小鼠毛乳頭細胞體外分離培養方法的優化和評價*

林享玉 祝佳銘 朱 亮 王哲寧 何 晶

（同濟大學醫學院病理學和病理生理學系，上海 200092）

脫發是臨床常見疾病，影響患者身心健康及生活質量，給患者及社會造成經濟負擔。而毛乳頭細胞 （dermal papilla cells，DPCs） 是毛囊形態學發生的關鍵，被認為是促進毛發再生的重要種子細胞來源之一[1]。小鼠是毛發疾病及再生研究的重要模型和工具[2]，但傳統的小鼠DPCs分離培養方法效率低、來源有限且極易老化，嚴重限制了毛囊再生及毛發相關疾病研究的發展[3]。因此，迫切需要建立更快速、高效的新方法。本研究在傳統方法的基礎上，結合精細解剖、酶消化及細胞培養體系優化，建立了分離培養小鼠DPCs的改良新方法，可獲取更多數量、更好功能的DPCs，為將來毛囊發育、再生及毛發相關疾病研究提供可靠的保障。

1 材料和方法

1.1 動物與試劑

6周大雌性C57BL/6小鼠，購于上海斯萊克實驗動物有限責任公司。主要試劑有：磷酸鹽緩沖液（PBS）（Corning公司）；Ⅰ型膠原酶（Sigma公司）；膠原酶NB4（Nordmark公司）；高糖DMEM培養液、堿性成纖維細胞生長因子（bFGF，Corning公司）；胎牛血清（FBS）、青鏈霉素溶液和0.05% 胰酶-EDTA（Gibco公司）；全培養基用10 mL血清、1 mL青-鏈霉素溶液、89 mL DMEM高糖培養基配制；堿性磷酸酶（ALP）染色試劑盒（南京建成科技有限公司）；TRIzol（Invitrogen公司）；Prime Script RT reagent Kit和SYBR Premix Ex TaqTM試劑盒（TaKaRa公司）。

1.2 DPCs體外分離培養的傳統方法

DPCs分離和體外培養的傳統方法參照文獻報道進行[2，4]。頸椎脫臼法處死C57BL/6小鼠，75%乙醇浸泡消毒5 min。眼科剪剪下兩側觸須墊，置于無菌磷酸鹽緩沖液（PBS）中。將觸須墊真皮面朝上，在體視顯微鏡下用顯微外科鑷、剪獲取完整的單根毛囊毛球部。簡單剝離去除毛球周圍的脂肪及結締組織后，將收集的毛囊置于0.2%Ⅰ型膠原酶中進行消化，37℃消化2 h后，加入等體積的全培養基終止消化，800 r/min，離心3 min。棄上清液后，在體視顯微鏡下輕輕挑出已松散暴露的毛乳頭，分散接種于培養板表面，加入少量培養液，液面稍高于皿底，于37℃，5% CO2的細胞培養箱中培養。12 h后首次觀察DPCs貼壁及遷出情況，此后每12 h觀察1次，待所有的毛乳頭開始遷出后，每2～3 d以完全培養基換液。

1.3 DPCs體外分離培養的改良方法

C57BL/6小鼠觸須墊獲取同1.2。將觸須墊真皮面朝上，在體視鏡下用顯微剪去除毛囊毛球部位的脂肪組織，將毛球部分完全暴露，盡量沿根部剪下毛球部分，隨后以顯微外科鑷盡最大可能剝離毛乳頭周圍的結締組織及真皮鞘，采用顯微彎剪將收集在培養皿中含毛乳頭的毛球組織充分剪碎，置于含0.1% 膠原酶NB4的DMEM液中37℃水浴振蕩消化30 min，加入等體積全培養基終止消化，2 000 r/min離心10 min，棄上清液。收集離心管底部的組織塊，用含10 ng/mL bFGF的完全培養基吹打混勻后，種植于培養板，于37℃，5% CO2的細胞培養箱中培養。待細胞及組織塊貼壁遷出后，每2～3 d以完全培養基換液，注意動作輕緩，避免脫落。

1.4 DPCs的傳代擴增及細胞獲得數量

待2種方法獲取的原代DPCs逐漸遷出，增殖并融合至90%時及時傳代，加入0.05% 胰酶-EDTA 2 mL，37℃消化2 min，鏡下觀察細胞變圓后，去除胰酶，加入1 mL全培養基終止消化，吹打細胞至完全脫落形成單細胞懸液，補齊液體后，按1∶3的比例進行傳代，繼續于37℃，5% CO2的細胞培養箱中進行培養，鏡下觀察2種方法培養的第1至5代DPCs的生長狀態。分別在原代和第1、2及5代增殖融合至90%時，用0.05%胰酶-EDTA對2種培養方法所獲得細胞進行消化傳代，并用血球計數板進行細胞計數。

1.5 DPCs的ALP活性鑒定

ALP是DPCs特異性標志物，可反映其毛囊誘導功能[5]。將2種方法傳代獲得的第2、5代DPCs分別接種于24孔板，待細胞生長至80%匯合時，棄去原培養液，PBS漂洗，按照ALP染色試劑盒說明書進行染色。將24孔板中的細胞用試劑1固定3 min；將試劑2和試劑3以20∶1的比例混合，滴加基質液數滴，覆蓋已處理好的樣本上，37℃避光孵育15 min左右，甩掉多余的染液；立即滴加試劑4染液染色5 min，水洗30 s，再滴加試劑5染色30 s，最后滴加試劑六復染30 s，水洗30 s，甩干，以奧林巴斯倒置顯微鏡進行觀察。

1.6 實時熒光定量PCR（qRT-PCR）檢測DPCs中ALP mRNA表達

采用TRIzol法提取2種方法獲取的第2、5代DPCs中總RNA，測定濃度與純度后，按照Prime Script RT reagent Kit說明書方法，將各組細胞中的總RNA逆轉錄為cDNA，再按照SYBR Premix Ex TaqTM試劑盒說明書建議的反應時間與溫度進行RT-PCR反應。ALP上游引物序列為5'-CAGGTCCCACAAGCCCGCAA-3'，下游引物序列為5'-CCCGGTGGTGGGCCACAAAA-3'；GAPDH上游引物序列為5'-TGCCCAGAACAT CATCCCT-3'，下游引物序列為5'-GGTCCTCAGTG TAGCCCAAG-3'。反應條件為：變性95℃，15 s；退火60℃，30 s；延伸70℃，10 s；共執行40個循環。應用公式2-ΔΔCt計算ALP基因的相對表達量。實驗重復3次。

1.7 統計學處理

采用SPSS 19.0軟件進行統計分析，使用Graphpad Prism 7.0進行統計結果圖的繪制，計量資料以±s表示，2組間比較采用獨立樣本t檢驗，P＜0.05為差異具有統計學意義。

2 結果

2.1 2種方法分離培養的原代DPCs的形態學比較

次日在鏡下觀察，傳統方法分離培養的毛乳頭周圍殘留毛球中的其他結構，包括周圍的部分真皮鞘結構（圖1A），并且只有約40%的毛乳頭組織貼附于培養板底部，其余的大部分均懸浮于液體中，即使后續重新調整組織塊位置也很難再次貼附于培養板底部；待種植4～5 d后可見短梭形DPCs遷出，圍繞在毛乳頭組織周圍，至7 d左右，有大量細胞明顯遷出，細胞質豐富，呈長梭形，但是殘存真皮鞘也有大量細胞遷出（圖1B）；而細胞遷出到完全融合需要13～14 d，并且早期遷出的細胞出現明顯堆積，而組織塊之間則較為稀疏。

圖1 2種方法分離的原代DPCs的形態學比較，標尺=500 μm

改良方法獲得的原代DPCs，次日可見經剪碎消化的毛乳頭組織更松散、細碎，幾乎所有的毛乳頭都可以牢固并均勻的鋪散于培養板底部，經換液也不會出現脫落現象，而組織塊之間則貼附大量分散為單細胞的DPCs（圖1C）；2～3 d時細胞可從組織塊中遷出，細胞呈現長梭形，折光強，細胞質豐富，6～7 d時細胞大量遷出、增殖，原代細胞達到融合，靠近毛乳頭中心位置遷出的細胞可呈現多層聚集性生長現象（圖1D）。

2.2 2種方法DPCs的傳代培養及形態學比較

待原代DPCs生長融合至90%時進行傳代培養，2種方法的第1代DPCs均在12 h左右貼壁生長，24 h后呈現聚集性生長趨勢，而48 h后聚集性生長更加明顯；并且2種方法獲得的DPCs形態未見明顯差異，均呈現梭形或者多角形的成纖維細胞樣形態（圖2A，D）；在1∶3比例傳代的條件下，傳統方法的第1代細胞約在4 d融合至90%，改良方法則為3 d左右。

圖2 2種方法傳代培養的DPCs的形態學比較，標尺=100 μm

隨著傳代次數的增加，傳統方法的第2代細胞的胞體較第1代有所增大，并以多角形為主，而聚集性生長的趨勢也不明顯，3 d左右可達到90%融合（圖2B）；繼續傳代至第5代時，傳統方法的DPCs細胞面積明顯增大，細胞質不均勻，細胞呈現明顯老化、肥大的特征，細胞活力顯著下降，生長緩慢，6～7 d才可達到90%融合，且完全喪失聚集性生長的特征（圖2C）。而改良方法的第2代細胞的大小、形態與第1代細胞比較變化不大，還保持著聚集性生長的趨勢，細胞增殖迅速，2～3 d即可融合（圖2E）；并且隨著傳代次數增加，到第5代細胞還能保持較好的形態，聚集性生長趨勢尚未完全消失，3 d左右細胞融合（圖2F）。

2.3 2種方法的DPCs細胞獲得量比較

2種方法分別自4個觸須墊分離并培養DPCs，經細胞計數顯示，雖然傳統方法的原代細胞生長時間更長，但是獲得的細胞數量僅為（0.14±0.01）×106，改良方法卻可獲得（0.82±0.01） ×106，約是傳統方法的5.85倍；另外傳代后，傳統方法的第1、2和5代細胞分別可獲得（0.27±0.01）×106、（1.21±0.18） ×106和（14.67±0.47） ×106數量的細胞，而改良方法則為（1.74±0.02） ×106、（9.94±0.31） ×106、（203.33±20.54） ×106，分別是傳統方法的6.44、8.21和13.86倍，差異均具有統計學意義（P＜0.01），結果說明改良方法可獲得更多的DPCs，尤其是高代次更具優勢（表1）。

表1 不同方法分離培養的DPCs細胞獲得量比較（n=3，±s，×106）

表1 不同方法分離培養的DPCs細胞獲得量比較（n=3，±s，×106）

**P＜0.01 vs傳統方法

方法0代第1代第2代第5代傳統方法0.14±0.010.27±0.011.21±0.1814.67±0.47改良方法0.82±0.01**1.74±0.02**9.94±0.31**203.33±20.54**

2.4 2種方法培養的DPCs的ALP活性的比較

ALP是DPCs特有的功能標志蛋白，其活性強度也間接反應了DPCs誘導毛發形成的能力[5]。ALP試劑盒染色，陽性反應為胞質中呈現灰黑色顆?；驂K狀、條狀沉淀。傳統方法和改良方法的2代細胞經染色后顯示，改良方法的細胞ALP活性稍高于傳統方法（圖3A、B；E、F）；5代細胞中傳統方法的DPCs基本沒有ALP顯色，而改良方法則仍顯示明顯ALP活性（圖3C、D；G、H）。提示改良方法培養的DPCs的 ALP活性明顯高于傳統方法，尤其是在高代次細胞中。

圖3 不同方法分離培養的DPCs的ALP活性鑒定，標尺=50 μm

qRT-PCR測定結果顯示，與傳統方法比較，改良方法培養的第2代 DPCs的ALP mRNA表達水平明顯升高（P＜0.01）；隨著細胞培養代次的提高，雖然2種方法的第5代DPCs中ALP mRNA表達水平均明顯降低，但與傳統方法相比，改良方法具有更高的ALP mRNA表達水平，與傳統方法的第2代細胞持平（P＜0.01）（圖4）。

圖4 不同方法培養第2、5代DPCs中ALP mRNA的表達水平

3 討論

毛囊是由表皮和真皮相互作用形成的最小器官，具有高度的自我更新能力，是唯一呈終身周期性生長的皮膚器官[6]。而DPCs是位于毛囊基底的特化的真皮成纖維樣細胞，具有誘導毛囊再生的能力，是毛囊重建、傳導毛發生長信號的重要結構[1～3]。因此，成功體外分離培養DPCs是開展毛囊研究的首要前提。

小鼠是研究毛發疾病最佳的模型及工具，但小鼠DPCs的分離培養其實更為困難。這是由于毛乳頭解剖位置的特殊性，獲取高純度DPCs異常困難，以往多采用顯微切割法從毛囊中獲取完整的毛乳頭，分離出 DPCs進行培養[7]。體外培養的小鼠DPCs具有特有的聚集性生長特征，可表達特異性標志ALP，移植體內可誘導毛囊形成[8]；雖然細胞具有較高純度，但是生長周期長，獲得量少，易污染，不能滿足科研的需求[7]。并且隨著體外培養傳代次數的增加，逐漸喪失聚集性生長特征，ALP的表達也逐漸降低，同時逐漸喪失體內誘導毛發形成的能力。因此，如何獲得大量并且具有良好功能的DPCs是制約毛囊研究領域發展的難題[5]。也有學者以5周齡 C57BL/6小鼠背部皮膚，在0.2%Ⅰ型膠原酶中37℃消化2 h，經過 2 次 Ficoll 密度梯度離心以獲得大量DPCs，但是細胞純度及功能仍差強人意[9]。近年來發展的解剖聯合酶消化法可提高貼壁遷出率，這也是目前比較通用的傳統方法，但是所獲得細胞的數量及功能仍具有較大的提升空間[2，4]。

筆者前期也參照傳統方法，通過顯微解剖和酶消化法獲得完整的單根毛囊，但這種方法獲得的DPCs貼壁率差、損失率高、細胞生長速度慢，并且混雜有大量的真皮鞘細胞遷出，嚴重影響了DPCs純度。因此，改良和優化分離培養DPCs方法非常必要。

在此基礎上，本研究聯合精細顯微解剖和酶消化法進行改良。另外研究顯示bFGF可促進多種細胞增殖，例如對脂肪干細胞等多種干細胞，因此被添加入多種重要細胞的培養體系中；而bFGF對DPCs的生長及功能也同樣具有明顯促進作用[10-11]?；谖墨I報道，本實驗添加bFGF（10 ng/mL）以優化培養體系，從而建立了更具優勢的分離培養小鼠DPCs的新方法。其優點主要體現在以下幾個方面：①以顯微彎剪充分剪碎毛乳頭組織后用膠原酶消化，組織分解更充分，不但提高了貼壁率，而且接種密度實際上遠高于傳統方法，從而可顯著提高DPCs獲得量，縮短擴增時間；②傳統方法也可以實現精準的顯微解剖，但是該方法毛乳頭貼壁率欠佳，反而犧牲了組織利用率和DPCs的獲取數量，而加大毛乳頭組織獲取量勢必以犧牲其純度作為代價；與此相較，改良法具有較高的細胞及組織貼壁率，可充分體現精細解剖的優勢，同時滿足提高DPCs的獲取數量及細胞純度的要求；③基于文獻支持，培養基中添加bFGF（10 ng/mL）顯著縮短了DPCs的遷移和生長融合時間，也有利于維持DPCs的生物學功能。實驗結果顯示，改良方法的毛乳頭幾乎全部貼壁，具有更高的分離效率及細胞數量，尤其是高代次（第5代）更為顯著，可維持良好的細胞形態，細胞獲得量接近傳統方法的14倍。另外代表DPCs毛囊誘導能力的特異性標志物ALP的表達也明顯提高，尤其是高代次（第5代）的ALP的表達水平也與傳統方法的低代次（第2代）的水平相當，說明改良方法有助于維持DPCs的功能。

綜上所述，該改良方法提高了DPCs的獲取效率和保證其特定的生物學功能，是一種更快速、高效的DPCs分離培養方法，為后續進行毛囊相關的研究提供可靠保障。