姜 花,沈延梅,馬馴凱
(青海紅十字醫院心內科,青海 西寧 810001)
病毒性心肌炎(viral myocarditis,VMC) 指由病毒感染心臟,引起的心肌實質性或彌漫性病變[1-2],其發病機制還未完全闡明。臨床報道發現,VMC 患兒心臟損傷程度與氧化應激損傷程度呈正相關[3],體內外研究證實柯薩奇病毒B3 (CVB3) 入侵心肌細胞,引起的氧化應激、凋亡激活是造成心肌細胞損傷的關鍵因素之一[4]。沉默信息調節因子2 相關酶1 (Sirt1) 可與叉頭蛋白O3a (FoxO3a) 相互作用,抵抗氧化應激損傷,參與疾病的發生發展過程[5],但Sirt1/FoxO3a 通路在VMC 疾病過程中的作用研究較少。
近年來,中醫藥開始被更多用于病毒性心肌炎的臨床治療,可通過抗病毒、抗炎、抗氧化、調節免疫等機制發揮作用,療效頗為明顯[6-7]。扶正解毒方能夠扶助正氣,清熱解毒,調節患者機體免疫功能,常用于白血病、肝癌、肺癌等腫瘤患者放化療后的輔助治療。有研究表明扶正解毒方用于兒童病毒性肺炎也具有較好的療效[8-9],能夠減輕炎癥,改善癥狀,但尚無該方劑用于VMC 的報道。本院前期采用扶正解毒方治療VMC 取得了較好療效,但具體機制還不甚明確。因此,本研究建立大鼠VMC 模型,從Sirt1/FoxO3a 通路及氧化應激方面,探究扶正解毒方緩解VMC癥狀的機制,以期為扶正解毒方的開發應用提供參考。
1.1 動物與病毒 Wistar 大鼠90 只,健康雄性,清潔級,6~8 周齡,體質量200 ~220 g,購自吉林大學實驗動物中心[實驗動物生產許可證號SCXK (吉) 2020-0003]。CVB3 病毒懸液由中國科學院院武漢病毒研究所王漢中教授實驗室所饋贈。本實驗經本院動物倫理委員會審批通過(倫理號IACUC-105000296),實驗過程遵循3R 原則。
1.2 試劑與藥物 扶正解毒方(黨參20 g、白術15 g、茯苓15 g、黃芪15 g、黃芩12 g、連翹10 g、敗醬草15 g、薏苡仁30 g、西洋參10 g、北沙參12 g、白芍12 g、五味子10 g、麥冬15 g、瓜蔞15 g、漏蘆10 g、干姜10 g、炙甘草9 g) 藥材購自張仲景大藥房,參考文獻[9] 報道進行常規煎藥,濃縮成含生藥量2.8、11.2 g/mL 的藥液(即成人用量的1、4 倍),備用。HE 染色液(貨號G1122,上海信帆生物科技有限公司); TUNEL 染色液(貨號XYA114,上海信裕生物科技有限公司); 肌酸激酶同工酶(貨號SNDM192,滁州仕諾達生物科技有限公司); 肌鈣蛋白(貨號MM-0427M1,杭州鉑賽生物科技有限公司); 肌紅蛋白等ELISA 試劑盒(貨號XG-E101848,上海西格生物科技有限公司); 丙二醛(MDA) ELISA 試劑盒(貨號YS-E8429,上海研生實業有限公司); 超氧化物歧化酶(SOD) ELISA試劑盒(貨號NS7247,上海江萊生物科技有限公司); 晚期氧化蛋白產物(AOPP) ELISA 試劑盒(貨號LCS30824,廈門侖昌碩生物科技有限公司); Sirt1、FoxO3a、磷酸化FoxO3a (p-FoxO3a)、SOD、谷胱甘肽過氧化物酶(GPx)、過氧化氫酶(CAT)、細胞周期抑制蛋白p27、半胱氨酸天冬氨酸蛋白水解酶3 (caspase3) 抗體 (貨號ab189494、ab109629、ab154786、ab83108、ab256470、ab32572、ab32034、ab184787,英國Abcam 公司)。
1.3 儀器 Gel Doc EZ 型化學發光儀(美國伯樂公司);CX43 熒光顯微鏡(日本奧林巴斯公司)。
2.1 模型建立及分組 參考文獻[10] 報道方法制備VMC 模型。通過超聲心動圖檢測大鼠Tie 指數,若Tie 指數高于正常值,則認定造模成功。本研究共75 只大鼠造模成功,隨機分為模型組、扶正解毒方低劑量組(28 g/kg)、扶正解毒方高劑量組(112 g/kg)、EX527 組(1 μg/kg)、扶正解毒方+EX527 組 (28 g/kg 扶正解毒方+1 μg/kg EX527),每組15 只,另取15 只大鼠,腹腔注射0.1 mL 生理鹽水,作為正常組。扶正解毒方組大鼠灌胃給予2.8、11.2 g/mL 藥液,劑量10 mL/kg,每天1 次; EX527 組大鼠尾靜脈注射1 μg/kgEX527[10],每3 d 注射1 次; 扶正解毒方+EX527 組在灌胃給予低劑量扶正解毒方的基礎上尾靜脈注射EX527,各組均連續給藥1 周。給藥期間,監測大鼠一般狀態及死亡數量等。
2.2 心功能檢測 大鼠末次給藥結束后,麻醉,通過彩色多普勒超聲心動圖檢測心臟等容收縮時間(ICT)、等容舒張時間(IRT) 及射血時間(ET),計算Tei 指數用以評估心肌損傷程度,公式為Tei 指數= (ICT+IRT) /ET。
2.3 血清學指標檢測 大鼠麻醉后,腹主動脈采血6 mL,按ELISA 法檢測肌酸激酶同工酶、肌鈣蛋白、肌紅蛋白水平,以及氧化應激指標丙二醛(MDA)、超氧化物歧化酶(SOD)、晚期氧化蛋白產物(AOPP) 水平。
2.4 HE 及TUNEL 法檢測心肌組織病理變化和心肌細胞凋亡率 大鼠處死后,迅速解剖獲取心臟,一部分裝于凍存盒凍存于-80 ℃冰箱; 另一部分采用4%多聚甲醛固定,包埋,制備5 μm 切片。取心肌組織切片,行HE 及TUNEL染色后,于顯微鏡下觀察并拍照,計算細胞凋亡率。
2.5 免疫組化法檢測心肌組織Sirt1 表達 取心肌組織切片,經脫蠟、抗原修復等處理后,加入Sirt1 一抗抗體(1 ∶500) 室溫孵育3 h,加入山羊抗兔IgG 二抗抗體(1 ∶500) 室溫孵育2 h,DAB 顯色,于光鏡下觀察并拍照,通過ImagePro plus 6.0 圖像系統檢測單位面積內Sirt1 陽性染色(紅棕色) 的平均光密度值。
2.6 Western blot 法檢測心肌組織相關蛋白表達 取于-80 ℃冰箱保存的心肌組織,解凍、剪碎后勻漿,提取蛋白,BCA 法檢測蛋白濃度,取100 μg 蛋白進行電泳、轉膜,滴加一抗FoxO3a、p-FoxO3a、SOD、GPx、CAT、p27、caspase-3 (稀釋比例均為1 ∶1 000) 及β-actin 內參抗體(1 ∶2 000),4 ℃孵育過夜,次日滴加山羊抗兔IgG 二抗(1 ∶2 000),37 ℃孵育1.5 h,顯影曝光,通過Image J 軟件對條帶相對灰度值進行定量分析。
2.7 統計學分析 通過SPSS 21.0 軟件進行處理,計量資料以(±s) 表示,多組間比較采用單因素方差分析,進一步兩兩比較用SNK-q檢驗。P<0.05 為差異有統計學意義。
3.1 扶正解毒方對VMC 大鼠一般行為的影響 正常組大鼠狀態正常,無死亡出現; 模型組及扶正解毒方+EX527 組大鼠有4 只死亡,解剖死亡大鼠發現心臟呈白色點狀或條索狀病變; 扶正解毒方各劑量組大鼠無死亡,其飲食活動均趨于正常; EX527 組大鼠死亡8 只,死亡大鼠心臟條索狀病變加重,其飲食及活動量減少。
3.2 扶正解毒方對VMC 大鼠Tie 指數的影響 與正常組比較,模型組大鼠Tie 指數升高(P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠Tie 指數均降低(P<0.05),EX527 組大鼠Tie 指數進一步升高(P<0.05); 與扶正解毒方低劑量組比較,扶正解毒方+EX527 組Tie 指數升高(P<0.05),見表1。
表1 各組大鼠Tie 指數比較(±s)
表1 各組大鼠Tie 指數比較(±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只Tie 指數正常組150.28±0.01模型組111.82±0.14△扶正解毒方低劑量組150.87±0.10●扶正解毒方高劑量組150.52±0.05●▲EX527 組72.58±0.22●扶正解毒方+EX527 組111.89±0.13▲
3.3 扶正解毒方對VMC 大鼠心肌損傷標志物的影響 與正常組比較,模型組大鼠血清肌酸激酶同工酶、肌紅蛋白、肌鈣蛋白水平均升高(P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠血清肌酸激酶同工酶、肌紅蛋白、肌鈣蛋白水平均降低(P<0.05),EX527 組大鼠血清肌酸激酶同工酶、肌紅蛋白、肌鈣蛋白水平進一步升高(P<0.05);與扶正解毒方低劑量組比較,扶正解毒方+EX527 組大鼠血清肌酸激酶同工酶、肌紅蛋白、肌鈣蛋白水平均升高(P<0.05),但低于EX527 組,見表2。
表2 各組大鼠心肌損傷標志物水平比較(±s)
表2 各組大鼠心肌損傷標志物水平比較(±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只肌酸激酶同工酶/(U·mL-1)肌紅蛋白/(μg·L-1)肌鈣蛋白/(μg·L-1)正常組1531.24±1.5482.02±4.3114.23±1.34模型組11126.64±5.02△484.22±20.34△69.37±4.76△扶正解毒方低劑量組1593.39±3.33●303.66±15.31●40.27±3.12●扶正解毒方高劑量組1562.18±2.04●▲163.53±8.36●▲28.82±2.04●▲EX527 組7245.11±8.02●864.39±48.53●89.19±6.13●扶正解毒方+EX527 組11129.23±5.11▲488.09±20.35▲68.15±4.16▲
3.4 扶正解毒方對VMC 大鼠心肌組織病理變化及心肌細胞凋亡率的影響 HE 染色可見模型組大鼠心肌細胞水腫、胞漿疏松、壞死且淡染; TUNEL 染色可見模型組大鼠凋亡細胞核染顏色加深,心肌細胞凋亡率高于正常組 (P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠心肌細胞水腫、壞死緩解,心肌細胞凋亡率降低 (P<0.05),EX527 組大鼠心肌細胞水腫、壞死進一步加重,心肌細胞凋亡率進一步升高(P<0.05); 與扶正解毒方低劑量組比較,扶正解毒方+EX527 組大鼠心肌細胞水腫、壞死緩解,心肌細胞凋亡率升高(P<0.05),但低于EX527 組,見圖1、表3。
圖1 各組大鼠心肌組織HE 及TUNEL 染色圖(×200)
表3 各組大鼠心肌細胞凋亡率比較(±s)
表3 各組大鼠心肌細胞凋亡率比較(±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只凋亡率/%正常組159.19±0.91模型組1135.63±2.24△扶正解毒方低劑量組1526.25±1.49●扶正解毒方高劑量組1518.18±1.04●▲EX527 組746.24±2.72●扶正解毒方+EX527 組1136.29±1.43▲
3.5 扶正解毒方對VMC 大鼠氧化應激水平的影響 與正常組比較,模型組大鼠血清MDA、AOPP 水平升高(P<0.05),SOD 水平降低(P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠血清MDA、AOPP 水平降低(P<0.05),SOD 水平升高(P<0.05),EX527 組大鼠血清MDA、AOPP水平進一步升高(P<0.05),SOD 水平進一步降低(P<0.05); 與扶正解毒方低劑量組比較,扶正解毒方+EX527組血清MDA、AOPP 水平升高(P<0.05),但低于EX527組,SOD 水平降低 (P<0.05),但高于EX527 組 (P<0.05),見表4。
表4 各組大鼠血清MDA、AOPP、SOD 水平比較(ng/mL,±s)
表4 各組大鼠血清MDA、AOPP、SOD 水平比較(ng/mL,±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只MDAAOPPSOD正常組151.16±0.041.42±0.1230.42±1.12模型組11100.12±10.46△43.33±4.20△8.30±0.80△扶正解毒方低劑量組1563.36±6.35●26.91±2.14●18.93±1.18●扶正解毒方高劑量組1522.09±2.24●▲15.71±1.11●▲25.76±2.13●▲EX527 組7350.99±30.09●82.57±8.10●1.07±0.77●扶正解毒方+EX527 組11102.11±10.26▲41.72±4.10▲8.72±0.80▲
3.6 扶正解毒方對VMC 大鼠心肌組織Sirt1 陽性表達的影響 正常組比較,模型組大鼠心肌細胞胞漿中Sirt1 陽性表達降低(P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠心肌細胞Sirt1 陽性表達升高(P<0.05),EX527 組大鼠心肌細胞Sirt1 陽性表達進一步降低(P<0.05); 與扶正解毒方低劑量組比較,大鼠心肌細胞Sirt1 陽性表達降低(P<0.05),但高于EX527 組,見圖2、表5。
表5 各組大鼠心肌組織Sirt1 陽性表達比較(±s)
表5 各組大鼠心肌組織Sirt1 陽性表達比較(±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只Sirt1 平均光密度值正常組151.19±0.11模型組110.33±0.04△扶正解毒方低劑量組150.65±0.04●扶正解毒方高劑量組150.92±0.08●▲EX527 組70.14±0.01●扶正解毒方+EX527 組110.39±0.03▲
3.7 扶正解毒方對VMC 大鼠抗氧化應激蛋白表達的影響 與正常組比較,模型組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT蛋白表達降低(P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT 蛋白表達升高(P<0.05),EX527 組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT 蛋白表達進一步降低(P<0.05); 與扶正解毒方低劑量組比較,扶正解毒方+EX527 組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT 蛋白表達降低(P<0.05),但高于EX527 組,見圖3、表6。
圖3 各組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT 蛋白表達免疫印跡圖
表6 各組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT 蛋白表達比較(±s)
表6 各組大鼠心肌組織SOD、GPx、CAT 蛋白表達比較(±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只SOD/β-actinGPx/β-actinCAT/β-actin正常組151.19±0.141.16±0.131.11±0.09模型組110.31±0.04△0.38±0.03△0.43±0.04△扶正解毒方低劑量組150.68±0.05●0.56±0.05●0.72±0.05●扶正解毒方高劑量組150.90±0.09●▲0.99±0.09●▲0.92±0.06●▲EX527 組70.17±0.01●0.11±0.02●0.10±0.01●扶正解毒方+EX527 組110.39±0.04▲0.36±0.03▲0.40±0.05▲
3.8 扶正解毒方對VMC 大鼠FoxO3a、p-FoxO3a、p27、caspase3 蛋白表達的影響 與正常組比較,模型組大鼠心肌組織p-FoxO3a/FoxO3a、p27 蛋白表達降低 (P<0.05),caspase3 蛋白表達升高(P<0.05); 與模型組比較,扶正解毒方各劑量組大鼠心肌組織p-FoxO3a/FoxO3a、p27 蛋白表達升高(P<0.05),caspase3 蛋白表達降低 (P<0.05),EX527 組大鼠心肌組織p-FoxO3a/FoxO3a、p27 蛋白表達進一步降低(P<0.05),caspase3 蛋白表達進一步升高(P<0.05); 與扶正解毒方低劑量組比較,扶正解毒方+EX527組鼠心肌組織p-FoxO3a/FoxO3a、p27 蛋白表達降低(P<0.05),但高于EX527 組,caspase3 蛋白表達升高 (P<0.05),但低于EX527 組,見圖4、表7。
圖4 各組大鼠心肌組織FoxO3a、p-FoxO3a、p27、caspase3 蛋白表達免疫印跡圖
表7 各組大鼠心肌組織p-FoxO3a/FoxO3a、p27、caspase3 蛋白表達比較(±s)
表7 各組大鼠心肌組織p-FoxO3a/FoxO3a、p27、caspase3 蛋白表達比較(±s)
注: 與正常組比較,△P<0.05; 與模型組比較,●P<0.05; 與扶正解毒方低劑量組比較,▲P<0.05。
組別動物數/只p-FoxO3a/FoxO3ap27/β-actincaspase3/β-actin正常組151.15±0.091.13±0.100.92±0.10模型組110.34±0.03△0.43±0.04△1.99±0.20△扶正解毒方低劑量組150.51±0.06●0.72±0.07●1.62±0.16●扶正解毒方高劑量組150.89±0.09●▲0.96±0.08●▲1.36±0.12●▲EX527 組70.18±0.01●0.10±0.01●2.65±0.22●扶正解毒方+EX527 組110.30±0.03▲0.44±0.04▲2.08±0.20▲
傳統醫學中,病毒性心肌炎屬于“心悸” “怔仲” “心水” 等范疇。本病為本虛標實之證,本虛是氣陰兩虛,標實是溫熱毒邪侵襲[11-12]。扶正解毒方中黨參、黃芪補中益氣; 白術、茯苓、薏苡仁、干姜健脾燥濕; 黃芩、連翹、敗醬草、漏蘆四藥合用,清熱解毒; 北沙參、西洋參補氣養陰; 白芍、五味子、麥冬滋陰斂陰、養血柔肝; 炙甘草調和諸藥。上述藥物相互配伍,扶正與驅邪兼顧,治療病毒性心肌炎尤為合適。
CVB3 病毒直接侵犯心肌細胞,引起細胞水腫、破裂、壞死,是引起VMC 發生的重要病因體[13-14]。Tei 指數可綜合評價心肌收縮和舒張功能,在評估VMC 患兒心肌損傷程度中具有較高的應用價值[15-16]。VMC 造模后,大鼠出現死亡、心肌細胞壞死及凋亡嚴重現象,Tei 指數異常升高,且心肌損傷標志物水平異常升高,提示造模成功。扶正解毒方中黃芩、連翹、敗醬草等具有清熱解毒作用,石哲瑋等[17]已證實黃芩中的活性成分漢黃芩苷可抑制CVB3 病毒引起的VMC 小鼠心肌炎癥反應; 曹燦等[18]證實連翹、敗醬草為治療新冠病毒方劑中使用頻率較高的中藥,提示扶正解毒方在治療VMC 領域有潛在的價值。本研究建立VMC模型后采用扶正解毒方進行干預,發現扶正解毒方可抑制VMC 大鼠死亡,緩解心肌細胞水腫、死亡及凋亡現象,扶正解毒方劑量越高,心肌損傷標志物水平釋放及Tei 指數降低越顯著,提示扶正解毒方可緩解VMC 大鼠心肌損傷程度。
CVB3 除直接引起心肌細胞損傷外,還促進心肌細胞內氧自由基釋放,通過激活氧化應激反應來加重心肌細胞損傷[19]??镄沅h等[3]發現VMC 患者血清中氧化應激產物MDA、AOPP 水平與Tei 指數升高成正比,并認為氧化應激指標與VMC 病情程度關系密切。本研究發現,模型組大鼠心肌細胞組織中氧化應激產物MDA、AOPP 水平升高,而抗氧化物SOD、GPx、CAT 等水平降低,提示VMC 大鼠心肌組織中存在氧化應激反應。扶正解毒方各劑量組大鼠心肌組織抗氧化應激水平升高、氧化應激產物分泌減少,且高劑量效果更佳,提示扶正解毒方可能通過提高抗氧化應激反應來緩解VMC 大鼠心肌損傷作用。
Sirt1/FoxO3a 通路與細胞氧化應激損傷及凋亡關系密切[20]。Sirt1 能夠去乙?;蛄姿峄鞍撞⒄{控多種轉錄因子,參與細胞氧化應激、凋亡、DNA 損傷修復等過程的調控[21]; FoxO3a 蛋白可被Sirt1 磷酸化、乙?;头核鼗揎椊到?,調控抗氧化應激指標SOD 及細胞周期抑制蛋白如p27 等表達,參與細胞氧化應激過程[22]。Sirt1 上調能夠促進FoxO3a 磷酸化,進而增強抗氧化應激、抗凋亡反應,緩解組織及細胞損傷[23]。但Sirt1/FoxO3a 是否參與VMC 心肌損傷過程,還未見報道。本研究發現,Sirt1 在VMC 大鼠心肌細胞胞漿中呈弱陽性表達,FoxO3a 磷酸化水平也降低,其介導的抗氧化應激相關蛋白表達降低,心肌細胞凋亡率及凋亡相關蛋白表達異常升高; 進一步抑制Sirt1 表達后,大鼠死亡增加,心肌損傷程度、氧化應激反應及凋亡反應進一步加重,提示Sirt1/FoxO3a 通路介導的抗氧化、抗凋亡途徑抑制,可能是加重VMC 大鼠心肌損傷的關鍵機制。扶正解毒方劑量越高,大鼠Sirt1/FoxO3a 通路激活越顯著,抗氧化應激、抗凋亡效果越明顯,提示扶正解毒方可通過激活Sirt1/FoxO3a 介導的抗氧化、抗凋亡途徑,緩解VMC大鼠心肌氧化應激損傷。
綜上所述,扶正解毒方可通過促進Sirt1/FoxO3a 介導的抗氧化、抗凋亡途徑激活,緩解VMC 大鼠心肌氧化應激損傷,本研究為闡明扶正解毒方治療VMC 的可能機制提供一定的參考。但VMC 心肌損傷機制復雜,Sirt1/FoxO3a 通路還可能與心肌細胞自噬有關,扶正解毒方緩解VMC 的其他可能機制還有待進一步探究。