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梔子金花湯對膿毒癥大鼠腸黏膜屏障及相關炎癥因子的影響

2024-03-25 06:13孫素靈吳雪卿楊孫虎
中成藥 2024年3期
關鍵詞:金花梔子膿毒癥

孫素靈,姜 逸,陸 雄,吳雪卿,楊孫虎,王 鳴*

(1.上海中醫藥大學附屬上海市中西醫結合醫院普外科,上海 200082; 2.上海中醫藥大學科技實驗中心細胞生物與組織病理學實驗室,上海 201203; 3.上海中醫藥大學附屬曙光醫院,上海 201203)

膿毒癥是一種由感染引起宿主強烈炎癥反應并伴發器官功能障礙的全身炎癥反應綜合征(systemic inflammatory response syndrome,SIRS)[1]。盡管近年來膿毒癥治療有所進展,但它仍然是重癥監護病房患者最常見的死亡原因之一[2-3]。一項全球性的膿毒癥發生率和死亡率回顧性研究結果顯示,僅在2017 年全球膿毒癥患者人數累計4 890 萬例,其中1 100 萬例患者報告死亡,占全球死亡人數的19.7%[4]。腸道是參與和加重膿毒癥的中心器官,被認為是全身炎癥反應綜合征的“引擎”[5]。尤其在盲腸結扎穿孔(cecal ligation and puncture,CLP) 模型中,腸屏障損傷導致腸道通透性增加,促使管腔微生物和內毒素進入循環,誘導多種炎癥介質釋放進一步加劇多器官功能衰竭[6]。

梔子金花湯出自《醫宗金鑒·雜病心法要訣》[7],在黃連解毒湯的基礎上添加一味大黃,對熱毒內蘊患者有奇效。已有研究證實梔子金花湯可以通過調節炎癥介質改善膿毒癥腹腔感染[8],梔子金花湯保留灌腸在肛竇炎治療過程中亦可發揮良好的抑菌作用[9]。關于梔子金花湯對膿毒癥腸黏膜屏障的影響及機制探索不多,本研究旨在為相關臨床研究提供實驗室依據。

1 材料

1.1 實驗動物 SD 雄性大鼠30 只,8 周齡,體質量(200±20) g,購自杭州醫學院[實驗動物生產許可證號SCXK (浙) 2019-0002],飼養于上海中醫藥大學附屬市中西醫結合醫院實驗動物中心,溫度(25±2)℃,相對濕度(60±10)%,光照日夜循環各12 h,自由飲食飲水,并按實驗動物使用的3R 原則給予人道關懷。

1.2 藥物 生梔子、黃芩(批號20230421、2023030707,上海養和堂中藥飲片有限公司); 黃連(批號220809,上海青浦中藥飲片有限公司); 黃柏(批號230508,上海虹橋中藥飲片有限公司); 大黃(批號20221117,上海萬仕誠藥業有限公司),藥材均購自上海市中西醫結合醫院中藥房,經專家鑒定為正品。梔子金花湯由梔子15 g、黃連15 g、黃芩10 g、黃柏10 g、大黃3 g 組成,藥材加蒸餾水1 L 浸泡30 min,武火燒開轉文火煎煮30 min,過濾,濾渣加蒸餾水1 L 復煎30 min,過濾,合并2 次濾液,加熱濃縮至生藥量3.6 g/mL。根據人與大鼠體表面積計算法換算,梔子金花湯低、中、高劑量組為6、18、36 g/kg,每天相當于臨床劑量的(1、3、6 倍)。

1.3 試劑 TNF-α、IL-10、IL-1β、二胺氧化酶(diamine oxidase,DAO) 酶聯免疫吸附試驗(ELISA) 檢測試劑盒(批號230714204R、230714229R、230714225R、230714245R,江蘇酶免實業有限公司); 伊紅和蘇木素染液 (批號220602,上海虹橋樂翔醫用試劑技術有限公司); 25%戊二醛水溶液、乙醇(批號20200109、20210728,國藥集團化學試劑有限公司); 鋨酸[批號10194309,阿法埃莎(中國) 化學有限公司]; 環氧樹脂E-51 (昆山綠循電子材料有限公司); 異弗烷(批號20230403,青島歐博方醫藥科技有限公司)。

1.4 儀器 Axio imager 2 正置熒光顯微鏡(德國Carl Zeiss公司); Tecnai G2 spirit 透射電子顯微鏡(美國FEI 公司);Tianshi 988 洗板機(北京天石天力醫療器械技術開發中心); Rayto RT-6100 酶標儀(深圳雷杜生命科學股份有限公司); 電熱恒溫培養箱(武漢一恒蘇凈科學儀器有限公司); TG16W 微量高速離心機(長沙湘智離心機儀器有限公司); TGL16M 臺式高速冷凍離心機(上海盧湘儀離心機儀器有限公司); HT-111B 恒溫搖床(上海赫田科學儀器有限公司); EasyWeLL 系列JY98-IIIN 細胞破碎儀(寧波新芝生物科技股份有限公司)。

2 方法

2.1 分組、造模及給藥 將大鼠隨機分為假手術組、模型組和梔子金花湯高、中、低劑量組,每組6 只。參考文獻[10] 報道,采用盲腸結扎穿孔(CLP) 技術建立膿毒癥大鼠模型。大鼠吸入異氟烷麻醉,麻醉后固定于鼠板,繼續予以異氟烷維持。大鼠腹部剃毛備皮,用75% 乙醇消毒,用手術剪刀從大鼠腹部正中開口(倒T 型) 暴露腹腔,將盲腸輕輕拉出并分離腸系膜,在距盲腸末端1 cm 處用3-0號無菌手術縫線結扎,然后用22G 針頭在盲腸結扎遠端中央區域貫通穿刺2 次(注意避開血管),輕微擠壓盲腸,確保穿刺點通暢,隨后將腸段送回腹腔,用6-0 號無菌手術縫線關閉腹膜及腹肌,最后縫合皮膚; 假手術組除不進行盲腸結扎與穿孔外,其余手術操作同模型組。手術結束后,大鼠于鼠籠內觀察1 h 后放回動物飼養中心繼續飼養。其中模型組死亡2 只。造模后次日,梔子金花湯高、中、低劑量組灌胃給予6、18、36 g/kg 藥液,假手術組和模型組灌胃給予生理鹽水,每天2 次,每次間隔12 h,連續給藥3 d[11]。

2.2 膿毒癥模型評判 給藥結束后,參考文獻[12] 報道,從外觀、自主意識、自主活動、對刺激的反應、眼睛是否有分泌物、呼吸頻率、呼吸質量7 個指標進行評價,每個指標分成5 個等級(0~4 分),總分為7 個指標的分數相加,最高分為28 分,若大鼠出現死亡則記為最高分。評分標準見表1。

表1 膿毒癥模型評分標準

2.3 HE 染色觀察回腸組織病理變化 末次給藥后禁食不禁水12 h,次日采用異氟烷麻醉大鼠后,取血5 mL,并取回腸部位。取部分回腸于10%中性甲醛中固定,乙醇梯度脫水后進行石蠟包埋,切片,依次使用二甲苯、乙醇脫蠟,蘇木素染核,鹽酸乙醇分化,伊紅染胞漿,自然晾干后樹脂封片,于光學顯微鏡下觀察回腸組織病理結構變化。

2.4 透射電鏡觀察回腸組織超微結構 取部分回腸段固定于2.5%戊二醛中,0.1 mol/L PBS 充分浸洗3 次后,依次使用1%鋨酸后固定,梯度乙醇、丙酮脫水,采用環氧樹脂618 浸透固化,超薄切片70 nm,使用醋酸雙氧鈾-檸檬酸鉛雙染色,蒸餾水洗3 次,自然晾干后于透射電鏡下觀察超微結構。

2.5 ELISA 法檢測血清及回腸組織DAO、TNF-α、IL-1β、IL-10 水平 血液樣本室溫放置2 h,3 500 r/min 離心10 min,取上層血清,備用; 取適量回腸組織,加入0.1 mol/L PBS 破碎勻漿,離心取上清,蛋白定量后備用。按照相應試劑盒說明書檢測血清及回腸組織DAO、TNF-α、IL-1β、IL-10 水平。

2.6 統計學分析 通過GraphPad Prism 9.0.0 軟件進行處理,計量資料以(±s) 表示,多組間比較采用單因素方差分析,2 組間比較采用t檢驗。P<0.05 表示差異有統計學意義。

3 結果

3.1 梔子金花湯對膿毒癥大鼠膿毒癥評分的影響 如圖1所示,與假手術組比較,模型組膿毒癥評分升高 (P<0.01),平均26 分,提示造模成功; 與模型組比較,梔子金花湯中、高劑量組膿毒癥評分降低(P<0.01)。

圖1 各組大鼠膿毒癥評分(±s,n=4~6)

3.2 梔子金花湯對膿毒癥大鼠回腸組織病理形態的影響如圖2 所示,假手術組大鼠回腸各層結構完整,腸絨毛排列整齊,未見炎癥細胞浸潤; 模型組大鼠回腸結構破壞嚴重,腸絨毛排列紊亂,部分腸上皮層脫落,黏膜層可見大量炎性細胞聚集,以中性粒細胞為主; 與模型組比較,梔子金花湯各劑量組回腸結構基本完整,少量腸上皮細胞脫落,低劑量組黏膜層炎性細胞浸潤面積減少,中、高劑量組炎性細胞數量偶見且優于低劑量組。

圖2 各組大鼠回腸組織HE 染色(×200)

3.3 梔子金花湯對膿毒癥大鼠回腸組織黏膜屏障超微結構的影響 如圖3 所示,假手術組大鼠腸黏膜上皮細胞結構完整、邊界清晰,細胞器、連接結構正常; 與正常組比較,模型組大鼠腸上皮細胞結構破壞嚴重,表現為微絨毛大量脫落,連接結構疏松不明,細胞膜破碎; 與模型組比較,梔子金花湯低劑量組無明顯變化,中、高劑量組大鼠腸上皮細胞結構相對完整。

圖3 各組大鼠回腸組織超微結構(×8 200)

3.4 梔子金花湯對膿毒癥大鼠血清和回腸組織DAO 及炎癥因子水平的影響 如圖4 ~5 所示,與正常組比較,模型組大鼠血清和回腸組織DAO 水平升高(P<0.01),提示腸黏膜細胞受損,回腸機械性屏障完整性破壞; 促炎因子TNF-α、IL-1β 水平升高(P<0.01),而血清抗炎因子IL-10水平降低(P<0.05),回腸組織IL-10 水平無明顯變化(P>0.05)。與模型組比較,梔子金花湯中、高劑量組血清IL-1β 水平及血清和回腸組織DAO、TNF-α 水平降低(P<0.05,P<0.01),血清和回腸組織IL-10 水平升高 (P<0.05,P<0.01); 低劑量組血清DAO、IL-1β 水平降低(P<0.01),血清IL-10 水平升高(P<0.01); 中劑量組回腸組織IL-1β 水平降低(P<0.05)。

圖4 各組大鼠血清DAO、TNF-α、IL-1β、IL-10 水平(±s,n=4~6)

圖5 各組大鼠回腸組織DAO、TNF-α、IL-1β、IL-10 水平(±s,n=4~6)

4 討論

膿毒癥病情兇險,是重癥監護病房患者常見死亡原因[3]。隨著現代醫學發展膿毒癥主流的抗感染治療和器官功能支持技術獲得了長足進步,但膿毒癥的ICU 監測和治療花費頗多,嚴重消耗公共醫療資源。疾病預后差,又拖累患者的后期生活質量。從個人家庭和社會層面,膿毒癥都造成了巨大威脅。如何拓展膿毒癥的治療手段,降低膿毒癥的重癥死亡率,是各類臨床或實驗室研究所面臨的嚴苛挑戰。膿毒癥機制復雜尚未闡明,在CLP 模型中盲腸創傷誘導免疫系統過度激活,炎癥介質的觸發、增強和放大效應是病理核心[13]。

中醫經典中并無“膿毒癥” 對應病名,諸醫家普遍將其歸入“傷寒” “溫病” “疫病” 范疇,可參見“異病同治” 或“同病異治” 理論予以治療?!夺t宗金鑒》 記載梔子金花湯主治痘中厥逆,因陽毒內攻,熱極反寒,致熱厥者,與膿毒癥早期“毒熱證機理相合”。梔子金花湯方組黃芩、黃連、黃柏、梔子、大黃,在黃連解毒湯基礎上添加一味大黃形成。黃連解毒湯主治三焦火毒,且多項研究證實黃連解毒湯對膿毒癥早期之毒熱證有較好抗炎療效,在中醫臨床應用于各類感染性疾病和胃腸道疾病等[14-15]。此外大黃性味苦、寒,具有瀉下攻積、清熱瀉火、涼血解毒的功效?,F代藥理研究證實大黃主要有效成分大黃素可以通過TLR4 信號通路減輕LPS 誘導的腸上皮細胞損傷,并上調縫隙接連蛋白CX43 表達[16]。本實驗結果表明,梔子金花湯中、高劑量組可明顯改善CLP 模型大鼠回腸黏膜層炎癥細胞浸潤,減少中性粒細胞積聚,降低血清和局部回腸組織相關促炎因子TNF-α、IL-1β 水平,升高抗炎因子IL-10 水平,提示梔子金花湯對膿毒癥大鼠具有較好的抗炎作用。

腸道作為膿毒癥多器官功能障礙綜合征關鍵一環,也是非腸源性膿毒癥的靶目標,近乎半數的膿毒癥患者伴嚴重腸道功能障礙[17]。而腸上皮細胞作為腸道重要的生理屏障,一旦腸上皮完整性喪失,細菌和內毒素移位入血,由此誘導一系列級聯反應造成多器官衰竭。DAO 是一種分布在人類和哺乳動物小腸黏膜上層絨毛中的高度活性的細胞內酶,在組胺和多種多胺代謝中起作用,其活性與黏膜細胞的核酸和蛋白合成密切相關,能夠反映腸道機械屏障的完整性和受損傷程度[18]。本實驗結果表明,梔子金花湯中、高劑量組腸絨毛排列相對整齊,結構相對完整; 腸上皮超微結構損傷有所改善,腸上皮細胞結構相對完整,微絨毛脫落減少,連接結構相對緊密; 血清和回腸組織DAO水平減少。

綜上所述,梔子金花湯可以改善CLP 致膿毒癥大鼠模型血清和回腸組織炎癥反應,通過保護腸上皮細胞及其連接結構維護腸屏障的完整性。本研究為后續梔子金花湯減輕炎癥、保護腸屏障來改善膿毒癥的深入機制研究提供前期基礎。

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