel?2016軟件對試驗數據進行統計并制圖，采用SPSS?24.0軟件進行差異顯著性分析。

2??結果與分析

2.1??60Co-γ射線輻照處理及廣藿香變異植株的篩選

由表1可知，不同材料對輻照的敏感程度不同，實際輻照劑量為58～64?Gy時，愈傷組織最敏感，死亡率為8.65%，叢生芽次之，生根苗死亡率為0；實際輻照劑量為77～116?Gy時，叢生芽死亡率最高，愈傷組織次之，生根苗耐受性較強，死亡率最低。結果表明：廣藿香3種輻照材料的死亡率均隨輻照劑量的升高而升高，愈傷組織的半致死輻照劑量可能在98～105?Gy之間，叢生芽的半致死輻照劑量約為70?Gy（圖2），較高輻照強度對愈傷組織損傷較大，會導致其大量停止生長并死亡；低輻照劑量時，愈傷組織對輻照效應更為敏感；高輻照劑量時，叢生芽對輻照效應更為敏感；總體表現為生根苗對60Co-γ射線較為耐受。

根據變異植株篩選標準，在1299株廣藿香輻照處理再生苗中篩選獲得29株廣藿香變異植株，各組篩選得到的變異植株數及誘變率見表2。結果表明，廣藿香3種輻照材料的誘變率均隨輻照劑量的升高而升高，當輻照劑量小于77?Gy時，叢生芽和愈傷組織的誘變率均為0，而生根苗在任一輻照劑量中均篩選出變異植株，在輻照劑量為100?Gy時誘變率最高，為10%。

2.2??廣藿香變異植株農藝性狀指標及分類

根據實驗組和變異植株葉的生長情況，制定變異植株的分類標準：葉序=3為三葉輪生植株，葉序=2為正常葉序；葉型指數≤1.00為異型葉，葉型指數≥1.40為狹葉，葉型指數在1.00～1.40之間為正常葉型，葉片卷曲方向向上為卷葉，向下為下卷葉，葉色紫色為紫色葉。

根據以上分類標準將29株變異廣藿香分為7個變異類型（表3）。其中，三葉輪生的變異植株株高、地徑均顯著低于CK，而分支數極顯著高于CK；異型葉和深裂葉的變異植株株高、地徑均極顯著低于CK，異型葉植株的分枝數極顯著高于CK；深裂葉植株的分支數顯著高于CK，其他變異植株株高、地徑均低于CK，而分支數高于CK，說明60Co-γ射線對廣藿香株高、地徑及分枝數有顯著影響，抑制廣藿香的生長高度及莖粗，但會使廣藿香分枝數變多。

2.3??廣藿香變異植株生理生化特性

SS、SP和Pro為植物體內有機滲透調節物質，植物通過積累或分解滲透調節物質來維持細胞內外滲透壓的平衡，從而應對干旱、鹽堿等不利生境。在不利生境的刺激下，會引起植物體內活性氧的積累，過多的活性氧會破壞細胞膜的完整性，導致細胞死亡，MDA含量是細胞膜受到傷害程度的重要指標[15]。植物體內具有抗氧化酶和還原性物質等保護性物質，這些物質組成了復雜的活性氧清除系統，植物體內的活性氧不斷產生，同時也不斷被清除，形成了動態平衡[16]。POD和CAT為抗氧化酶，可以根據抗氧化酶活性來體現植株清除活性氧的能力。

29株廣藿香變異植株及CK植株中的滲透調節物質、MDA和抗氧化酶活性見表4。有3株變異植株的SS含量與CK呈極顯著差異，其中SY6的SS含量最高，為80.9?mg/g；有6株變異植株的SS含量與CK呈顯著差異，其中YY8的SS含量最低，為38.0?mg/g。有9株變異植株的SP含量與CK呈極顯著差異，其中JY1的SP含量最高，為7.91?mg/g，SY13的SP含量最低，為0.69?mg/g；有5株變異植株的可溶性蛋白含量與CK呈顯著差異。SY7和SL3的Pro含量分別比CK高89.79%和101.58%，均呈極顯著差異；有4株廣藿香變異植株的Pro含量顯著低于CK，其余植株與CK無顯著差異。有10株變異植株的MDA含量與CK呈極顯著差異，其中SY11的MDA含量最高，為30.68?nmol/mg，SY19的MDA含量最低，為1.97?nmol/mg；有6株變異植株的MDA含量與CK呈顯著差異。SY13的CAT和POD活性最高，分別為163.59?μmol/mg和265.33?μmol/g，SY11、SY13、SY14、SY15、SY16、SY18和XY1的MDA含量、CAT活性和POD活性均顯著高于CK。

綜上，變異植株SY6、YY9和XJY1的SS含量顯著增加，SY7的SS和Pro含量顯著增加。SY2、SY19和YY2的SP含量顯著增加，而MDA含量顯著降低，說明植株SY2、SY19和YY2體內的活性氧積累較少。ZY1的SP含量顯著增加，植株體內含較高有機滲透調節物質可以很好地維持滲透勢，上述植株可能具有較強的抗逆性。SY13、SY16和SY18的Pro和SP含量顯著降低，同時其MDA含量、CAT和POD活性顯著增加，

SY13、SY16和SY18在當前栽培環境下未合成較多的有機滲透調節物質，使活性氧含量積累，破壞其細胞膜完整性，產生大量MDA，從而使植株需要保持較高的抗氧化酶活性以消除活性氧，以維持植株活性氧的動態平衡，說明其對栽培環境較為敏感。SY11、SY14、SY15和XY1除Pro含量無顯著差異外，其余指標與SY13、SY16、SY18相同，為環境敏感型植株。

2.4??廣藿香變異植株主要揮發性成分測定

廣藿香揮發油中的主要化學成分和主要有效成分為百秋李醇與廣藿香酮[17]。由圖3可知，有8株變異植株的百秋李醇含量極顯著高于CK，其中SY12、SY15、XY1和ZY1的百秋李醇含量約為CK的2倍；有2株變異植株的百秋里醇含量顯著高于CK；有4株變異植株的百秋李醇含量極顯著低于CK；有2株變異植株的百秋李醇含量顯著低于CK。由圖4可知，有13株變異植株的廣藿香酮含量極顯著高于CK，其中SY3的廣藿香酮含量高達3.883%，約為CK的16倍，含量極高；有2株變異植株的廣藿香酮含量顯著高于CK。由圖5可知，SY1、SY12和YY3的百秋李醇含量與廣藿香酮含量的比值均極顯著大于CK，SY14的顯著高于CK；變異植株SY3、YY8、YY10、SL3和JY1的百秋李醇含量與廣藿香酮含量的比值均極顯著小于CK，SY6、SY16、YY2、YY7和XJY1的百秋李醇含量與廣藿香酮含量的比值均顯著小于CK。

CK的百秋李醇含量為0.557%，廣藿香酮含量為0.241%，百秋李醇含量與廣藿香酮含量的比值為2.58，百秋李醇含量相對較高，屬于“醇型”廣藿香。而變異植株中SY3和JY1的醇酮比分別為0.013和0.005，醇酮比值較低，廣藿香酮相對含量更高，可視為“酮型”廣藿香。60Co-γ射線輻照誘變對廣藿香主要有效成份含量影響顯著，變異植株SY7、SY10、SY15、SY17、SY18、XY1和ZY1的百秋李醇和廣藿香酮含量均顯著高于CK。綜上，本研究獲得7株高有效成分含量的廣藿香植株以及2株“酮型”廣藿香。

2.5??廣藿香變異植株的綜合評價

結合以上分析結果，根據廣藿香變異植株的生理生化指標及揮發性成分含量的分析結果得出以下5種類型植株：（1）抗逆且高有效成分植株SY7和ZY1；（2）環境敏感且高有效成分植株SY15、SY18和XY1；（3）抗逆植株SY2、SY6、SY19、YY2、YY9和XJY1；（4）高有效成分植株SY10和SY17；（5）“酮型”廣藿香植株SY3和JY1。

3??討論

3.1??60Co-γ射線對不同生長階段廣藿香的輻照效應

藥用植物輻射誘變育種需要選擇適宜的誘變材料和輻照劑量才能獲得有效的誘變。低劑量輻照處理條件下，可以獲得較多的輻照處理個體但突變頻率低，獲得的變異個體較少。高劑量輻照處理條件下，輻照處理個體的突變頻率高，但死亡率也高，不良突變性狀也會隨之增加。因此輻照誘變育種研究中多采用半數致死劑量作為輻照試驗的最佳劑量[18]。已有研究表明，輻照誘變育種僅依據死亡率來衡量輻照對其的影響是遠遠不夠的，需要綜合考察半致死輻照劑量、外植體能否出芽、再生苗能否成活以及移栽后的生長情況來確定最佳輻照劑量[19]。誘變因子在作用于生長旺盛的器官、分生組織和分化程度小的細胞時，其誘變敏感性更強[20]，針對以往研究中采用廣藿香離體葉片組織等為輻照材料[21-23]，輻照明顯抑制葉片再生，容易出現褐化、死亡，難以生長出健康的再生芽的現象，本研究比較了3種不同生長階段廣藿香離體組織材料（愈傷組織、叢生芽、生根苗）的輻照效果，以最終的誘變率與存活率為評價指標，得出廣藿香的最佳誘變育種方式是以輻照劑量為100?Gy?60Co-γ射線處理生根苗，其誘變率高達10%，此條件下可以獲得數量最多、存活率高的變異植株。

3.2??60Co-γ射線對廣藿香變異植株的影響

植物在不利的生境條件下，次生代謝產物由活性氧的誘導產生的，次生代謝產物含量的增加可提高植物細胞的適應能力[24]。廣藿香酮和百秋李醇均為廣藿香植株體內產生的次生代謝產物，對環境敏感且高有效成分植株雖然抗逆性較弱，但在適宜的生長環境下可以種植獲得高有效成分含量的廣藿香?？鼓媲腋哂行С煞种仓?，具有雙重優良特性，不但抗逆性強，適應各種栽培環境，同時也有比母本更高的有效成分含量的特性，這類型的品種為優良品種。

SY3和JY1兩株“酮型”廣藿香，其母本為“醇型”廣藿香，經誘變出現了化學型的變化，對于獲得高廣藿香酮含量品種具有重要的生產指導意義。由此說明可通過60Co-γ射線輻照誘變育種，獲得與道地藥材品質相近的廣藿香新品種，后續可對變異植株SY3和JY1進行離體快繁，研究其遺傳穩定性并獲得大量子代植株。通過子代植株和“牌香”的揮發性成分、藥理和藥效等進行對比，研究其實用性及可替代性。為解決道地藥材種質退化、抗逆性弱、產量低等問題提供新思路。姚宇等[22]采用ISSR方法對廣藿香誘變體植株進行遺傳多樣性分析，發現60Co-γ射線可使廣藿香發生較大頻率的變異。吳立蓉等[23]對廣藿香輻照誘變的再生植株進行RAPD分析，發現其在表現型及分子水平出現一定的分離。本研究將進一步使用SRAP分析方法對獲得的變異植株進行遺傳多樣性分析，以研究60Co-γ射線對廣藿香變異植株分子水平的影響。

本研究中獲得17株三葉輪生植株，其葉片數量和一級分枝數均比正常植株多1/3，可將三葉輪生植株應用于廣藿香的種植生產中，這意味著可以獲得更高的產量。植物的葉序是由葉片在莖尖分生組織（SAM）中形成時決定的，相關研究表明有規律的葉序類型間的轉變是受多基因控制的[25]，同時也有學者認為某些植物葉序的發生不僅是受1種機制調控，可能同時受2種或多種機制共同影響，葉序形成由基因控制，也受激素的影響。到目前為止，尚無一種完整模型可以明確地解釋葉序的發生機制[26]。后續可以通過對單葉對生和三葉輪生廣藿香植株的SAM全基因組重測序或轉錄組測序分析其差異基因，進而研究植物葉序的發生機制，以期開發成為廣藿香定向育種的分子標記。

參考文獻

• 國家藥典委員會編.?中華人民共和國藥典：?2020年版一部[S].?北京：?中國醫藥科技出版社，?2020：?46.?National?Pharmacopoeia?Commission.?Pharmacopoeia?of?the?Peoples?Republic?of?China：?2020?edition?Part?1[S].?Beijing：?China?Medical?Science?and?Technology?Press，?2020：?46.?（in?Chinese）
• 常怡雪，?甘君妍，?王瑋哲，?寇新宇，?馮志攀，?李普旺，?楊子明，?陳煜.?廣藿香功效及應用進展[J].?熱帶農業科學，?2019，?39（12）：?68-74.CHANG?Y?X，?GAN?J?Y，?WANG?W?Z，?KOU?X?Y，?FENG?Z?P，?LI?P?W，?YANG?Z?M，?CHEN?Y.?The?efficacy?and?application?progress?of?Pogostemon?cablin[J].?Chinese?Journal?of?Tropical?Agriculture，?2019，?39（12）：?68-74.?（in?Chinese）

[3]?凌曉穎，?姜茗宸，?徐秋月，?武祎文，?袁斌.?基于數據挖掘的中醫藥防治新型冠狀病毒肺炎的用藥規律研究[J].?中藥材，?2020，?43（7）：?1761-1766.LING?X?Y，?JIANG?M?C，?XU?Q?Y，?WU?Y?W，?YUAN?B.?Study?on?medication?regularity?of?traditional?Chinese?medicine?in?prevention?and?treatment?of?novel?coronavirus?pneumonia?based?on?data?mining[J].?Journal?of?Chinese?Medicinal?Materials，?2020，?43（7）：?1761-1766.?（in?Chinese）

[4]?邵仲柏，?朱月霞，?劉書豪，?蔣凱俊，?吳琦，?沈金陽，?劉瑋煒.?臨床使用治療新型冠狀病毒肺炎中藥復方中高頻數中藥抗病毒研究概述[J].?中草藥，?2020，?51（5）：?1153-1158.SHAO?Z?B，?ZHU?Y?X，?LIU?S?H，?JIANG?K?J，?WU?Q，?SHEN?J?Y，?LIU?W?W.?A?review?on?clinical?application?of?high?frequency?traditional?Chinese?medicine?in?treatment?of?coronavirus?pneumonia?2019[J].?Chinese?Traditional?and?Herbal?Drugs，?2020，?51（5）：?1153-1158.?（in?Chinese）

[5]?WU?X?L，?JU?D?H，?CHEN?J，?YU?B，?LIU?K?L，?HE?J?X，?DAI?C?Q，?WU?S，?CHANG?Z，?WANG?Y?P，?CHEN?X?Y.?Immunologic?mechanism?of?patchouli?alcohol?anti-H1N1?influenza?virus?may?through?regulation?of?the?RLH?signal?pathway?in?vitro[J].?Current?Microbiology，?2013，?67（4）：?431-436.

[6]?YU?Y?Y，?HE?J?J，?SU?J?Q，?KONG?S?Z，?SU?J?Y，?LI?Y?C，?HUANG?S?H，?LI?C?W，?LAI?X?P，?SU?Z?R.?Synthesis?and?antimicrobial?evaluation?of?pogostone?and?its?analogues[J].?Fitoterapia，?2013，?38：?135-139.

[7]?LIU?F，?CAO?W，?DENG?C，?WU?Z?Q，?ZENG?G?Y，?ZHOU?Y?J.?Polyphenolic?glycosides?isolated?from?Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.?as?novel?influenza?neuraminidase?inhibitors[J].?Chemistry?Central?Journal，?2016，?10（1）：?51.

[8]?吳友根，?郭巧生，?鄭煥強.?廣藿香本草及引種歷史考證的研究[J].?中國中藥雜志，?2007，?32（20）：?2114-2117，?2181.WU?Y?G，?GUO?Q?S，?ZHENG?H?Q.?Textual?research?on?history?of?introduction?and?herbal?medicine?of?Pogostemon?cablin[J].?China?Journal?of?Chinese?Materia?Medica，?2007，?32（20）：?2114-2117，?2181.?（in?Chinese）

[9]?歐陽蒲月，?李亞萍，?莫小路.?廣藿香資源調查、研究進展與發展趨勢[J].?大眾科技，?2019，?21（8）：?55-57.OUYANG?P?Y，?LI?Y?P，?MO?X?L.?Resource?investigation，?research?progress?and?development?trend?of?Pogostemon?cablin[J].?Popular?Science?&?Technology，?2019，?21（8）：?55-57.?（in?Chinese）

[10]?羅集鵬，?馮毅凡，?何冰，?郭曉玲，?陳小夏，?曹暉，?劉玉萍.?廣藿香的道地性研究[J].?中藥材，?2005，?28（12）：?1121-1125.LUO?J?P，?FENG?Y?F，?HE?B，?GUO?X?L，?CHEN?X?X，?CAO?H，?LIU?Y?P.?An?authentic?study?of?Pogostemon?cablin[J].?Journal?of?Chinese?Medicinal?Materials，?2005，?28（12）：?1121-1125.?（in?Chinese）

[11]?羅集鵬，?劉玉萍，?馮毅凡，?郭曉玲，?曹暉.?廣藿香的兩個化學型及產地與采收期對其揮發油成分的影響[J].?藥學學報，?2003，?38（4）：?307-310.?LUO?J?P，?LIU?Y?P，?FENG?Y?F，?GUO?X?L，?CAO?H.?Two?chemotypes?of?Pogostemon?cablin?and?influence?of?region?of?cultivation?and?harvesting?time?on?volatile?oil?composition[J].?Acta?Pharmaceutica?Sinica，?2003，?38（4）：?307-310.?（in?Chinese）

[12]?屠禮剛，?丁建平，?馬忠社，?趙玫，?王禮平，?李四游，?高卿.?荷花輻照育種技術初步研究[J].?現代園藝，?2016（7）：?21-22.TU?L?G，?DING?J?P，?MA?Z?S，?ZHAO?M，?WANG?L?P，?LI?S?Y，?GAO?Q.?Preliminary?study?of?lotus?irradiation?breeding?technology[J].?Contemporary?Horticulture，?2016（7）：?21-22.?（in?Chinese）

[13]?張志良，?翟偉菁.?植物生理學實驗指導[M].?3版.?北京：?高等教育出版社，?2006：?127-130.ZHANG?Z?L，?QU?W?J.?Experimental?guidance?of?plant?physiology[M].?3rd?ed.?Beijing：?Higher?Education?Press，?2006：?127-130.?（in?Chinese）

[14]?歐曉華，?羅可可，?鄧文靜，?張眾生，?劉小華，?嚴寒靜.?廣藿香化學型分型及形成時期研究[J].?中成藥，?2022，?44（4）：?1209-1213.OU?X?H，?LUO?K?K，?DENG?W?J，?ZHANG?Z?S，?LIU?X?H，?YAN?H?J.?Chemotype?classification?and?formation?period?of?Pogostemon?cablin[J].?Chinese?Traditional?Patent?Medicine，?2022，?44（4）：?1209-1213.?（in?Chinese）

[15]?CHEN?Y?E，?MAO?J?J，?SUN?L?Q，?HUANG?B，?DING?C?B，?GU?Y，?LIAO?J?Q，?HU?C，?ZHANG?Z?W，?YUAN?S，?YUAN?M.?Exogenous?melatonin?enhances?salt?stress?tolerance?in?maize?seedlings?by?improving?antioxidant?and?photosynthetic?capacity[J].?Physiologia?Plantarum，?2018，?164（3）：?349-363.

[16]?巖學斌，?袁金海.?鹽脅迫對植物生長的影響[J].?安徽農業科學，?2019，?47（4）：?30-33.YAN?X?B，?YUAN?J?H.?Effects?of?salt?stress?on?plant?growth[J].?Journal?of?Anhui?Agricultural?Sciences，?2019，?47（4）：?30-33.?（in?Chinese）

[17]?張志軍，?張桂芝，?王朋朋.?廣藿香揮發油的紅外光譜鑒定和氣相色譜-質譜分析[J].?中國醫藥科學，?2015，?5（1）：?86-88，?91.ZHANG?Z?J，?ZHANG?G?Z，?WANG?P?P.?Analysis?of?essential?oils?of?Pogostemonis?Herba?by?FTIR?and?GC-MS[J].?China?Medicine?and?Pharmacy，?2015，?5（1）：?86-88，?91.?（in?Chinese）

[18]?劉進平，?鄭成木.?誘變結合植物組織培養在植物育種中的應用（綜述）[J].?上海農業學報，?2004，?20（1）：?19-22.LIU?J?P，?ZHENG?C?M.?Induced?mutation?in?connection?with?in?vitro?culture?for?crop?breening[J].?Acta?Agriculturae?Shangha，?2004，?20（1）：?19-22.?（in?Chinese）

[19]?吳立蓉，?賀紅，?張燕玲，?劉星，?林小樺.?60Co-γ射線輻照對廣藿香離體培養的影響[J].?核農學報，?2008，?22（1）：?14-17.WU?L?R，?HE?H，?ZHANG?Y?L，?LIN?X，?LIN?X?H.?The?effect?of?60Co-γ?irradiation?on?culture?in?vitro?of?Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.[J].?Journal?of?Nuclear?Agricultural?Sciences，?2008，?22（1）：?14-17.?（in?Chinese）

[20]?趙會芳.?辣椒誘變及其誘變機理的研究[D].?楊凌：?西北農林科技大學，?2005.ZHAO?T?F.?Study?on?mutagenic?effects?mechanism?of?the?treatments?with?different?mutagenic?on?the?pepper?（Capsicum?annuum?L.）[D].?Yangling：?Northwest?A＆F?University，?2005.?（in?Chinese）

[21]?賀紅，?許仕仰，?吳立蓉，?張燕玲.?廣藿香輻射誘變篩選抗病突變體的研究[J].?廣州中醫藥大學學報，?2012，?29（2）：?185-189.HE?H，?XU?S?Y，?WU?L?R，?ZHANG?Y?L.?Selection?of?bacterial-wilt-resistance?mutants?of?Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.?by?radiation?mutation[J].?Journal?of?Guangzhou?University?of?Traditional?Chinese?Medicine，?2012，?29（2）：?185-189.?（in?Chinese）

[22]?姚宇，?李娟玲，?李碧英，?羅志平，?李麗輝，?李文革.?廣藿香60Co-γ誘變體植株遺傳多樣性的ISSR分析[J].?熱帶生物學報，?2017，?8（3）：?277-283.YAO?Y，?LI?J?L，?LI?B?Y，?LUO?Z?P，?LI?L?H，?LI?W?G.?ISSR?analysis?of?plant?genetic?diversity?of?60Co-γ?induced?mutants?of?Pogostemon?cablin[J].?Journal?of?Tropical?Biology，?2017，?8（3）：?277-283.?（in?Chinese）

[23]?吳立蓉，?賀紅，?張燕玲，?劉丹，?謝建輝，?柴婷婷.?60Co-γ射線對廣藿香的輻照誘變及再生植株的RAPD分析[J].?激光生物學報，?2010，?19（2）：?174-178.WU?L?R，?HE?H，?ZHANG?Y?L，?LIU?D，?XIE?J?H，?CHAI?T?T.?60Co-γ?ray?radiation?mutation?of?Pogostemon?cablin?（Blanco）?Benth.?and?the?RAPD?analysis?of?the?regenerated?plant[J].?Acta?Laser?Biology?Sinica，?2010，?19（2）：?174-178.?（in?Chinese）

[24]?孟祥才，?李曉穎，?姚杰，?孔玲，?關瑜.?生態脅迫促進道地藥材質量形成機制與質量評價思路[J].?中草藥，?2022，?53（5）：?1587-1594.MENG?X?C，?LI?X?Y，?YAO?J，?KONG?L，?GUAN?Y.?Mechanism?of?ecological?stress?enhancing?quality?of?genuine?medicinal?materials?and?its?quality?evaluation?idea[J].?Chinese?Traditional?and?Herbal?Drugs，?2022，?53（5）：?1587-1594.?（in?Chinese）

[25]?劉天寶.?不同葉序植物內源細胞分裂素和生長素差異分析[D].?合肥：?安徽農業大學，?2010.LIU?T?B.?Variance?analysis?of?endogenous?cytokinin?and?auxin?in?different?phyllotaxis?plants[D].?Hefei：?Anhui?Agricultural?University，?2010.?（in?Chinese）

[26]?談應權，?孔晶晶，?江海洋.?植物葉序發生的分子機制研究進展[J].?安徽農業大學學報，?2020，?47（6）：?1001-1006.TAN?Y?Q，?KONG?J?J，?JIANG?H?Y.?Advances?in?molecular?mechanism?of?phyllotaxis?development?in?plants[J].?Journal?of?Anhui?Agricultural?University，?2020，?47（6）：?1001-1006.?（in?Chinese）